Servus Felli,
ja die Orchideen sind am Anfang wirklich gar nicht so einfach, aber wenn man sich mal in die Grundsätze eingearbeitet hat recht übersichtlich, zumindest im Vergleich zu vielen Pilzgattungen 
… und auf jeden Fall erleichtern sie die Wartezeit bis zu den Wiesenpilzen ganz erheblich
Liebe Grüße
… noch zwei von heute Vormittag
Anacamptis morio
einer der schönsten Bestände in Oberösterreich mit mehreren tausend Exemplaren
Ophrys insectifera
Servus Felli,
ich bin bei deiner Nr.3 ganz bei Bernd und würde die auch Orchis mascula nennen.
D. majalis hat deutlich ausgebildete, grüne Tragblätter im Blütenstand und das oberste Laubblatt ist nicht wie bei deiner als Scheie ausgebildet sondern "normal" abstehen und erreicht den Blütenstand.
Schöne Funde übrigens... O. militaris würde ich auch gerne mal sehen, die ist mir bisher noch nie untergekommen.
Liebe Grüße
Auch von meiner Seite ein frohes Osterfest an alle und einen guten Start in die Schwammerlsaison
Liebe Grüße
Servus Tuppie,
erst mal natürlich ein herzliches Danke fürs zeigen dieser schönen Frühlingsbilder.
Ich wollte kurz auf die „Bonsai-Schlüsselblumen“ eingehen, weil wir vorgestern eine kleine Flächenbegehung in einem NSG gemacht haben, und bei mehreren Frühblühern einen derartigen Zwergwuchs beobachten konnten.
Neben den Schlüsselblumen war dies ganz besonders bei Globularia nudicaulis zu beobachten, deren Blüten heuer meist nur 1-2cm lange Stängel ausgebildet haben.
Liebe Grüße
Servus Martin,
ich hab letztes Jahr mal G. leucoxantha, G. geogenia und G. parma nachreifen lassen. Von ähnlichem Entwicklungsstand ausgehend (Asci vorhanden, Sporen maximal ansatzweise zu erkennen) hat es bei allen Kollektionen zwischen 2,5-3,5 Wochen gedauert, bis ich wirklich reife Sporen finden konnte.
Zum Nachreifen hab ich sie alle in geschlossenen Plastikbehältern im Kühlschrank gelagert, man sollte aber alle 2-3 Tage die Dosen öffnen und rausstellen um das Kondenswasser ausdampfen zu lassen, ansonsten verschimmeln sie recht zuverlssig.
Das Hauptproblem des Nachreifens am Standort hast du ja selbst schon angesprchen... meist sind da die Schnecken schneller als die Sporen.
Liebe Grüße
Lieber Norbert,
danke für den Hinweis... würde mich zwar sehr interessieren, aber neben der doch recht langen Anreise passt mir der Zeitpunkt leider gar nicht ins Konzept. Hab gerade viel zu viele Projekte am laufen und nebenbei fällt das genau in die Ablammungs- und Auftriebszeit, da bin ich "leider" in erster Linie mit den Dungpoduzenten und weniger mit ihren Ausscheidungen beschäftigt.
Liebe Grüße
Grüß dich,
zwischenzeitlich hab ich noch etwas über die Frage nachgedacht, und eigentlich ist die Anwort auf die Ursprungsfrage gar nicht so komplex. Ich versuche also mal das halbwegs verständlich wiederzugeben.
Erst keimen (auch in Kultur) monokoaryotishce Myzelien aus den einzelnen Sporen, welche sich jedoch möglichst schnell ein weieres, kompatibles monokaryotische Myzel suchen, um mit diesem zu einem dikaryotischen zu verschmelzen. Dieser zustand bleibt während der gesamten vegetativen Phase des Pilzes bestehen, also sind in einem Pilzindividuum noch immer die gesamten Erbinformationen der beiden Elternsporen enthalten. Der eigentliche Paarungsakt, also die Verschmelzung der Erbinformation, findet allerdings erst bei der Sporenbildung statt.
dH haben auch die Sporen aus einem einzelnen Sporenabdruck eine viel größere genetische Variationsbreite als dies etwa bei den selbstbefruchteten Samen einer einzelnen Pflanze der Fall wäre, weil ja selbst in einem Abdruck Sporen vorhanden sind, welche die verschiedenen Mixturen genetischer Information von zwei Organismen enthalten.
Liebe Grüße
Grüß euch,
also ich kann ein paar Infos zur gelebten Praxis beitragen, allerdings gibt es dazu noch immer eine Frage, die ich mir selbst noch nicht beantworten konnte, hab mich aber auch noch nie intensiver mit der Weitergabe von Erbgut bei Pilzen beschäftigt und mich bisher damit begnügt, dass es mit den gängigen Methoden in der Zucht funktioniert.
