Zitat von Sebastian_RLP

Muss noch rausfinden, wie genau man die Ammoniak-Reaktion überprüft. Bei Ludwig ist zu lesen, dass sich im mikr. Präparat an den Lamellenbruchstücken in Ammoniak feine lange Kristallnadeln ausbilden. Habe mir Bilder im Netz angeschaut. Bedeutet also die Lamelle in 25% Ammoniak einlegen. Bin etwas vorsichtig was Ammoniak anbetrifft.

Hallo Sebastian,

ich nehme ein Bruchstück einer Lamelle und ein bis zwei Tropfen Ammoniak direkt auf einem Objektträger, lege ein Deckgglas drauf und drücke es leicht an. Bei einer sehr starken Reaktion sieht man die Kristallnadeln schon nach 20 Minuten. Habe auch schon gelesen, das man das Präparat über Nacht in den Kühlschrank legen kann.

LG Karl

PS. in älteren Schlüsseln wird die NH3-Reaktion noch als hartes Kriterium verwendet. Es hat sich jedoch erwiesen, dass die Reaktion bei manchen Arten nicht konstant ist. Bei den im Schlüssel aufgeführten Arten, solte es aber passen.

Hallo Sebastian,

die Frage nach dem Alleinstellungsmerkmal lecythiforme Zystiden für Conocybe kann man mit ja beantworten. Zu beachten ist natürlich, das es ähnliche Formen von Zystiden in anderen braunsporigen Gattungen gibt, die dann aber eher kegelpinförmig aussehen, nicht so dünne Hälse haben oder deren Bauchteil schlanker ist. Im Zweifelsfall hilft dann ein Blick auf die Hutdeckschicht, die bei Conocybe mehr zellig und bei z. B. Galerina hyphig ist.
Du hast den Fund sehr gut bearbeitet und bist so weit gekommen, wie es mit der verwendeten Literatur möglich ist
Hausknecht schlüsselt in Fungi Europaei Band 11 insgesamt 16 Arten in der Sektion Mixtae auf CONOCYBE-KEY FE 11.zip. Wie bereit von Matthias angesprochen, spricht sehr viel für C. tetrasporoides OestZPilz_12_0041-0083.pdf OestZPilz13 (2004) 153 ff.pdf.
Conocybe tetraspora wurde von Singer aus Südamerika beschrieben und wird von Hausknecht als identisch mit C. subpubescens angesehen, hat also mit Deinem Fund nichts zu tun.

LG Karl

Hallo Sebastian,

mit welchem Schlüssel hast Du denn gearbeitet? C. juniana hat überwiegend kopfige Kaulos, C. ochrostria hat keine kopfigen Kaulos und C. pseudocrispa kann man schon makroskopisch ausschließen. Du musst schon bei den Arten mit gemischten Kaulozystiden suchen zu denen von Deinen Kandidaten lediglich C. subpubescens gehört. C. subpubescens sollte jedoch Sporen deutlich über 10 mµ haben.

LG Karl

Hallo Claus,

das Kompliment an Oehrling kann ich natürlich nur unterstreichen und zur Abrundung des Beitrags habe ich aus meinem Fundus noch zwei Aufnahmen von R. romellii rausgesucht, die die Variabilität der Art erahnen lassen. Bild 1 ist übrigens am gleichen Tag im gleichen Wald aufgenommen, wie das oben gezeigte Bild von R. curtipes .

LG Karl

Hallo Werner,

leider sind etliche Bilder nicht zu sehen.

LG Karl

Hallo Claus,

interessante Farbe. Ich kenne R. curtipes zwar stark ausblassend (fast) ohne Rottöne, aber als gelb kann ich das natürlich nicht bezeichnen.

LG Karl

Hallo Rotkehlchen,

leider ist auf dem Schnittbild nicht viel zu erkennen. Möglicherweise handelt es sich um einen Schleimtrüffel (Melanogaster ambiguus). Vergleiche mal mit dem Foto



LG Karl

Hallo Björn,

vorgestern war ich mit Jochen nochmal dort und wir hatten ebenfalls Köttel mit ergiebigen Funden, die von Hans noch untersucht werden. Coprinellus pusillulus ist wohl auch vorhanden und gut kenntlich (als guter Hinweis), wenn man die kleinen ockerfabigen Köpfchen im jungen Stadium (links im Bild) ebenfalls findet.



