Hallo Christoph,
und auch hier wieder vielen Dank für Deine geschätzten Tipps.
Mit dem Xerocomus wollte ich mich beschäftigen - hab das dann aber nicht mehr geschafft.
Deshalb gab es da keine nähere Bestimmung.
Chroogomphus --> ja das Thema mit den Splitting der Arten ist mir schon bekannt. Da werde ich in Zukunft einmal drauf achten.
Danke für den Link zum Schlüssel --> der ist gut gespeichert.
Beste Grüße
Dieter
Vielen Dank Christoph für diesen wertvollen Hinweis,
Inocybe dulcamara hatten wir ja schon des Öfteren vorgestellt. Wir schauen uns das noch genau an.
Beste Grüße
Dieter
09.09.2017:
Viele Erstfunde, schwer Bestimmbares und Leckereien - Teil
3
Hallo Pilz-Freunde,
dies ist Teil 3 des Berichtes vom 09.09.2017.
Teil 1 findet Ihr hier
Teil 2 findet Ihr hier
Und weiter geht's...
Fundnummer: 2017-09-09-1559
Morphologische Daten:
Fundort: ca. 550 müNN. ca. N50, O12, im
feuchten Moos im Mischwald
Fundzeit: 09.09.2017
Wuchsform:
gesellig
Hutform: mit
zentralem Buckel
Huthaut:
grau-beige, matt
Hygrophanität:
ja
Hutrand:
kantig
Lamellen:
weiß mit Rosa-Stich, viele
Zwischenlamellen
Lamellenschneiden: ohne Besonderheiten
Lamellen-Stielübergang:
gerade angewachsen
Stiel:
glänzend grau-weiß, wattig ausgestopft
Stielbasis: ganz
leicht myzelfilzig, fast wurzelnd
Fleisch:
weiß
Größe:
Hutdurchmesser ca. 4
cm, Stiellänge ca. 8 cm, Stieldurchmesser ca. 8 mm an dickster Stelle
Sporenpulverfarbe:
rosabraun
Geruch:
unzerrieben: leicht
rettichartig, im Schnitt etwas mehlig
Geschmack:
nicht
bewertet
Als Entoloma-Fan ist das für mich natürlich ein absolut starker
Erstfund:
Niedergedrückter Rötling (Entoloma
rhodopolium):
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☻
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Sporen:
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Fundnummer: 2017-09-09-1619
Das ist natürlich etwas "kostbares" - in jeder Hinsicht - der
Ziegelgelbe Schleimkopf (Cortinarius varius).
Zum einen natürlich ein wunderbares Motiv - schaut Euch das an:
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Zum anderen aber ein wunderbarer Speisepilz... und auf geht's zum heutigen
Geschmackstest (nach der Tour):
Geputzt sehen die Pilze so aus. Sie sind knackig fest und sehen äußerst
appetitlich aus:
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In der Pfanne entwickeln sie einen sehr guten Duft der die ganze Küche erfüllt:
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Der Geschmackstest:
Wie immer bei meinen Tests wurden die Pilze nur in Margarine gebraten und etwas
gesalzen.
Optisch macht die Cortinarius varius
auf dem Teller einen sehr guten Eindruck und riecht hervorragend.
Der Biss ist mittel-fest. Das sieht so aus (schade, dass ihr nichts riechen
könnt):
☻
Cortinarius
varius bekam die Wertung 8,5 Punkte.
Ich würde
Cortinarius varius als vorzüglichen Speisepilz
bezeichnen. Er steht also ganz oben auf meiner Speisepilz-Liste.
Und hier wieder einmal ein Update der aktuellen
Geschmacks-Test-Bewertungs-Liste:
Fundnummer:
2017-09-09-1635
Weiter ging's mit dem Keulenfüßigen
Trichterling (Ampulloclitocybe clavipes):
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Fundnummer: 2017-09-09-1648
Wächst hier in einer in Reihen gepflanzten Fichtenplantage. Auch solche
Standorte, insbesondere dieser doch sehr finstere Waldabschnitt sind immer für
Überraschungen gut. Leucocortinarius habe ich vorher nie gesehen.
Ebenso für mich
ein Erstfund-Höhepunkt der Tour:
Knolliger Schleierritterling (Leucocortinarius
bulbiger):
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Fundnummer: 2017-09-09-1707
Und hier gleich die nächste Besonderheit dieses Gebiets. Ebenfalls ein Erstfund
für uns. Die Sporen sind wirklich sehr besonders.
Rautensporiger Rasling (Lyophyllum deliberatum):
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Sporen:
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Fundnummer: 2017-09-09-1700
Ein Filzi....
Morphologische Daten:
Fundort: ca. 550 müNN. ca. N50, O12, bei
Fichte,
im Nadelstreu
Fundzeit: 09.09.2017
Wuchsform:
einzeln
Hutform: konvex
Huthaut-Konsistenz:
feinsamtig matt
Huthaut-Farbe:
dunkelbraun
Hutrand: ohne Besonderheiten
Röhren:
gelb, aber dunkler als der Stiel,
sehr fein
Stiel:
gelb,
glatt, an der
Spitze ungewöhnlich runzelig, keulig
Stielbasis:
rund
Fleisch:
extrem fest,
gelblich, nicht verfärbend (weder
außen noch innen)
Größe: Hutdurchmesser ca. 3 cm,
Stiellänge 3 cm, Stieldurchmesser ca. 15 mm
Geruch:
pilzig
Ein unbestimmter
Filzröhrling (Xerocomus spec.) -
wahrscheinlich aus Sektion
Sektion Subtomentosi.
Wohl nicht ohne Weiteres zu knacken:
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Fundnummer:
2017-09-09-1722
Eine schwierige Telamonie kündigte sich auch noch an...
