Und ich könnte mir in den Hintern beißen, dass ich nicht zum Mitmachen habe hinreißen lassen, statt von der Tribüne aus das Spektakel zu genießen. Ich finde, dass 5 Rätzel den Spaß trüben, weil es entweder kaum Pfähle gibt, oder sie nicht recht zuzuordnen sind. Ich bin jedenfalls total überfordert. To much für Grüne Hörner.
Beiträge von Wutzi
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Jetzt kommt ´was Fieses.
wieso jetzt?
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Ich habe heute Nachmittag noch einen außerplanmäßigen Zahnarztbesuch.
Gequält sollst du da werden, so wie du uns folterst,
Zahn um Pilz, Pilz um Zahn. Damit kommst noch glimpflich davon, mit deinen 32 Beißerchen. Wir müssen uns von deiner 35er Peitsche geißeln lassen,
Total cooles Rätzel mit Hirschmalz,
LG
Peter
Genau Habichtspeter, nur einer soll ihm verbleiben für Zahnschmerzen! Heute habe ich eine einzige Idee zu 5 Rätseln und den Totalfrust. Warum hab ich mich nur darauf eingelassen, wo ich doch weiß dass ich Bilderrätsel, Logikrätzel undB-Rätzel nicht verstehe - und Pfähle sowieso nicht
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Du irrst, Hans. Ich bereue zutiefst mich auf die Rätzelei eingelassen zu haben. Zu zeitaufwendig, viel zu schwierig für mich.
Deine Rätzel kommen noch, da bin ich sicher.
Wieso? Und ich dachte, das bisher wären schon alles Fotos von Index. gewesen😂
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Ihr seid alle noch sehr optischmal unterwegs.
Du irrst, Hans. Ich bereue zutiefst mich auf die Rätzelei eingelassen zu haben. Zu zeitaufwendig, viel zu schwierig für mich.
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Hallo Claudia,
die Bilder sind nicht sooo schlecht. Das mit dem 40er ist okay.
Das mit der geschlossenen Blende am Kondensor ist grauenvoll - aber die sehen an allen Mikroskopen so aus!
Die letzten drei sind noch ein wenig "vernebelt".
Die Blende am Kondensor muss beim 100er Objektiv (fast) ganz geöffnet sein, damit man ein scharfes Bild erreicht. Tiefenschärfe gibt es dabei nicht - das ist immer so.
Die Kunst ist, eine geeignete Stelle im Präparat zu finden, bei der man scharfe Stellen an der Sporenoberfläche und an anderen Sporen scharfe Stellen am Rand sieht.
Meine Tipps:
- Das Präparat muss dünn sein (gut quetschen!)
- Überflüssiges Wasser an der Seite mit Papier herausziehen. (Das Deckgläschen drückt dann von selber alles platt, die Sporen bleiben unbeweglich liegen)
- Linse vom 100er Objektiv mal putzen (feuchte Einmalbrillenputztücher, Isopropanol, Äther oder so was, auch Spucke geht (ernsthaft!))
- sauberes Immersionsöl verwenden (darf keinen Kontakt mit Wasser bekommen)
- Kondensor ganz noch oben drehen, dann ein winziges Stück zurück
- Kondensorblende öffnen
- Weißabgleich an der Kamera einstellen (bei dir ist der Hintergrund blau)
- nicht verwackeln
Viel Erfolg!
Peter
PS: Alle(!) guten Mikrofotos sind mit Fotoprogrammen nachbearbeitet.
wichtig ist die Kondensoreinstellung-wie Peter schon geschrieben hat
Zur Höheneinstellung des Kondensors wird die Leuchtfeldblende soweit geschlossen bis sie im Bild sichtbar wird.
Nun wird der Kondensor in der Höhe so eingestellt, dass der Rand der Leuchtfeldblende scharf abgebildet wird. Wenn du alles scharf eingestellt hast, öffne die Leuchtfeldblende nur so weit bis sie aus dem sichtfeld weg ist. Also nicht ganz zum Anschlag öffnen.