Das "Monstrum" auf Deinem Bild links kann übrigens sehr gut Corpinopsis nivea sein.

LG Karl

Hallo Thiemo und Uwe,

R. raoultii passt natürlich perfekt. In der Eifel finde ich die Art regelmäßig in mehreren Kalk-Buchenwäldern auf besseren Böden und bisher nur dort. Interessant, dass sie augenscheinlich auch auf sauren Böden vorkommt.

LG Karl

Hallo zusammen,

ich habe die Diskussion mit Interesse verfolgt und hänge mal einige Bilder an, die schon mehrfach den Namen gewechselt haben

2x Amanita umbrinolutea im Fichtenwald. Erst jetzt fiel mir auf, dass die Natterung des Stiels erst bei älteren Exemplaren deutlich zu sehen ist. Möglicherweise hat das ja früher auch schon zu Bestimmungsproblemen geführt.




Amanita battarae im thermophilen Kalklaubwald


LG Karl

Hallo zusammen,

ich habe die Diskussion mit Interesse verfolgt und hänge mal einige Bilder an, die schon mehrfach den Namen gewechselt haben

2x Amanita umbrinolutea im Fichtenwald. Erst jetzt fiel mir auf, dass die Natterung des Stiels erst bei älteren Exemplaren deutlich zu sehen ist. Möglicherweise hat das ja früher auch schon zu Bestimmungsproblemen geführt.




Amanita battarae im thermophilen Kalklaubwald


LG Karl

Zitat von Marcel

Das Haselnussaroma wird von dem Stoff Filberton erzeugt.

5-Methyl-2-hepten-4-on – Wikipedia

Hallo Marcel,

hast Du auch einen Literaturhinweis für das Vorkommen von Filberton in Täublingen oder anderen Pilzen?

LG Karl

Zitat von Wutzi

Danke Karl, das ist sehr hilfreich aber auch ein bisschen entmutigend.

An dem Punkt war ich auch mal aber das ändert sich rasch wieder Hilfreich ist es auf jeden Fall, mal einen gut bekannten Täubling komplett durchzuarbeiten und die festgestellten Merkmale mit der Literatur zu vergleichen.

LG Karl

Hallo Claudia,

hier nun die angekündigte Ergänzung zu Russulasporen. Das Ornament kann von isoliert bis nahezu vollständig netzig mit allen denkbaren Übergängen gehen. Ebenso variabel ist kann die Höhe des Ornaments sein. Die genannten Merkmale haben innerhalb einer Art ja sogar innerhalb einer Kollektion eine gewisse Schwankungsbreite.

Im Mikroskop siehst Du das natürlich nie so wie gezeichnet sondern musst Dir durch vorsichtige Fockkusieren einen Eindruck verschaffen. Häufig siehst Du erst dann feine Verbindungslinien bei einem Ornament, welches zunächst vollständig isoliert wirkt. Die "Kugeln" auf deinem ersten Sporenbild sind elipptische Sporen, die quasi senkrecht stehen und beim Messen der Länge falsche Ergebnisse liefern. Bei Deinem letzten Sporenbild liegt die Fokkussierung ungefähr im optischen Schnitt. In dieser Position wird gemessen (ohne Ornament) und man sieht ob und wenn ja wie hoch die Warzen, Stacheln oder Grate in etwa sind. Du brauchst also immer mindestens zwei Bilder von einer ausreichenden Anzahl Sporen. Hier noch Bilder vom gleichen Präparat in mehreren Ebenen.









LG Karl

Hallo zusammen,

auf Willkommen bei den Pilzen Deutschlands kann jeder ohne Registrierung zugreifen und Verbreitungskarten sowie Bilder ansehen.