Standard in der Vermehrung von Pilzmyzelien ist normalerweise das Klonen, also die vegetative Vermehrung von Individuen, welche sich aufgrund ihrer Wachstums- und Fruchtungseigenschaften in der Zucht bewährt haben. Solche Stammkulturen lassen sich zur weitervermehrung übrigens, richtig durchgeführt, über Jahrzehnte lagern.
Zur Gewinnung neuer Individuen zur Weiterzucht gibt es wiedereum zwei Möglichkeiten.
Einerseits das klonen von Wildstämmen, welche logischerweise bereits dikaryotisch sind und die Erbinformation zweier Elternorganismen enthalten. Diese Methode ist aber in eher die Ausnahme.
Methode zwei, welche in der Praxis eher Anwendung findet, ist die Selektion geeigneter Zuchtstämme aus Sporen.
Hierzu werden Sporen aus einem Abdruck auf Agar-Platten aufgebracht, die daraus resultierenden dikaryotischen Mycelien optisch bewertet und vielversprechend aussehende Individuen wiederum in Reinkulturen gezogen. Diese werden dann auf ihre Wachstums- und Fruchtungseigenschaften getestet und die besten Genetiken wieder als Stammkulturen eingelagert, um damit weitere Substrate zu beimpfen.
Damit kommen wir dann zu der Frage, der ich nie weiter nachgegangen bin,auch wenn sie mich in meiner Anfangszeit in der Pilzzucht immer wieder mal beschäftigt hat. Danke fürs "in Erinnerung rufen" 
Die aus Sporen gezüchteten Myzelien sind zwar auch dikaryotisch, allerdings werden sie in der Praxis nicht aus Sporen zweier Elternorganismen gezüchtet, sondern aus einem Abdruck eines einzigen Pilzes. Trotzdem können sie extrem unterschiedliche Eigenschaften aufweisen, sowohl was das Mycel- und Fruchtkörperwachstum angeht, wie auch im Bezug auf die benötigten Fruchtungsbedingungen.
Warum allerdings eine derart große genetische Variationsbreite bei Individuen, welche eigentlich aus nur einem Elternindividuum hervorgehen, möglich ist, hab ich bisher auch noch nicht verstanden... aber es funktioniert auf jeden Fall und ich muss der Frage die Tage mal auf den Grund gehen
Liebe Grüße
Servus David,
bei deinem Fund handelt es sich um G. infula oder G. ambigua. Die beiden Arten sind ganz leicht anhand der Sporengröße zu unterscheiden.
Verlässliche makroskopische Merkmale zur Abgrenzung der beiden sind mir keine bekannt.
Liebe Grüße
Servus Karl,
also ich finde ja auch, dass es gut ist, wenn man den großen Wiesenbewohner ganz genau zeigt, welch wichtige Arbeit sie machen.
Hier hab ich gerade Hilfe bei der Untersuchung einer hübschen Gruppe von Clavulinopsis fusiformis erhalten 😄
Liebe Grüße
Servus Peter,
1. könnte gut passen, trau ich mir aber ohne zusätzliche Infos nicht mehr dazu zu sagen
2. würde ich eher für H. ceracea halten
3. C. pratensis
4. links: H. chlorophana, rechts: vermutlich H. ceracea
5. mikropflichtig, aber C. helvola könnte gut passen
Liebe Grüße
Servus Björn,
gratulation zu den schönen Zungen (und natürlich auch zu den Schönheiten aus den anderen beiden Beiträgen) und einen herzlichen Dank fürs Vorzeigen dieser schönen Doku und der ausführlichen Mikrofotos.
Solch ein Erdzungenaufkommen würde ich auch gerne mal erleben... bei mir waren es bisher immer nur Kleingruppen und Einzelfruchtkörper.
Einen herzlichen Dank auch an Karl W fürs Verlinken der weiterführenden Publikationen zu den Zungen... die ersten beiden waren mir noch gar nicht bekannt.
Liebe Grüße
Florian
Servus Werner,
so ganz sicher war ich mir bei der colemannianus anfangs auch nicht, obwohl die schon ziemlich riesig gewesen wären für fuscescens (bis ca. 5cm)
Hab sie zwar nicht selber nachuntersucht, dürfte aber nix anderes dabei rausgekommen sein. Vermutlich wurde die Hutfarbe durch die Witterung der vorangegangenen Tage beeinflusst (Wechsel aus trockenen Föhnwinden und mehrmals leichten Nachtfrösten)
Liebe Grüße
Grüß euch,
inzwischen sind hier reifbedeckte Wiesen am Morgen schon ein recht normaler Anblick. Ein paar Wiesenschwammerl haben sich aber in den letzten Tagen doch noch finden lassen.