Hallo Peter und Peter
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vielen Dank für Eure Gebrauchsanweisungen. Ich werde sie Schritt für Schritt befolgen, sowohl beim Präparieren, als auch beim Köhlern. Mal sehen, was dabei herauskommt.
Ich glaube der Weißabgleich im Mikroskop stimmt. Da muss ich wohl die Kameraeinstellung verändern, da siehts die Farbe nämlich anders aus als beim Durchschauen. Die Kondensorblende war nach meiner Erinnerung völlig geöffnet, aber das muss ich noch einmal genau kontrollieren.
Ich hatte das 100er extra vorher noch einmal gereinigt - mit Wundbenzin übrigens, das wurde für mein Mikroskop empfohlen, als es gekauft wurde - insofern kann ich mich an der Diskussion nicht beteiligen, ob und womit am besten gereinigt werden soll.
Bevor es an weitere Präparate geht, muss ich erst mal in den Wald, geeignete Opfer suchen. Das Ganze soll ja am Ende auch einen praktischen Nutzen haben. Ich werde Bescheid geben, wenn ich etwas zustande gebracht habe.
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Hallo Markus, Saftlinge sind immer wieder ein Augenschmaus. Insofern hat mir dein Beitrag viel Spaß gemacht. Aber der Gelbe Samtschneckling ist ein ganz besonderes Schmankerl. Den würde ich gern einmal life sehen. Danke fürs Zeigen!
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Die Auflösung ist rund 42 und für Eberhard: die Farbe des Hundes ist zweifelsfrei rosa.
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... Entweder ich hab falsche Lösungen, oder ich hab richtige....
So isses, Grüni!
Lass Dich bloss nicht irremachen.
Da ist noch reichlich Zeit bis zur Listenabgabe.
Und das Eine oder Andere fällt einem auch noch ein.
Oder man hat es schon und traut seinem eigenen A**ch nicht.
Oder plötzlich begreift man einen Pvaal.
Und weitere Rätsel lauern am Horizont.
Wir sind alle Masoschisten, glaubich.
Das sagt der richtige. du hast dir die Sadorätzel doch ausgedacht und wir Blödmänner und Frauen sind dir in die Falle getappt.
Vielleicht hilft tatsächlich Eberhards modifizierter Unkenruf bei einem der Pilze. Bei denechtpilzen gibts die Qual der Wahl, aber diese B-Rätzel sind echt die Pest, lieber Hans! Mach einfach mehr Pilzsudokus statt B-Rätzeln, die mag ich. Da darfst du auch die Arten wechseln
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So, liebe Verena, Drosophila, rüberbeamen wäre in der Tat klasse
. Chromatische Aberrationen habe ich auch gegoogelt, gut zu wissen, aber hilft mir jetzt leider nicht konkret. Jetzt habe ich einen alten Schleierling (Cortinarius anomalochrascens) als Opfer gewählt. Hier ist ein gutes Vergleichsfoto der Sporen: The Genus Cortinarius (MushroomExpert.Com).
Ich bin Deiner Empfehlung gefolgt, habe zwar hellere Bilder gemacht, aber auch wieder nur so matschiges Zeug mit dem 100er Objektiv produziert. Mit dem 40er dagegen scheint die Welt noch in Ordnung.
Hier die Bilder im Vergleich (der den Fotos unterlegte Name ist natürlich Unsinn):
mit dem 40er
geschlossene Aperturblende - hier sieht man möglicherweise die würzige Struktur der Sporen
3 folgende Fotos bei geöffneter Aperturblende - mit Tiefenschärfe gespielt, alle schlecht
Das folgende Bild habe ich noch einmal geschärft und den Kontrast erhöht. Viel besser ist es davon nicht geworden.
Vielleicht ist das Objektiv dahin?