Registrierte Teilnehmer können sich genauere Fundangaben ansehen, wobei an die Registrierung keine Mitgliedschaft bei der DGfM erforderlich ist.
Registrieren

Hier gibt es noch einige Infos Das Portal der Pilze Deutschlands

LG Karl

Hallo Claudia,

Die genaue Sporenpulverfarbe von Täublingen ermittelt man am Besten, indem man das SPP zusammenschabt und zwischen zwei Objektträger bringt. Durch vorsichtiges Bewegen gegeneinander entsteht dann eine gleichmäßig dünne Schicht und ermöglicht den Vergleich mt einer entsprechenden Farbskala. Legt man das so entstandene Präparat auf weißes Papier, so erkennt man auch blasse Cremetöne, die man andernfalls für weiß halten könnte, was auf Deinen Pilz natürlich nicht zutrifft.
Beispielbild:


Basidien und Zystiden haben bei Russula nur selten taxonomischen Wert und auf Ihre Betrachtung kann man meist verzichten.

Die Huthaut von Täublingen kann verscheidene Elemente enthalten, die meistens in Kongorot ausreichen gut zu beurteilen sind. Ich nehme am Liebsten Kongo/SDS. Vorher ist jedoch zu beachten, dass kein Hutfleisch mehr mit ins Präparat gelangt. Das sind die runden Zellen auf Deinem Bild, durch welche alles überdeckt wird. Wenn Du langsam ein Stückchen Huthaut abziehst und die Rückseite anschaust, hast Du meistens eine Ecken, an der kein (weißes) Fleisch mehr hängt. Andernfalls musst Du es mit einer Rasierklinge abschaben. Von einer Stelle ohne Fleisch schneidest Du dann ein Stück ab, welches Du mit Kongorot anfärben und betrachten kannst. Eine gute Möglichkeit ist es einen sehr dünnen Streifen mit der Rasierklinge abzuschneiden, wobei sehr dünn möglichst weniger als ein 0,2 mm ist. Das angefärbte Präparat etwas quetschen. Meistens liegen die zur Beurteilung erforderlichen Elemente zumindest an einer Seite dann schon frei.

Die Elemente mit dem grieseligen Inhalt sind Pileozystiden (Dermatozystiden), die übrigen Elemente sind Endzellen der Huthautbekleidung und werden oft als Haare bezeichnet. Dann gibt es noch die sogenannten inkrustierten Primordialhyphen, die ich bei Deinem Pilz 2 allerdings nicht erwarte.

Russalasporen sind immer ornamentiert und zu besseren Beurteilung nimmt man Melzer, weil sich das Ornament färbt und besser zu beurteilen ist. Dazu später mehr

LG Karl

Hallo Malone,

ich schließe mich der Meinung von Bastian an. Die beiden letzten Bilder sind ziemlich nah an Dactylorhiza fuchsi, der Rest sind Hybriden zwischen D. fuchsii und D. majalis. D. majalis blüht meist ein bis zwei Wochen früher als B. fuchsii und die Hybriden.

LG Karl

Hallo Claudia,

die Schwärztäublinge haben weißes Sporenpulver und Gujak ist in Sekundenbruchteilen stark positiv., womit der zweite Fund nicht dazu gehört. Du wirst sicher mal R. nigricans finden und solltest die Reaktion dann mal testen.
Leider habe ich momentan keinen Namensvorschlag für Nr. 2

LG Karl

Zitat von romana

Seid ihr mit meiner Bestimmung einverstanden?

Hallo Romana,

mit der Bestimmung bin ich sehr einverstanden. D. subviscida schwebte mir schon vor, als Du geschrieben hast "Ich hab versucht, die Huthaut abzuziehen, doch das gelang mir nicht, auch mit anfeuchten nicht." Ich bin inzwischen dazu gekommen meine Aufzeichnungen und Literatur durchzusehen und habe keinen Zweifel. Schön, dass Du selbst zu einem Ergebnis gekomen bist

LG Karl

Hallo Jörg,

schöne Funde von denen wir hier nur träumen können. Der Täulbing erinnert sehr an R. grisea welcher gelegentlich getönte Stiele bestizt. R. ionochlora ist makroskopisch schwer zu unterscheiden. Für R. olivacea erscheinen mir die Lamellen zu hell.

