Beiträge von Wutzi

    Hallo Claudia,

    hast du denn die Einstellung deines Kondensors optimiert? Wenn ich die HDS untersuche, ziehe ich die Aperturblende etwas zu, um mit höherer Kontrastierung mögliche Zystiden/Haare zu beurteilen. Für Sporenornamente benötige ich allerdings die volle Auflösung bei offener Aperturblende. Machst du das auch so?

    ...weiss wo das Gaspedal ist. :haue:

    Dann probiere erstmal Verena´s Vorschlag aus, vielleicht ist das ja die Lösung des Problems und zwingend eine Russula Spore muss es ja auch nicht sein, gelle?


    Bis dann...

    claus


    Hallo Verena, hallo claus, das habe ich gerade bei Cortinarius-Sporen probiert. Aber die Aufnahmen werden dann ziemlich dunkel. Am Ende hab ich es doch wieder heller gemacht, um ein brauchbares Foto zu erzielen.

    Ich habe heute einen ganz jungen Speisetäubling gefunden, da hab ich leider wieder kein HDS-Foto hinbekommen. Weder abgezogen noch abgeschabt. Er hatte zudem noch keine einzige Spore. Da muss ich morgen mal sehen, ob sich der Pilz verändert hat.

    Die Huthaut sollte sich abziehen lassen, aber sie war noch nass mit einer Konsistenz wie Gummi


    Wenn ich das Bild vom Schleierling so lasse, wird es überstrahlt.



    Das ist die dunkle Variante ohne Ausblendung. Ich finde beides Mist.

    Na gut claus, dann such ich heute Abend mal nach dem Gaspedal am Mikroskop==11. Bis dahin hab ich auch ein schickes Opfer gefunden.


    Liebe Claudia,


    es ist auch besser, wenn Du einen Sporenabwurf gleich auf einen Objektträger oder andere Glasplatte machst. Da hast Du dann Sporen für mehrere Untersuchungen ohne störendes, weiteres Pilzmaterial. Andreas Gminder hat uns doch beigebracht, dass man beim Mikroskopieren immer beide Hände an irgendwelchen Rädchen hat. Einfach mal unängstlich verschiedene Dinge probieren. Bei mir ist die Einsteckkamera der große Schwachpunkt.


    Beste Grüße

    Stefan F.

    Hallo Stefan,

    danke, aber was meinst Du, was ich alles probiere. Ich werde morgen die Füße mit dazu nehmen:grofl:.

    Und den Sporenabwurf auf den Objektträger mache ich auch immer gern. Nur hatte den letzten der Kater gleichmäßig auf dem Schreibtisch verteilt. Ist halt gerade nicht so leicht in meinem Kleinzoo und Handwerkern, die meine Aufmerksamkeit beeinträchtigen..

    Vielleicht möchte ja jemand die Sudoku-Auflösung gegen eine echte Herausforderung wie das komische geborstene Braune Teil tauschen. Ist so was erlaubt, Hans? Aber gegen das letzte, das ist wirklich das Letze! würde ich selbstverständlich ebenfalls tauschen.

    Na gut claus, dann such ich heute Abend mal nach dem Gaspedal am Mikroskop==11. Bis dahin hab ich auch ein schickes Opfer gefunden.

    Hallo Claudia,

    hast du denn die Einstellung deines Kondensors optimiert? Wenn ich die HDS untersuche, ziehe ich die Aperturblende etwas zu, um mit höherer Kontrastierung mögliche Zystiden/Haare zu beurteilen. Für Sporenornamente benötige ich allerdings die volle Auflösung bei offener Aperturblende. Machst du das auch so?

    Hallo Verena, nein, das mache ich bislang nicht so. Ich bin ein technisches Greenhorn und befasse mich höchst ungern mit dem Innenleben meines Mikroskops. Ich stelle meist nur die Beleuchtung heller, wenn ich eine stärkere Vergrößerung wähle oder mit Immersionsöl mikroskopiere. Aber ich werde das nächste Mal versuchen deiner Anweisung zu folgen. Dafür brauch ich allerdings erst einmal wieder einen Täubling.