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Schade, dass ich mich nicht eben rüberbeamen kann zum gemeinsamen Probieren
Auf einen ordnungsgemäßen Sporenabwurf würde ich ja zu Testzwecken verzichten. Patsch duch einfach ne Lamelle über den Objektträger, Tropfen Melzer auf Deckglas und duff damit. Gibt mehr als genug Sporen
mach ich jetzt sofort
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Hallo Verena, hallo claus, das habe ich gerade bei Cortinarius-Sporen probiert. Aber die Aufnahmen werden dann ziemlich dunkel. Am Ende hab ich es doch wieder heller gemacht, um ein brauchbares Foto zu erzielen.
Hallo Claudia,
mein Tip war ja, immer mit offenener Aperturblende die Sporenornamente zu befunden (Du verwechselst aber nicht Aperturblende mit Leuchtfeldblende, gell?). Jedenfalls wird es dann heller, nicht dunkler. Die Auflösung steigt, dafür weniger Kontrast (ungefärbte Sporen kaum noch zu sehen, aber Russulasporen mit Melzer toll) und die Schärfentiefe nimmt ab. Letzteres heißt, du bist beim Anschauen kontinuierlich am Durchfokussieren der Probe, erhälst einen aufschlussreichen Live-Eindruck des Präparats - und verzweifelst beim Fotografieren. Dafür müsste man dann stacken.
Ferndiagnosen sind jedenfalls schwierig. Und Fotos machen eine andere Hausnummer als Live durchs Okular zu mikroskopieren. Ich kenne auch dein System nicht (hattest du es hier mal vorgestellt?). Du scheinst Probleme mit chromatischen Aberrationen zu haben, das bezahlt man natürlich auch mit Auflösung.
Hallo Verena, hab Dank für die guten Hinweise. Ich mikroskopiere mit einem Primostar mit eingebauter Kamera und habe mich gerade schlau gemacht und in der Bedienungsanleitung den Unterschied von Aperturblende und Leuchtfeldblende nachgeschlagen. Ich habe bei den letzten Bildern an allen denkbaren Hebeln herumgestellt, also auch an der Aperturblende. Ich glaube, ich hatte die Kondensorstellung verändert, um das dunklere Bild mit der Basidie oben zu machen. Deinen Vorschlag, es mit vollständig geöffneter Aperturblende zu versuchen, werde ich nachher an einem Sporenabwurf ausprobieren. Leider sport die Russula von gestern nicht, so muss es ein Weichritterling tun
Wenn ich die Schärfentiefe verändere, kann ich übrigens ein räumliches Bild von der Spore erkennen, aber leider keine Ornamente bei Russulasporen. Beim Foto davon dagegen bleibt nur eine Ebene scharf, der Rest verschwindet in der Unschärfe. Ich probiere das heute weiter aus.
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Moin,
ich teile die Auffassung von Cratie. Es wäre schön, wenn wir in der Art "Angaben zur Pilzbestimmung" einen Fred hätten: "keine Diskussionen über Rauschpilze im Forum". Es gibt unterschiedliche Motive für Anfragen nach psilocybinhaltigen Pilzen und wir reagieren immer nur mit der Keule, ohne ausführlich zu begründen. Das verstehe ich ja, niemand hat Lust, das 67. Mal dasselbe aufzuschreiben. Mit dem Verweis zu einem Link mit einer sachliche Begründung zur Schließung des Themas hätten wir dasselbe erreicht aber es käme freundlicher rüber.
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Hallo Claudia,
hast du denn die Einstellung deines Kondensors optimiert? Wenn ich die HDS untersuche, ziehe ich die Aperturblende etwas zu, um mit höherer Kontrastierung mögliche Zystiden/Haare zu beurteilen. Für Sporenornamente benötige ich allerdings die volle Auflösung bei offener Aperturblende. Machst du das auch so?
...weiss wo das Gaspedal ist.
Dann probiere erstmal Verena´s Vorschlag aus, vielleicht ist das ja die Lösung des Problems und zwingend eine Russula Spore muss es ja auch nicht sein, gelle?
Bis dann...
claus
Hallo Verena, hallo claus, das habe ich gerade bei Cortinarius-Sporen probiert. Aber die Aufnahmen werden dann ziemlich dunkel. Am Ende hab ich es doch wieder heller gemacht, um ein brauchbares Foto zu erzielen.