Morphologische Daten:
Fundort: ca. 550 müNN. ca. N50, O12, im
Mischwald (Baumarten leider vergessen zu
notieren)
Fundzeit: 09.09.2018
Wuchsform: sehr gesellig
Hutform: schirmartig mit minimalem
Buckel, sehr
wellig
Huthaut:
braun,
radialfaserig,
matt
Hygrophanität:
ja
Hutrand:
ohne Besonderheiten
Lamellen:
braun, mit
Zwischenlamellen
Lamellenschneiden:
glatt, absolut ohne
Besonderheiten
Lamellen-Stielübergang:
ausgebuchtet angewachsen,
kaum herablaufend
Fleisch:
braun-weiß
Stiel:
braun-weiß schillernd
glänzend, braun befasert, keine Ringzone, hohl
Velum universale:
sehr weinig, Farbe orange-bräunlich
Stielbasis:
etwas verdickt und spitz
zulaufend
Größe: Hutdurchmesser
ca. 3 cm; Stiellänge ca. 6 cm, Stieldurchmesser ca. 5-6 mm
Sporenpulverfarbe:
Pantone 7526U =
████
Geruch: im
Schnitt gut pilzig
Geschmack:
sehr stark pilzig mit einer
muffigen Komponente
Exsikkat-Farben:
Hut uns Lamellen: mittelbraun, Stiel: mittelbraun und silberig überfasert
Makrochemische Reaktionen:
KOH 40%
auf HH: sehr dunkel-braun
fast schwarz
Mikroskopische Daten:
Sporen:
isoliert warzig, honigbraun, ellipsoid bis amygdaloid
Präparat: aus Lamellenstück (Exsikkat) ausgewaschen; Untersuchungsmedium:
Wasser; Messwertanzahl: n = 49
Test auf Normalverteilung nach Anderson Darling: Länge: normalverteilt; Breite:
normalverteilt; Q: normalverteilt
Standardabweichung S. D.: von L × B: 0,5 × 0,2 µm; von Q: 0,1
Median: von L × B: 8,3 × 5,1 µm; von Q: 1,6
Arithmetischer Mittelwert Me: von L × B:
8,3 × 5,1 µm; von Q: 1,6
Abmessungen nach t-Verteilungsverfahren mit 80%-Konfidenzintervall: für
L × B: (7,2) 7,7 - 8,9 (9,3) × (4,7) 4,8 -
5,4 (5,7) µm; für Q: (1,4) 1,5 - 1,7 (1,8)
Abmessungen nach t-Verteilungsverfahren mit 90%-Konfidenzintervall: für L × B:
(7,2) 7,6 - 9,1 (9,3) × (4,7) 4,7 - 5,5 (5,7) µm; für Q: (1,4) 1,5 - 1,8 (1,8)
☻
☻
Lamellentramahyphen:
nicht inkrustiert (wichtiger Schlüsselpunkt!)
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Man landet beim Schlüsseln irgendwo in der Nähe von Cortinarius obtusus
s.l. Die fehlenden inkrustierien Lamellentramahyphen, abweichende Sporenmaße,
der ungestreifte Hut sind diskrepante Punkte. Diese Klade wurde schon vor
Längerem einmal von mir pyhlogenetisch beleuchtet, jedoch auch mit dem Ergebnis,
dass auch morphologisch noch genauere Untersuchungen nötig sind. Auch eine
phylogenetische Analyse wäre hier nicht sinnvoll. Es bleibt also bei
Jodwasserkopf im weiteren Sinn
(Cortinarius obtusus s.l.):
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Fundnummer: 2017-09-09-1727
Lepiota
castanea haben wir auf dem Weg zum Auto noch an bekannter Stelle mitgenommen.
Natürlich nur zum Mikroskopieren, nicht zu Essen. 
Die braunen Elemente auf den Mikros sind die HDS-Zellen, die man makroskopisch
als Schüppchen oder Filz sieht.
Kastanienbrauner Schirmling (Lepiota castanea):
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Huthaut-Endhyphen (Die Stielschüppchen
sehen auch so aus, kann man per Mikrobild alleine nicht unterscheiden):
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Sporen:
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"Natürlich gibt's auch heute wieder einen Blick in den Korb" würde Snokri
sagen :-)))....
Gerne - hier die heutige Ausbeute:
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Das war's für heute....
Wir hoffen die Tour hat Euch gefallen und wir freuen uns wie immer auf Eure
Kommentare.
Beste Grüße
Dieter & Matthias
09.09.2017:
Viele Erstfunde, schwer Bestimmbares und Leckereien - Teil 2
Hallo Pilz-Freunde,
dies ist Teil 2 des Berichtes vom 09.09.2017.
Teil 1 findet Ihr hier
Teil 3 findet Ihr hier
Und weiter geht's...
Fundnummer:
2017-09-09-1405
Die Art finde ich nicht sehr oft, hier aber in Massen. Auch wenn wegen Maden
nicht so viel für die Pfanne blieb, die Fotos verderben einem die Viecher
wenigstens nicht.
Edel-Reizker (Lactarius deliciosus):
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Fundnummer:
2017-09-09-1412
Morphologische Daten:
Fundort: ca. 550 müNN. ca. N50, O12, bei
Birke und Kiefer
Fundzeit: 09.09.2017
Wuchsform:
einige am Standort
Hutform:
schwach konvex bis flach, verbogen
Huthaut:
braun, nach außen hin deutlich heller werdend,
unter Lupe netzartig gefasert, etwas klebrig
Huthaut-Abziehbarkeit:
1/2 abziehbar
Hygrophanität: nicht untersucht
Hutrand:
ist zwar nicht gerippt aber aber die Durchscheinenden Lamellen lassen es so
aussehen, kantig
Lamellen:
gelblich,
Zwischenlamellen
Lamellenschneiden:
bräunlich, braunfleckend
Lamellen-Stielübergang:
fast ausgebuchtet angewachsen aber eher gerade
Stiel:
bräunlich längs überfasert, oben bereift, keulig aber Basis spitz zulaufend,
längsfaserig, hohl
Stielbasis:
spitz
zulaufend
Fleisch:
im Stiel hellgelb mit bräunlichem Zentrum, im Hut weiß mit bräunlichem Zentrum
Größe: Hutdurchmesser ca.
6-9 cm,
Stiellänge ca.