    Danke claus, das baut mich richtig auf.==7

    Hallo Stefan, hab das Mikroskop gereinigt, geköhlert und mit KOH mikroskopiert. Die Bilder. sind wieder scharf, aber ohne ohne gelbe Zystidenwände. Was denkst du?


    Hallo Hans, keine Sorge, das mit der Tribüne verschiebe ich mal... g:D

    ...hoppla, ich seh grad, da ist schon ein Bildchen!

    Freuen wir uns, liebe Grüße,

    Eberhard

    Alleine mit mir und Zoom auf der Tribüne mag ich auch kein Bier trinken. Ich probiere einfach mal bei der Rätzeleio mitzumachen. Irgendwer muss ja auf diesem Zug das Schlusslicht halten.

    Ach und kann man Bilder abwählen, so wie z.B. 1B?

    Und Du willst nur den einen Pilz aus der Mitte beim Pilz-Sudoku, richtig? Das lässt sich schon eher machen. dIch dachte, ich soll jetzt Pilze malen.

    Hab ich nicht, wusste ich nicht, Climby, danke! Das werde ich nachholen und berichten.

    Danke Claus, mit Abschaben hatte ich es natürlich auch versucht. Das hatte mir Alis neulich in Erinnerung gebracht. Das Ergebnis war ebenfalls Murks. Ich werde mal einen Tag lang nur Huthautpräparate machen.
    Dein Kurs war Übrigens nicht umsonst, der war nur kostenlos!:daumen:

    Wahrscheinlich hab ich einfach nur zu breite Finger==Gnolm4.

    Hallo claus, danke für deine ausführlichen Anmerkungen.

    Kann Immersionsöl denn schlecht werden? Ich habe es seit zwei Jahren und es ist aus dem Mykoshop.


    Ich habe in Wasser mikroskopiert, außer bei den Sporen. Da habe ich Melzers verwendet. Mir gefallen die Aufnahmen auch nicht, aber besser bekomme ich das auch nicht unterm Mikroskop zu sehen. Vielleicht muss ich die Objektive einmal reinigen.


    Bei der HDS habe ich mich schwer getan und mindestens fünf Präparate gemacht. Huthaut abgezogen, kleines Schnipselchen herausgeschnitten und in Wasser auf den Objektträger gelegt. Ich habe einen Schnipsel sogar umgedreht, weil ich annahm, dass er verkehrt herum liegt. Sicher habe ich irgend etwas falsch gemacht, aber ich verstehe nicht, was.

    Nachtrag zum Risspilz von Nummer 14. Climbingfreak

    Das ist eine recht kleine Art. Ob die Huthaut wirklich so schuppig ist, oder ob es sich um Trockenschäden handelt, kann ich nicht sagen. Diese Risspilze wuchsen unter Fichten. auf der anderen Wegseite gab es auch Buchen.

    Der Geruch war spermatisch. gab es nur in der Stielspitze. Ansonsten schlanke bis flaschenförmige Cheilo- und Pleurozystiden mit Kristallschöpfen. Glattsporer.

    Zu dieser Art habe ich keine Idee.





    Kaulocheilozystiden nur in der Stielspitze




    Cheilo- und Pleurozystiden mit Kristallschopf

    Danke Uwe. Ich schreibe mir das mal an die Pilze mit einem Fragezeichen. Die wachsen in Massen nicht weit weg. Ich werde einmal verfolgen, wie sie sich entwickeln und noch einmal abgleichen. Es gibt einfach zu viele Arten, die sich nur um Winzigkeiten unterscheiden.


    GriasDi Wutzi,

    danke für den C. phoeniceus:)

    Die Nr.19 sollte aus dem C. anomalus Aggregat sein.