Ich habe heute einen ganz jungen Speisetäubling gefunden, da hab ich leider wieder kein HDS-Foto hinbekommen. Weder abgezogen noch abgeschabt. Er hatte zudem noch keine einzige Spore. Da muss ich morgen mal sehen, ob sich der Pilz verändert hat.
Die Huthaut sollte sich abziehen lassen, aber sie war noch nass mit einer Konsistenz wie Gummi
Wenn ich das Bild vom Schleierling so lasse, wird es überstrahlt.
Das ist die dunkle Variante ohne Ausblendung. Ich finde beides Mist.
Na gut claus, dann such ich heute Abend mal nach dem Gaspedal am Mikroskop
. Bis dahin hab ich auch ein schickes Opfer gefunden.
Liebe Claudia,
es ist auch besser, wenn Du einen Sporenabwurf gleich auf einen Objektträger oder andere Glasplatte machst. Da hast Du dann Sporen für mehrere Untersuchungen ohne störendes, weiteres Pilzmaterial. Andreas Gminder hat uns doch beigebracht, dass man beim Mikroskopieren immer beide Hände an irgendwelchen Rädchen hat. Einfach mal unängstlich verschiedene Dinge probieren. Bei mir ist die Einsteckkamera der große Schwachpunkt.Beste Grüße
Stefan F.
Hallo Stefan,
danke, aber was meinst Du, was ich alles probiere. Ich werde morgen die Füße mit dazu nehmen
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Und den Sporenabwurf auf den Objektträger mache ich auch immer gern. Nur hatte den letzten der Kater gleichmäßig auf dem Schreibtisch verteilt. Ist halt gerade nicht so leicht in meinem Kleinzoo und Handwerkern, die meine Aufmerksamkeit beeinträchtigen..
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Edit: Oh, jetzt sind wir schon zu ölft, da wird es langsam schwierig, noch in die Top-Ten zu rutschen.
Mach Dir keine Sorgen, die Schlusslaterne ist mein
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...ists vielleicht das, was wir im APR noch nie hatten...
liebe Grüße,
eberhard
...zumindest nicht, seit ich mitmache... (also seit 2016)
...dass ich Sudokus hasse?)
Aber bisher stehen die Chancen immerhin 1:4.....
Vielleicht möchte ja jemand die Sudoku-Auflösung gegen eine echte Herausforderung wie das komische geborstene Braune Teil tauschen. Ist so was erlaubt, Hans? Aber gegen das letzte, das ist wirklich das Letze! würde ich selbstverständlich ebenfalls tauschen.
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Hmmmmja...wenn es das ist, wonach es auf den ersten Blick ausschaut...
Nämlich: Der Fujiyama von oben, bei Nacht!
Glaub ich nicht, ich schätze das ist eine Satellitenaufnahme vom Grand Canyon.
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Danke claus, das baut mich richtig auf.
Liebe Claudia,
Entschuldigung, aber ich habe angenommen dass, wenn schon jemand wie du die Scheibenwischeranlage bei einem Mikroskop betätigen kann auch weiss wo das Gaspedal ist.
Dann probiere erstmal Verena´s Vorschlag aus, vielleicht ist das ja die Lösung des Problems und zwingend eine Russula Spore muss es ja auch nicht sein, gelle?
Bis dann...
claus
Na gut claus, dann such ich heute Abend mal nach dem Gaspedal am Mikroskop
. Bis dahin hab ich auch ein schickes Opfer gefunden.
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Hallo Claudia,
hast du denn die Einstellung deines Kondensors optimiert? Wenn ich die HDS untersuche, ziehe ich die Aperturblende etwas zu, um mit höherer Kontrastierung mögliche Zystiden/Haare zu beurteilen. Für Sporenornamente benötige ich allerdings die volle Auflösung bei offener Aperturblende. Machst du das auch so?