5-7 cm
Stieldurchmesser
an der dicken Stelle 1,2-2 cm
Sporenpulverfarbe:
rein weiß
Geruch:
unzerrieben & zerrieben: mehlig
Geschmack:
mehlig, unangenehm, ganz leicht bitterlich
Wegen er Hutrandrippung, dem Geschmack und dem Geruch ist das der
Gelbblättrige Ritterling (Tricholoma fulvum):
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Fundnummer:
2017-09-09-1431
Auch ein wunderbarer Erstfund für mich:
Violetter Becherling (Peziza violacea):
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Asci:
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Fundnummer:
2017-09-09-1437
Morphologische Daten:
Fundort: ca. 550 müNN. ca. N50, O12, bei
Fichte und Birke
Fundzeit: 09.09.2017
Wuchsform:
gesellig
Hutform:
konvex
Huthaut-Konsistenz:
glatt, etwas glänzend
Huthaut-Farbe:
fleischrosa bis zu grauweiß ausgeblasst, glänzend,
Huthaut-Abziehbarkeit:
1/4 bis 1/3 abziehbar
Fleischfarbe unter Huthaut:
rosa
Hut-Fraßstellen-Rand-Verfärbung:
keine vorhanden
Hutrand:
kantig,
nicht gerieft
Lamellen:cremeweiß,
mit Zwischenlamellen
Lamellenschneiden: ohne Besonderheiten
Lamellensprödigkeit:
nicht besonders spröde
Lamellen-Stielübergang:
gerade angewachsen
Stiel:
weiß,
leicht grauend,
etwas runzelig,
etwas keulig,
voll, nicht wattig ausgestopft
Stielbasis:
rund
Fleisch: ohne Besonderheiten
Größe:
Hutdurchmesser
bis 5 cm,
Stiellänge 2-4 cm, Stieldurchmesser ca. 7-12 mm
Sporenpulverfarbe:
am ehesten:
IId im direkten Vergleich mit der Marxmüller-Tafel,
IIIa im direkten Vergleich mit der
Romagnesi-Tafel
Geruch:
absolut neutral
Geschmack:
scharf aber erträglich und scharf bleibend
Makrochemische Reaktionen:
Guajak:
nach 20 Sek. blaugrün, nach 25 sek. stark
blaugrün
Anilin pur: keine Reaktion
Eisensulfat FeSo4: keine Reaktion
Phenol:
nach 2 Minuten blass-rosa, nach 5 Minuten weinrot
KOH 40%: keine Reaktion
Nicht häufig bei uns: der
Verblassende Täubling (Russula exalbicans):
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Fundnummer:
2017-09-09-1510
Morphologische Daten:
Fundort: ca. 550 müNN. ca. N50, O12, bei
Birke und Weide auf Laubstreu und Ästchen
Fundzeit: 09.09.2017
Wuchsform:
gesellig bis büschelig
Hutform:
Mitte vertieft
Huthaut:
cremeweiß, mit rosa Schimmer, matt, trocken
Hutrand:
gerieft, mehlig bereift, flattrig, kantig, feinst eingerollt
Lamellen:
cremeweiß, sehr viele Zwischenlamellen, sichelförmig
Lamellenschneiden:
vollkommen glatt auch unter der Lupe
Lamellen-Stielübergang:
herablaufend
Stiel:
weiß und rosalich, innen etwas weichlich ausgestopft
Stielbasis:
weiß, stark myzelfilzig, rund bis etwas spitz zulaufend
Fleisch:
weiß, ganzer Pilz sehr elastisch gummiartig
Größe:
Hutdurchmesser
2-5 cm,
Stiellänge ca. 3 cm, Stieldurchmesser ca. 5 mm
Sporenpulverfarbe:
rein weiß
Geruch:
am Fundort: nur pilzig, zuhause: pilzig und etwas süßlich fruchtig
Geschmack:
sehr stark irgendwie "nicht gut pilzig ranzig"
Auch ein sehr schöner Erstfund:
Weißer Holztrichterling (Clitocybe truncicola):
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Fundnummer:
2017-09-09-1526
Morphologische Daten:
Fundort: ca. 550 müNN. ca. N50, O12, bei
Pappel, Birke, Weide und Fichte
Fundzeit: 09.09.2017
Wuchsform:
einige am Standort
Hutform:
kugelig bis konvex
Huthaut:
graubraun, samtig
Hutrand: ohne Besonderheiten
Röhren:
grau-cremefarben, auf Druck: verfärben zu grau
Stiel:
schwärzliche Flocken auf weißem Grund,
keulig
Stielbasis:
rund,
Fraßstellen blau
Fleisch-Verfärbung:
nach 2 Minuten im Hutfleisch rosa-rötlich und im Stiel und Basis tut sich
zunächst nichts, nach 40 Minuten: Violett im Hutfleisch und nach unten rötlich
Geruch:
im Schnitt harzig
Der
Pappel-Raufuß (Leccinum duriusculum):
☻
☻
Hier seht ihr mal die Verfärbung im Fleisch:
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☻
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Fundnummer:
2017-09-09-1539
Voucher:
DW201709091539
Matthias schrieb dazu im Jahr 2017:
Dieses braune Graublatt ist für mich aktuell nicht bestimmbar. Mit der
Sporengröße kann man alles ausschließen. T. cessans kommt noch hin, aber auch
für den sind die Sporen zu klein, zu länglich und es fehlen die Zystiden. Das
was ich optisch gedacht hätte (inolens/boudieri) hätte alles deutlich größere
Sporen, der hier hat Sporen konstant unter 6µm Länge.
Im Jahr 2023 kamen wir dann endlich dazu die Sequenzierung zu
machen.
Hier der verkürzte Bericht dazu:
Auswahl der Loci für die Sequenzierung
Die Familie Lyophyllaceae ist nur
lückenhaft phylogenetisch geklärt. Es sind kaum Sequenzdaten für die höhere
Phylogenie vorhanden. Allerdings liegen bereits einige Sequenzdaten für die
niedere Phylogenie vor. Manchmal reicht die Aufnahme der ITS1/2 aus, manchmal
nicht.
Deshalb wurde zu Beginn nur die ITS1/2 sequenziert. Als Primer wurde zunächst
der ITS4 Primer verwendet, welcher auch funktionierte.
Prüfung der Rohdaten
Nach der DNA-Extraktion, Amplifikation und Sequenzierung lagen die Rohdaten als
Rückwärtssequenz vor.
Das Reverse Complement der Rohdaten wurde zunächst optisch am ITS Chromatogramm
geprüft:
Es lag keine Dachschräge und kein kein sudden drop vor, der Verlauf war
einwandfrei.
Anhand der Confidence Scores der Rohdaten wurden unsichere Sites ermittelt:
Die gelben Bereiche sind schlechte Confidence-Scores.
Die grünen Bereiche sind potentielle Polymorphe.
Diese Sites müssen geprüft werden (siehe nachfolgend).
ITS-Sequenzsammlung
Die ITS-Sequenzsammlung wird um Zeit zu sparen gleich für folgende
Analyse-Schritte durchgeführt:
Quellenauswahl für die Sequenzsammlung: Die
ITS-Sequenzen werden gesammelt von NCBI und Unite.