LG Karl

Hallo Claudia,

wie oben erwähnt gibt es bei den Compactae noch unbeschriebene Arten.
Der zweite Täubling scheint was Anderes zu sein. Gujakreaktion ist bei allen mir bekannten Compactae schnell und stark. Die Ermittelung der SPP-Farbe ist unerlässlich. um weiter zu kommen.

LG Karl

Hallo zusammen,

wie Oehrling und Werner halte ich R. nigiricans für ausgeshlossen. R. anthracina hätte sich spätestens bei Berührung spontan schwarz gefärbt und ist trotz des rosa Schimmers in den Lamellen nicht möglich.
Das ist höchstwahrscheinlich eine noch unbeschriebene Art. Ich hatte selber schon einen Fund mit rosa Reflex in den Lamellen, der nicht schwärzte und einen Fund mit zunächst langsam rötenden und anschließend schwärzendem Fleisch, dichter stehenden Lamellen als bei R. nigircans und absolut mildem Geschmack, der sich keiner bekannten Art zuordnen lässt. Felix Hampe teilte mir mit, dass die Gruppe in Bearbeitung ist und es neue noch nicht publikationsreife Erkenntnisse gibt.

@ Claudia: Da von dem vorliegenden Fund weder Fleischverfärbung noch Geschmack bekannt sind, solltest Du den Fundort im Auge behalten und auf weitere Fruchtkörper hoffen.

LG Karl

PS Das Pilzportrait Nr. 236 im letzten Tintling ist übrigens auch nicht R. anthracina, was mit Sicherheit in der nächsten Ausgabe klargestellt wird.

Zitat von Werner Edelmann

ich stelle einen Echten Mehltau vor, der wohl stark unterkartiert ist.

Ich hab in den letzten Tagen mehrfach im Münchner Norden einen Echten Mehltau an kultiviertem wintergrünen Pfaffenhütchen gefunden, der häufig als Bodendecker oder Rankpflanze angepflanzt ist.

Der Vergleich mit Jules Buch und Klenke/Scholler ergab schnell Erysiphe euonymicola, der nur an wintergrünem Euonymus, wie E. fortunei und E. japonicum vorkommen soll. Wobei ich noch nicht herausbekommen hab, wie die beiden Arten zu trennen sind. Vllt hilft mir da jemand auf die Sprünge?

Hallo Werner,

mit Sicherheit ist die Art deutlich unterkartiert, was aber wohl mit Ausnahme von Erysiphe alphitoides auch für alle weiteren Arten der Gattung gilt
Ich habe Erysiphe euonymicola bisher an E. japonicum und einmal an E. sp. kartiert, weshalb mich Deine Frage neugierig gemacht hat. E. fortunei wird ja auch als Kletter-Spindelstrauch bezeichnet und kann im Gegensatz zu E. japonicum Haftwurzeln bilden. Ich werde zukünftig mal drauf achten.

LG Karl

Absolut genial Chris

Mein Lieblingsobjekt für Mikroskopierübungen. Wenn mir dann jemand voller Stolz Bilder von Pileo-, Cheilo- und Kaulozystiden zeigt kann ich fragen wo denn die Pleuros sind und Du braucht nichtmal ein Mikroskop dafür.

LG Karl

Zitat von Climbingfreak

Stimmt. Mein Organik-Grundpratikum ist einfach zu lange her. Klar, du brauchst Nitriersäure und demzufolge Nitrosylkationen. Da war noch was.

Lieber Stefan,

das ist aber nur die halbe Wahrheit da Du dann noch einen Aromaten für die zitierte Kupplung benötigst . Mein Praktikum ist zwar wesentlich länger her aber ich weiß noch, dass ich damals Beta-Naphtol zur Synthese eines orangenen Farbstoffs verwendet habe.

LG Karl

PS. Mach Dir nichts draus. Organische Chemie war für mich mehr Hobby als Lehrstoff