Hallo Verena, nein, das mache ich bislang nicht so. Ich bin ein technisches Greenhorn und befasse mich höchst ungern mit dem Innenleben meines Mikroskops. Ich stelle meist nur die Beleuchtung heller, wenn ich eine stärkere Vergrößerung wähle oder mit Immersionsöl mikroskopiere. Aber ich werde das nächste Mal versuchen deiner Anweisung zu folgen. Dafür brauch ich allerdings erst einmal wieder einen Täubling.
Hallo Claudia,
wenn du das gleiche Bild auch durch das Okular siehst kann ich nur sagen: Grauenhaft...
Da könnte ich nicht mal erahnen, dass das eine Russula Spore ist, geschweige denn, eine vernünftige Aussage über das Ornament abzugeben. Ich melde mich später noch mal, muss erst mal was ausprobieren.
claus
Danke claus, das baut mich richtig auf.
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Hallo Claus, hab das Mikroskop sauber gemacht, geköhlert und mit den letzten Lamellen einen neuen Versuch der Sporenbestimmung unternommen. Schau mal, besser wird's nicht:
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Hi,
na ja bis auf I. flocculosa fällt mir da auch nix weiter ein. Hast du in 3%igem KOH mikroskopiert? Das mache ich bei Dunkelsporern ausschließlich. Wenn die Zystidenwände gelb würden mit KOH, dann wäre das ein zusätzlicher Hinweis auf I. flocculosa.
l.g.
Stefan
Hallo Stefan, hab das Mikroskop gereinigt, geköhlert und mit KOH mikroskopiert. Die Bilder. sind wieder scharf, aber ohne ohne gelbe Zystidenwände. Was denkst du?
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Hallo Hans, keine Sorge, das mit der Tribüne verschiebe ich mal...
...hoppla, ich seh grad, da ist schon ein Bildchen!
Freuen wir uns, liebe Grüße,
Eberhard
Alleine mit mir und Zoom auf der Tribüne mag ich auch kein Bier trinken. Ich probiere einfach mal bei der Rätzeleio mitzumachen. Irgendwer muss ja auf diesem Zug das Schlusslicht halten.
Ach und kann man Bilder abwählen, so wie z.B. 1B?
Und Du willst nur den einen Pilz aus der Mitte beim Pilz-Sudoku, richtig? Das lässt sich schon eher machen. dIch dachte, ich soll jetzt Pilze malen.
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Hallo Matthias, der erste ist vermutlich ein kleiner Tintling, da müssen die Experten ran. Den zweiten vergleiche mal mit dem Zitterzahn.
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Hi,
na ja bis auf I. flocculosa fällt mir da auch nix weiter ein. Hast du in 3%igem KOH mikroskopiert? Das mache ich bei Dunkelsporern ausschließlich. Wenn die Zystidenwände gelb würden mit KOH, dann wäre das ein zusätzlicher Hinweis auf I. flocculosa.
l.g.
Stefan
Hab ich nicht, wusste ich nicht, Climby, danke! Das werde ich nachholen und berichten.
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Huthaut abgezogen, kleines Schnipselchen herausgeschnitten und in Wasser auf den Objektträger gelegt.
...und was ist mit abschaben? den Kurs bei Andreas vergessen?
Du weisst doch auch wie man einen DÜNNEN Kammschnitt macht... Den habe ich doch von dir gelernt!
Also: Huthaut abziehen, Rückseite gut! abschaben, Stückchen (1qmm) in Kongo, quetschen und ab unters Mikroskop. Mein Kurs war heute umsonst...
Ich habe neues Immersionsoel, habe Glück, dass ich noch einen Rest altes habe.
Grüsse
claus
Danke Claus, mit Abschaben hatte ich es natürlich auch versucht. Das hatte mir Alis neulich in Erinnerung gebracht. Das Ergebnis war ebenfalls Murks. Ich werde mal einen Tag lang nur Huthautpräparate machen.
Dein Kurs war Übrigens nicht umsonst, der war nur kostenlos!Wahrscheinlich hab ich einfach nur zu breite Finger
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