Es wurden insgesamt 1200 ITS-Sequenzen gesammelt. Davon 745 von Environmental
Samples. In der Ingroup verblieben am Ende aber nur 17 und in der Outgroup nur
3. Die große Menge war für die nachfolgenden Prüfungen erforderlich und wurde
dann weiter auf die Menge für das finale Phylogramm reduziert.
Prüfung und Korrektur der Rohsequenz und Basecalling
Für die Divergenz-Matrix konnten alle Sequenzen der Ingroup verwendet werden.
Als Alignisierungs-Software wurde Mafft Version 7.520 gewählt. Als
Aliginisierung-Strategie wurde FFT-NS-2 welche für die Divergenz-Matrix völlig
ausreicht.
Das Ergebnis der Prüfung der Rohsequenz:
Anfang: CTTCTTTGGTTTCCCA muss gelöscht werden; TTAGAG ist korrekt.
Site 528: korrekt – ist ein G
Site 529: Ist ein Problem. T kommt nicht vor in der kompletten Matrix, C kommt
bei naheliegenden vor. In den Environmentals fehlt die Base weil zu kurz. Da
unklärbar, Polymorph, C oder T. Polymorph – geändert auf Y
Site 530: korrekt – ist ein A
Site 605: korrekt – ist ein T
Site 606: korrekt – ist ein G
Site 611: korrekt – ist ein A
Site 625: korrekt – ist ein T
Site 628: korrekt – ist ein C
Site 631: korrekt – ist ein C
Ende: Nur NGNNNNNNN muss gelöscht werden, Rest ist OK
Die finale ITS-Sequenz des Fundes lautet somit:
>DW201709091539_final
TTAGAGGAAGTAAAAGTCGTAACAAGGTTTCCGTAGGTGAACCTGCGGAAGGATCATTATTGAATAAACTTGGTTAGGTT
GTTGCTGGCTCCTTGGAGCATGTGCACGCCTAGCACCAATTTTACCACCTGTGCACCTTTTGTAGACTTTGGAGTGCTTG
CGCTCCATAGTTTATGTCTTCACATATACACATGAATGTAACAGAATGTCATTAACGGGCCATTTAGTGCCTTTACAAAT
GAAATACAACTTTCAACAACGGATCTCTTGGCTCTCGCATCGATGAAGAACGCAGCGAAATGCGATAAGTAATGTGAATT
GCAGAATTCAGTGAATCATCGAATCTTTGAACGCACCTTGCGCTCCTTGGTATTCCGAGGAGCATGCCTGTTTGAGTGTC
ATTAAATTCTCAACCTTTTCAACTTTTGTTAGTTGCTCAGGCTTGGATTGTGGGGGTTGCGGGCTTCTCGGAAGTCGGCT
CTCCTTAAATACATTAGCAGAAACCTTTGTTGYATTAGCTCCGGCGTGATAATTATCTACGCCGTATGTGAAACAACTCT
TATACGGTTTAGCTTTCTAATAGTCCTTTGGGACAAACTCTTGACAATTGACCTCAAATCAGGT
GenBank Eintrag
Die Sequenz wurde bei GenBank hinterlegt:
Tephrocybe confusa voucher DW201709091539 small subunit ribosomal RNA - Nucleotide - NCBI
Vorprüfung, Aussortierung und Erstellen des finalen Alignments
Der
Fund landet in eine Klade die zwar phylogenetisch klärbar ist, aber noch nicht
korrekt kombiniert ist. Wir überlegten, ob wir diese Klärung in Zuge der
Fundanalyse machen. Zur eindeutigen Klärung müsste ein Supertree berechnet
werden. Er zeitliche Aufwand ist so groß, dass wir dies derzeit nicht angehen
können. Wir beschränkten uns deshalb auf die reine Fundbestimmung.
Entsprechend haben wir den sehr großen Baum auf die minimal nötige Klade
beschränkt und 3 Taxa für die Outgroup belassen.
Die verbleibenden Sequenzen wurden neu aligined mit Prank (ohne Switches).
Folgende Liste zeigt die verbleibenden Sequenzen im Alignment:
Gap-Coding
Für
das Gap-Coding wurden die Indel-Matrizen gecoded.
Für
die vorliegende Studie wurde das SIC-Verfahren „Simple Indel Coding“ gewählt.
Als Codiersoftware wurde SeqState gewählt.
Partitionierung
Für
diese sehr einfach Studie wurde die ITS nicht weiter partitioniert. Es wurden
also nur 2 Partitionen verwendet
Phylogrammberechnung
Das
finale Phylogramm wurde mit RAxMLberechnet.
Evolutionsmodell DNA: GTR+G
Evolutionsmodell Indels: BINARY+G+A
Correct for Ascertainment bias: Ja, nach Paul Lewis
Finales Phylogramm
Der
berechnete best tree wurde übersetzt und gerootet an der finalen Outgroup. Die
Knoten <50% wurden kollabiert. Die Outgroup wurde ebenso kollabiert.
Finales Ergebnis:
Bestimmung des Fundes und Hinweis zu den noch fehlerhaften Gattungsnamen
Da
die Klade in der sich der Fund befindet sich phylogenetisch deutlich von den
anderen trennen lässt kann der Fund eindeutig zugeordnet werden.
Allerdings kann "Tephrocybe"
confusa nicht zur Gattung Tephrocybe gehören, genauso wie "Lyophyllum" turcicum
nicht zu Lyophyllum gehört. Dies ist deshalb so, weil der phylogenetische
Abstand zu hoch ist, sich eine große Deletion in der Klade /confusa befindet und
die Kladen durch andere Gattungen (z.B. Hypsizygus, Atractosoprocybe und
Leucocybe) eben von Tephrocybe und Lyophyllum abgetrennt sind.
Wir belassen die Namen so, weil sie derzeit so gültig sind. Vielleicht findet
jemand mal die Zeit um hier eine Neuordnung anzugehen.
Unabhängig davon ist jedoch eine Sache sicher: Alle Funde in der Klade sowie
unser Fund sind nur eine einzige Art. Ohne den Typus von "Tephrocybe" confusa
sequenziert zu haben ist der Name der Klade zwar nicht 100% sicher aber sehr,
sehr wahrscheinlich. Wir können unseren Fund also guten Gewissens "Tephrocybe"
confusa benennen.