    An liabn Gruaß,

    Werner

    Hallo Werner, aber gerne doch. Der ist hier ein Massenpilz-und ein besonders schicker noch dazu. Danke für den C. anomalus- Vorschlag. Die Art habe ich hier auch zuhauf. Aber da sind die Hüte nicht so silbriggrau. Aber naheliegender als mein Weißvioletter Klumpfuß ist er allemal.

    Hi,


    kleine Ergänzung: der Bärtige Ritterling passt. Wie war der Geruch des weißen Risspilzes? Irgendwas in Richtung Mehl, Scheunenstaub oder so? Hat der nachträglich noch iwie gebräunt?


    Aufgrund des leicht schuppigen Hutes denke ich an Inocybe sindonia, ...

    Kleiner Zwischenbericht Stefan==Gnolm13, I. sindonia scheint zu stimmen. Hier sind ein paar Bilder vom Innenleben:




    Hallo Uwe,

    das sieht schwer nach einem guten Geheimtipp aus. Ich hatte den Pilz noch im Kühlschrank habe die Sporenmaße verglichen. Und Täräää - er muss es sein. 1000 Dank!



    Meinst Du, dass man so etwas Winziges wie Nummer 17 bestimmen kann? Der sah irgendwie besonders aus und ich könnte ihn noch unters Mikroskop legen. Das nutzt wohl aber ohne Referenzobjekt wenig. Dunkelbraun mit violettstich. Ich hab ihn aufgehoben, weil er mir so gut gefiel.

    Also dann schreibe ich da jetzt mal R. integra dran. Vielleicht muss ich das Mikroskop mal wieder köhlern, denn eigentlich hatte ich mit der Tiefenschärfe gespielt, ohne dass das viel genutzt hat. Sieh mal:






    Danke für deine Einschätzung, Uwe. Der hat ja wirklich nicht viel Sporenpulver abgegeben und vielleicht wäre das kompakt auch dunkler gewesen. Ich denke mal, dass es R. integra ist und ich nur wieder nicht 1 und 1 zusammenzählen konnte. Aber dank eurer Unterstützung wird es langsam besser.

    Zitat von Craterelle

    Bestellt war "mit Henkel, für 1 kg Eierschwammerl". Deine Parasole musst du also anders transportieren :gzwinkern:

    Wir haben einen Lasttest gemacht:


    Über 2,5 kg, wenn ich mich richtig erinnere. Hat gehalten. Mein eigener hatte bei seiner feierlichen Einweihung etwas weniger zu tragen.

    Wow, und ich meine jetzt nicht nur den Korb!

    Hallo Claudia,


    Könnte das ein ungewöhnlich sauberer Wieseltäubling sein? Oder spricht von den Merkmalen etwas dagegen?


    LG, Cratie

    Huhu Cratie, danke für den Tipp, sauber ja, aber nö, kein sauberer Wieseltäubling. Der war richtig dunkelbraun wie auf dem ersten Foto. Ich hätte eher an den Braunen Ledertäubling gedacht, aber den hab ich verworfen, weil ich keine Andeutung von Anastomosen entdecken konnte.



    Hallo Stefan, den hatte ich kurz überlegt aufgrund mangelnder Alternativen. Besser hab ich die Sporenornamente nicht hinbekommen. Mein Melzers taugt wohl nichts mehr. Hat R. integra keine Anastomosen?

    hallo Stefan, Danke, der sieht nicht nur aus wie der Gelbblätterige, der ist es sogar. Ich habe wieder mal geschusselt. Mit den Mikrobildern musst du noch etwas Geduld haben. Dass er glatte Sporen hat, kann ich aber schon verraten==2.

    Hallo Uwe, danke, aber das ist zum Verzweifeln. Die standen nebeneinander unter Fichte. Und nein, keine violette Linie an der Sollbruch zwischen Stiel und Lamellen, kein variiert. Jetzt schmeiße ich sie weg und gehe in zwei, drei Tagen nachsehen, ob da neue Schleierlinge wachsen. Es fällt nämlich gerade feiner pilzfreundlicher Niederschlag.