Und
hier seht Ihr nun den Fund: Dickstieliges
Graublatt ("Tephrocybe" confusa):
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HDS - genauer: Hauptsächlich die Schichten unterhalb der eigentlichen HDS:
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Sporen:
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Fundnummer:
2017-09-09-1542
Hier wieder mal ein Beispiel dafür, dass M. limosus nicht nur an
Schilf/Rohrglanzgras vorkommt. Hier wuchsen die Pilzchen auf einem grasigen,
sehr feuchten Waldweg. Man muss aber schon sehr genau hinsehen, um sie zu
entdecken.
Schilf-Schwindling (Marasmius limosus):
☻
☻
☻
Weiter zum Teil 3
09.09.2017:
Viele Erstfunde, schwer Bestimmbares und Leckereien - Teil 1
Liebe Pilz-Freunde,
heute machten sich ich und Matthias wieder auf den Weg. Es hatte gut geregnet
und das Mischwald-Gebiet dass wir ansteuerten ließ uns schon ahnen dass es heute
wieder brachial wird.
Kleinpilze schauten wir heute deshalb fast nicht an, da es massenhaft Großes
gab. Wir fotografierten auch fast nur die Schönheiten und Besonderheiten, ließen
also viele Pilze links liegen.
Was am Ende in der Kiste war war ein toller Mix aus richtig guten Erstfunden,
aber auch unbestimmbare Pilze und natürlich auch was für die Pfanne.
Kommt mit uns und schaut es Euch an...
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und den Haken in der Checkbox "Diese Einstellung merken" und "Speichern"
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Wegen der Menge müssen wir diesen Bericht diesmal auf 3 Teile aufteilen.
Teil 2 findet Ihr hier
Teil 3 findet Ihr hier
Wir schreiben den Bericht wieder zusammen.
Wie immer: Meine Texte sind schwarz,
Matthias' Texte sind grün.
Meine Bilder sind mit einem schwarzen
☻,
Matthias' Bilder sind mit einem grünen☻gekennzeichnet.
Fundnummer: 2017-09-09-1250
Weil er so schön da lag, begann der Tag mit 2 schnellen Bilder von
Podosphaera aphanis an Frauenmantel:
☻
☻
Fundnummer: 2017-09-09-1251
Die kleinen weißen Kügelchen scheinen häufiger zu sein, als man oft glauben
könnte, ich wurde an fast allen passenden Standorten fündig, hier kam wieder
einer hinzu, sogar mit Teleomorphe.
Körnchenrindenpilz (Bulbillomyces farinosus):
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☻
Fundnummer: 2017-09-09-1255
Auch die Spinnlein sind sehr schöne Fotomotive, nur leider halten sie viel zu
selten Still. Diese hier ließ sich ohne Probleme ablichten.
Die wunderschöne Wespenspinne (Argiope
bruennichi):
☻
☻
☻
Fundnummer: 2017-09-09-1315
Die Art kenne ich von dort seit Jahren. Wächst am Boden auf einer ehemaligen
Deponie unter jungen Waldkiefern.Bei diesem hochinteressanten Fund handelt es sich wohl um einen
Schüppling (Pholiota spec.).
EDIT: Es sich hier wahrscheinlich um den
Bittersüßen Risspilz (Inocybe cf.
dulcamara):
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Mikroskopische Daten:
Sporen: 9-10(10,5) x 6-7µm, Bas 4-sp, Chrysozystiden wohl keine (zumindest keine
sicheren gesehen).
Kaulozystiden nicht untersucht.
Sporen:
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Lamellenschneide:
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Lamellentrama:
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HDS-Hyphen:
☻
Fundnummer: 2017-09-09-1329
Wirklich nicht selten, hier aber
besonders schön.
Und ich sage: Cortinarius = immer schön ;-))))
Natternstieliger Schleimfuß (Cortinarius
trivialis):
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Fundnummer: 2017-09-09-1338
Für mich ein toller Erstfund:
Gezonter Adernmoosling (Arrhenia spathulata):
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Fundnummer: 2017-09-09-1348
Die Stelle ist eine der ergiebigsten Espenrotkappengebiete, die ich kenne.
Selbst im Extremjahr 2018 wuchsen hier noch genügend Exemplare. Hier, 2017,
waren es natürlich nochmal deutlich mehr und sehr fotogen dazu.
Weißstielige Rotkappe (Leccinum albostipitatum):
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Dieter bei der Arbeit:
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Und das war das Ergebnis:
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Fundnummer:
2017-09-09-1351
Birken-Milchling (Lactarius torminosus):
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Weiter zum Teil 2
Tja... ist auch nur ne vage Vermutung von mir gewesen... können wir nicht klären.
Ich finde eher das Substrat so außergewöhnlich... Hätt ich nicht für möglich gehalten.
Aber ich erinnere mich an die alte Matratze die mal hier jemand ins Forum gestellt hat... mit den Tintlingen (und anderm) drauf oder der Sessel von Nobi neulich.
Schon geil!
Grruß
Dieter
Hallo Rudi,
sorry, aber da muss ich widersprechen - gonophylla ist mir als ein Verwandlunskünstler bekannt - schau Dir das an was der drauf hat:
und das sind nur 4 Beispiele...
Beste Grüße
Dieter
WOW! Im Aschenbecher - das ist eine Sensation!
Naja --> Asche = Brandstelle --> und das Aussehen KÖNNTEN bedeuten: Kleiner Kohlentintling (Coprinopsis gonophylla)
Aber das ist natürlich nur eine Vermutung
Beste Grüße
Dieter
Hi Björn,
bei solchen Berichten würd ich am liebsten gleich los ziehen und selbst sowas suchen.
Sehr interessant und auch schön mit etwas drum rum beschrieben - genau nach meinem Geschmack!
Beste Grüße
Dieter
Hallo
zusammen,
wie
versprochen habe ich
Fundnummer: 2017-09-03-1032
weiter untersucht.
Es sind 2
wesentliche Punkte von Bedeutung für eine genauere Bestimmung:
Makrochemische Reaktion:
KOH 3% auf exsikkatierter Huthaut: negativ
Mikroskopische Daten:
Hier
sind die Sporenmaße und die Oberflächenstruktur maßgebend.
Sporen:
subglobos, 1 Öltropfen, genoppt-warzig
Maße:
Präparat: Sporenabwurf; Untersuchungsmedium: Wasser; Messwertanzahl: n = 40
Test auf Normalverteilung nach Anderson Darling: Länge: normalverteilt; Breite:
nicht normalverteilt; Q: normalverteilt
Standardabweichung S. D.: von L × B: 0,3 × 0,3 µm; von Q: 0,1
Median: von L × B: 4,9 × 3,8 µm; von Q: 1,3
Arithmetischer Mittelwert Me: von L × B: 4,9 × 3,8 µm;
von Q: 1,3
Abmessungen nach Quantil-Verfahren mit 80%-Standardbereich: für
L × B: (4,3) 4,6 - 5,2 (5,4) × (3,4) 3,6 - 4,2 (4,3)
µm; für Q: (1,1) 1,2 - 1,4 (1,5)
Abmessungen nach Quantil-Verfahren mit 90%-Standardbereich: für L × B: (4,3) 4,5
- 5,4 (5,4) × (3,4) 3,5 - 4,3 (4,3) µm; für Q: (1,1) 1,2 - 1,4 (1,5)
Abmessungen nach t-Verteilungsverfahren: nicht anwendbar, da nicht
normalverteilt
Schlüsselt man den Pilz nach Größer und prüft alle Alternativen kommt man auf
Folgendes:
(Rot sind die unsicheren Schlüssel-Punkte)
Gröger I Seite
598 > 1 > 1b > 2 > 2b (50%) > 7 >
7a (wahrscheinlicher) > Rhodocybe gemina
Das passt auch nach der Beschreibung im Pilzkompendium einwandfrei.
Alternativen:
Gröger I
Seite 598 > 1 > 1b > 2 > 2b (50%) > 7 >
7b > 8 > 8a
(50%) > 9 > 9b> 10 > Sackgasse
Gröger I Seite 598 > 1 > 1b > 2 > 2a (50%) > 3 >
3b > 4 > 4b > 5 > Sackgasse
Wenn die KOH-Rektion positiv wäre könnte man noch diesen weg gehen:
Gröger I Seite 598 > 1 > 1b > 2 > 2b (50%) > 7 >
7b > 8 > 8b
(50%) > 13 > 13b (hier
wäre Schluss, wegen KOH-Reaktion!) > 14 > 14b > 15 > 15b > Rhodocybe
mundula
Rhodocybe mundula: Rötendes & schwärzendes Fleisch passt nicht
Man könnte auch folgende Alternativen prüfen und käme zu einem Negativ-Ergebnis:
Rhodocybe popinalis: Hut zu groß, Stiel zu lang, Hygrophanität passt nicht,
Geruch passt überhaupt nicht, KOH-Reaktion passt nicht
Rhodocybe mundula var. rubescens: Rötendes Fleisch passt nicht, KOH-Reaktion
passt nicht
Rhodocybe parilis: Hut zu groß, Stiel zu lang, Lamelen queradrig passt nicht,
Geruch passt nicht, Sporen zu klein
Rhodocybe parilis var. wargramensis: passt nicht
Es handelt sich also - trotz der seltsamen Optik wohl doch um den
Würzigen Tellerling (Clitopilus geminus)
Beste Grüße
Dieter
Hallo zusammen,
erst mal "Danke schön" an alle...
Kleiner Hinweis am Rande:
Der "Zunderschwamm" in diesem Thema an dem Nadelholzstumpf dürfte ziemlich sicher eine harzhaltige Hutkruste haben (Brutzeltest machen im zweifel). Soll meinen: Der sieht mir sehr nach Rotrand (Fomitopsis pinicola) aus.
Oh, das glaube ich gern, dass das Fomitopsis pinicola ist. Da hab ich gar nicht genau hin geschaut und ich verwechsle diese ja standard-mäßig ;-))) ... wird korrigiert.
Du kannst Dir vorstellen, dass ich mich ganz besonders über die Dungpilze gefreut habe.
Hochinteressant Deine Theorie zur Wuchsrichtung von Pilobolus!
Es wäre bei weiteren Funden zu untersuchen, ob sich das tatsächlich immer so verhält. Auf alle Fälle etwas, was ich zukünftig beobachten werde.
Prima - dann schaun wir mal ob wir eine hochwissenschaftliche Pillenschuss-Theorie austellen können 
Ich freue mich übrigens, dass Du diesen von Peter Welt und mir erdachten Begriff verwendest!
Oh, na das wusste ich gar nicht, aber freut mich - klein ist die (Pilz)Welt... 
Ein ganz besonderes Kompliment möchte ich Euch jedoch für die Darstellung der "Dungtintlinge" aussprechen.
Das ist absolut einmalig. Was für Schönheiten das doch sind, wenn man sie mit euren "Kameraaugen" sieht!
Und zudem noch so ausführlich vorgestellt. Da bleiben keine Wünsche offen.
Wenn die nur nicht immer so schnell zerfallen würden... ich als alter Exsikkatierer hat damit ein echtes Problem - hihi... 
Ja, aber die Tintlinge sind natürlich immer eine Überstunde wert.
Da werden von mir und auch Matthias garantiert noch viele Berichte folgen, da wir die Augen danach natürlich speziell offen halten.
DER Höhepunkt dieser Serie ist für mich allerdings die Doku von Helicodendron giganteum.
Ich bin ja von den aquatischen und semiaquatischen Pilzen sowieso fasziniert.
Ich auch - wir haben vorvorgestern 5 interessante Äste aus einem Tümpel gezogen.
Der erste hat schon Aeros dran (noch nicht untersucht).
Da wird also bald wieder ein kleiner Bericht folgen.
Diese traumhaften Bilder (und ein wenig Text dazu), ich bin sicher, dass jede Pilzzeitschrift der Welt scharf darauf wäre, das zu publizieren.
Ich hoffe, dass Ihr auch in Zukunft an den "Kleinen" dranbleibt und uns weiterhin mit Euren Fundbeiträgen beglückt.
Es gibt noch so viel zu entdecken.
Liebe Grüße vom Nobi
Auf jeden Fall...
:-))
Bis dahin.
Beste Grüße
Dieter
Prima Pablo,
und wie es der Zufall will habe ich gestern noch was zum Thema gemacht....
Da folgt noch ein Bericht aber schon mal vorab:
Schlehenrötling (Entoloma sepium):
Hier sieht man toll die zeit- und ort-abhängige makrochemische Reaktion:
So appetitlich sehen die geputzt aus:
So in der Pfanne:
Und so auf dem teller:
LEEEEEEEEEEEEEEEEEEECKER WAR'S!!!
Die knuspern wie Chips und haben im Geschmackstest gestern die
Wertung 8,5 bekommen! 
Beste Grüße
Dieter
Hallo,
Nur liegen die ja nicht alle gleichmässig unterm Objektiv
- Schaun mer mal.
Ich nehme einfach immer nur die Sporen bei denen der Apikulus schön mit drauf ist und in eine Richtung zeigt die wahrscheinlich parallel zum Deckglas ist. Siehe Bild unten.
an dieser Stelle einmal ein Dankeschön für deine fundierten Berichte, ich lese/gucke gerne mit,
Gerne - freut mich sehr!
Für das Erstellen eines Eckigkeitsdiagrammes fehlt Norbert und mir ein entsprechendes Programm.
Naja, das braucht es nicht so wirklich, zählen muss man ja sowieso von Hand auf einem Sporensequenzblatt am besten (hier kein Schlehenröti):
"Software" hab ich auch keine - bzw nur einen schnell zusammen gebastelten Eckulator - anbei.
Aber das ist echt ne Spielerei - braucht eigentlich kein normaler Mensch. Nur Pilz-Nerds wie ich. 
Beste Grüße
Dieter
Hi,
Naja, es gibt nach Literatur schon noch Möglichkeiten:
a) clypeatum deutlich dunkler gefärbt als sepium
b) Wenn irgendwo eine rötliche Verfärbung bei Wurmlöchern/Verletzung, etc. auftaucht, ist es sepium
c) Sporen clypeatum: 6-eckig, leicht gestreckt. Sporen sepium: 5 bis 7-ecki, Qm = 1,1
--> ein Eckigkeitsdiagramm über viele Sporen erstellt sollte funktionieren.
E. aprile und E. saundersii noch im Auge behalten.
Beste Grüße
Dieter
Hi Norbert,
dann müsstest Du kurz die Sporenform aufnehmen.
Beste Grüße
Dieter
Hallo Norbert,
hast Du Guajak? Dann trage mal auf die Stielspitze (außen) auf oder im Hutfleisch (Zentrum).
Beste Grüße
Dieter
17.03.2018:
Eine kurze Runde im Schnee
Liebe Pilz-Freunde,
weil die Pilz-Sucht schon stark war im März, machten ich und Matthias uns auf
den Weg zu einer kurzen Runde.
Es lag noch Schnee - so mussten wir ein bisschen wühlen an der ein oder anderen
Stelle.
Schaut Euch an was wir alles fanden - viel Spaß!
Wir
schreiben den Bericht wieder zusammen.
Wie immer: Meine Texte sind schwarz,
Matthias'
Texte sind grün.
Meine Bilder sind mit einem schwarzen
☻,
Matthias' Bilder sind mit einem grünen☻gekennzeichnet.
Fundnummer: 2018-03-17-1030
Dieser
rosaoranger Pustelpilz ist Hypomyces rosellus in unreif; Es sind aber die
Strukturen der NFF (Cladobotryum dendroides) da, sodass die Bestimmung sicher
ist.
Rosafarbener Schmarotzerpustelpilz (Hypomyces
rosellus):
☻
☻
☻
Fundnummer: 2018-03-17-1045
An Elymus schließlich Lewia scrophulariae. Sowas hatte ich schon oft, aber nun
wurde mir durch einige Recherche und diesen Fund endlich klar, was der
Unterschied zwischen der und der noch häufigeren L. infectoria ist:
Die beiden Arten unterscheiden sich in der Sporengröße und v.a. der Anzahl der
Quersepten.
Die Gelhüllen der Art wurde meines Wissens nach noch nie fotografiert,
jedenfalls in keiner Publikation.
"Braunwurz-Kernpilz" (Lewia scrophulariae) an Quecke
(Elymus):
☻
☻
Asci + Sporen:
☻
☻
☻
☻
☻
☻
☻
☻
Fundnummer: 2018-03-17-1100
Die Nebenfruchtform vom Orangefarbigen
Brennesselbecherchen (Cylindrocolla urticae):
☻
☻
Wir fuhren weiter und sahen an der Straße ein paar Rohrkolben um einen Tümpel
stehen...
Daran gab es einiges zu entdecken...
Fundnummer: 2018-03-17-1115
"Rohrkolben-Kernpilz" (Comoclathris typhicola)
an Rohrkolben (Typha):
☻
Fundnummer: 2018-03-17-1119
Solche kleinsporigen Sippen an Typha werden auch Ph. typhae genannt. Die
allerdings soll keine Gelhüllen haben, hier waren andeutungsweise welche zu
erkennen, jedenfalls bei jungen Sporen, sodass ich den Fund auf jeden Fall
eustoma nenne, unabhängig davon ob Ph. typhae nun eine eigene Art ist oder
nicht.
Rohrkolben-Blattbräune (Phaeosphaeria eustoma)
an Rohrkolben (Typha):
☻
☻
☻
Dieses Bild zeigt Sporen von Phaeosphaeria (neuerdings Juncaceicola) typharum,
die auch mit am Rohrkolben wuchs.
☻
Fundnummer: 2018-03-17-1153
Die Art fanden wir erwartungsgemäß an einer mit seit Jahren bekannten Stelle.
Wir mussten nur etwas im Schnee wühlen.
Erlenkätzchen-Becherling (Ciboria amentacea):
☻
☻
☻
☻
☻
Fundnummer: 2018-03-17-1250
Den Abschluss mache ein eingeschneiter
Rotrandiger Baumschwamm (Fomitopsis
pinicola):
☻
Das war's für
heute....
Es war nur eine kleine Runde aber wir hoffen es hat Euch gefallen.
Beste Grüße
Dieter & Matthias
Hi Tuppie,
find ich auch! Aber hast Du denn schon die Geisterhand (Peyronelina glomerulata) gesehen?
Die ist auch ein wunderschönder Wasserpilz:
Schade dass wir noch kein Wasserpilz-Emoticon haben... 
Beste Grüße
Dieter
Hallo,
schaut auf den ersten Blick nach ner normalen Parasola auricoma aus.
Beste Grüße
Dieter
Danke an Euch alle!
Danke auch Christoph für die Informationen und Links.
Ja, Pilze an Flechten suchen wir natürlich auch. Mal sehen was uns die nächsten Touren so begegnet.
Ich habe es aber sehr auf Aquaten abgesehen. Oder nein - Quatsch. Ich habe keine bestimmte Spezialisierung und werde auch nie eine haben (können).
Dazu finde ich einfach in jeder Gattung, Familie usw. etwas spannendes. Findet jeder - muss man nur mal genau hin schauen.
Beste Grüße
Dieter
;-)))
Ja, da bekomm ich ja gleich Hunger...
Müsste man mal wissen ob man die Helicoils auch essen kann - hihiii..
Gruß
Dieter
Ich habe zu einer Aufnahme vom Tintling. Wie hast Du die Nahaufnahmen von den Cheilozystiden und den Pileozystiden hinbekommen? Ist das unter der Stereolupe fotografiert?
Hallo Claudia,
nein, keine Stereolupe. Einfach durch ein "billiges" 4-fach Bresser-objektiv durch fotografiert - aber wichtig ist die niedrige Numerische Apertur, die ist da bei diesem 0,1 und dann geht das eben auch in Luft. Ich nehme auch mal ein 10-er mit 0,25er Apertur, aber das wird dann ensprchend unscharf und hat hohe chromatische Abberation - weil man aber noch näher ran kann ist das oft egal.
Leider hab ich keine Kohle um mir da mal was vernünfitges zu kaufen (wurde ja Extrem-Baupfusch-Opfer wie einige von Euch schon wissen) - aber Matthias hat ein richtiges Kracher-Objektiv - der macht solche Lamellen-Bilder noch viel schärfer (siehe andere Berichte). Ich krieg da immer einen Anfall wenn ich seine Ergebnisse sehe ;-)))
Das ist übrigens die beste Methode um schnell malvor dem Präparieren festzustellen:
a) hat der Schwammer Velum
b) hat der Schwammer Kaulos
c) hat der Schwammer Pileos
d) hat der Schwammer Cheilos
e) hat der Schwammer Pleuros
f) welche Sporigkeit haben die Basidien
Und das alles oft sicherer als im Durchlicht.
Diese ganzen Infos bekommt man in ein, zwei Minuten - leider aber nur am Frischpilz... Da ich meistens Exsikkate habe ist das nicht so hilfreich für mich.
Beste Grüße
Dieter
Hallo zusammen,
Was den Pilobolus angeht, habe ich ehrlich gesagt nicht ganz verstanden, in welche Richtung der nun genau wächst.
Dazu mache ich das nächste mal ne genauere Doku...
Aber was ich sicher ausschließen kann ist, daß er die Gravitation zwischen sich und dem Substrat spürt. Die entsprechenden Kräfte sind viel zu klein, um meßbar zu sein.
Das denke ich auch.
> Temperaturunterschiede, Luftbewegung etc. haben da einen viel größeren Einfluß. Von daher würde ich einfach mal vermuten, daß der Pilz sich mithilfe von Erdanziehung und Licht irgendwie orientiert.
Erdanziehung ginge eben nur für die eine Achse. Licht kann ich ausschließen. Eine Abgedunkelte Ecke des Fladens zeigt die gleiche Wuchsrichtung.
Auch was den Abschußwinkel angeht, müßte man sich mal genau überlegen, was da jetzt optimal ist. Ohne Luftreibung wäre es ja im 45-Grad-Winkel. Mit Reibung ändert sich das dann zu flacheren Winkeln. Aber 10 Grad gegen die Horizontale kommt mir dann doch fast ein bißchen zu flach vor.
Stimmt... Na ich schaue mir das in zukunft mal genau an was da los ist.
die Dokumentation über den Pillenwerfer ist umwerfend. Nicht nur die genialen Fotos, sondern auch die Beschreibung, was der kann.
DANKE DANKE ;-))
Björns Anmerkung zu dem Abschusswinkel finde ich nachvollziehbar. Aber hängt der nicht auch von der Entfernung zum Zielobjekt ab?
Hm... tja... Was ist ein gutes Zielobjekt? Ich vermute einfach der Boden selbst, nur eben so weit wie möglich weg.
Wie weit schleudern die ihre Sporen eigentlich? Das können doch nur wenige cm sein.
Das weiß ich nict, aber vermutlich gehen die schon mehrere dezimeter weit. Die kleben dann seitlich an den Wänden der Feuchtekammer. Der Klebstoff ist wahnsinn. Man bekommt dies Sporen nur mit mechanischen starken Schubben mit scheuerpulver ab. Selbst einweichen hilft fast nichts. Das ist ein kleber der Spitzenklasse.
Kann es sein, dass die Pilze irgendwelche unbekannte "Sensoren" haben, mit denen sie ihre Ziele orten können?
Ziele denke ich nicht, aber sie seltsamen Sensoren betreffen eher die Gravitation - wenn man wüsste wie es geht, das wäre einer der größeten Revolutionen in der Technik des Jahrhunderts. Da forschen die Wissenschaftler schon Jahhunderte und sind nicht einen Schritt weiter gekommen.
Naja, oder doch einen kleinen. Inzwischen ist die "Druck-Theorie" die wahrscheinlichste. Es zieht uns also wahrscheinlich keine Kraft AN die Erde, sondern wir werden durch eine Kraft an die Erde GEDRÜCKT. Und zwar deshalb weil die unbekannte Kraft, welche alles erfüllt, auch das Vakuum, durch Materie abgeschwächt oder abgeschirmt wird. Je größer die Materie, um so größer die Abschwächung. Und weil die Erde groß ist hält sie viel von der Richtung ab die "unter" und ist also die wo quasi in Australien als gedanklich richtungsvektorisierte Kraft durch die Erde durch geht und bei uns übrig bleibt. Sie ist schwächer als die was von oben auf uns trifft und deshalb drückt es uns immerzu an die Erde. Wir denken das wäre eine "Anziehung" - dabei ist es ein Druck. Bei Magneten ist das ebenso. Die ziehen sich vermutlich keineswegs an (und ziehen auch kein Eisen an). Sie weden gegeneinander gedrückt und zwar von der gleichen unsichtbaren, unbekannten Kraft.
Wer es schafft, diese Kraft zu entdecken kann vielleicht eine Möglichkeit finden sie durch etwas anderes als Materie abzuschwächen. Dann hätte er das "Antigraviationsfeld" erfunden. Deshalb ist die Erforschung dieser Kraft und auch ihrer Sensoren, sie wir in jedem Pilz finden so interessant.
Beste Grüße
Dieter
Danke Claudia,
Tja, diese Tour hat wirklich sehr Spaß gemacht.... auch die ganzen Nachuntersuchungen.
Beste Grüße
Dieter
Danke an Euch alle, vor allem an Christoph für die wertvollen Hinweise.
Ich werde diesen mikroskopieren und sage Euch dann hier das Resultat.
Beste Grüße
Dieter