Leider hat uns, während unseres Kartierungswochenendes im Nationalpark, in dem wir eigentlich nochmal ein Hauptaugenmerk auf die Almweiden legen wollten, der Frost einen Strich durch die Rechnung gemacht und wir waren "gezwungen" einen Tag in einen kleinen Urwald auszuweichen. Daher sind auch noch ein paar Fotos von nicht-Wiesenpilzen dabei, die aber nicht weniger schön anzusehen waren.
Mal sehen ob sich noch ein oder zwei Urwaldtouren ausgehen, bevor in den Bergen Schnee liegt, aber langsam wird's wohl Zeit die Dungpilz-Fruchtkammern auszupacken
Cuphophyllus colemannianus
Ramariopsis robusta
Hygrocybe ingrata
Clavaria (cf.) incarnata
Volvariella surrecta
Frantischekia mentschulensis
Camarops tubulina
Flaviporus citrinellus
die beiden letzten in trauter Zweisamkeit
Liebe Grüße
Servus Bernd,
wie Aretah schon geschrieben hat wird auch in diesem Fall der Blick durch‘s Mikro nicht ausbleiben.
Die von mir gestern gezeigten Fruchtkörper von G. atropurpureum waren beispielsweise auch bis 8x1cm groß.
Bei den Entolomen solltest du diese Saison nicht mehr viel erwarten. Das sind eher Sommerpilze.
30 Arten in einer Saison auf nur 4ha sind schon eine Hausnummer. Da wirst du in den nächsten Jahren sicher noch viel zu entdecken haben.
Liebe Grüße
Grüß euch...
langsam wird's ungemütlich und die Saison in höheren Lagen neigt sich dem Ende zu, aber die Gebirgsexkursionen der letzten Tage haben doch noch mal einiges an spannenden Funden zutage gefördert.
Durch eine Vielzahl an Neufunden konnte ich in dieser Saison auch die Artenzahlen bei den CHEGD's für das Gebiet des NP-Kalkalpen in unerwartete Höhen treiben.
Nach nur zwei Jahren der intensiven Kartierung sieht der momentane Stand so aus. (Bei den Entos kann ich nur eine Schätzung abgeben, weil ich mich, aufgrund der aktuellen Unklarheiten in der Gattung, großteils auf die Beschreibung und maximal vorläufige Benennung der Kollektionen beschränkt habe)
C6,H34,Eca.35-45,G5,D5
Entoloma madidum (schon wieder in einem neuen Suchgebiet)
Entoloma prunuloides
Porpolomopsis calyptriformis
Hygrocybe punicea
Hygrocybe fornicata
Hygrocybe ceracea
Gliophorus laetus
Microglossum atropurpureum
Clavulinopsis helvola
Ramariopsis robusta
Liebe Grüße
Servus,
absoluter Wahnsinn, und dann noch solche Prachtexemplare! Die Art ist inzwischen wohl die unangefochtene Nr. 1 auf meiner Pilz-Wunschliste
Liebe Grüße
Servus Martin,
das ist ganz sicher H. cirrhatum und das Holz ist auch eindeutig Buche.
Kann man auch schön an der Struktur der Rindeninnenseite und der Schnittfläche erkennen
Liebe Grüße
Dermoloma josserandii
Entoloma atrocoeruleum
Hygrocybe punicea
Arrhenia retiruga agg.
Liebe Grüße
Grüß euch,
heute geht's mal wieder weiter. Leider waren die letzten Touren nicht sonderlich ergiebig, und inzwischen schaut der Schnee schon ziemlich weit runter, aber ich hoffe mal, dass es in den nächsten Tagen doch noch mal weiter rauf ausapert. Bodenfrost sollten auch die Hochalmen noch keinen abbekommen haben, und in niedrigeren Lagen geht inzwischen ziemlich die Post ab.
Lycoperdon caudatum
Cantharellopsis albidum
Entoloma catalaunicum
Entoloma madidum
Cuphophyllus russocoriaceus
Cuphophyllus colemannianus
Cuphophyllus virgineus
Cuphophyllus (virgineus var.) fuscescens
Cuphophyllus (virgineus var.) ochraceopallidus
Cuphophyllus flavipes
Hygrocybe splendidissima
Hygrocybe chlorophana
Hygrocybe ingrata
Liebe Grüße
Servus und Willkommen im Forum
im Link anbei findest du alle relevanten Infos, Baupläne, Formeln etc.
Liebe Grüße
Grüß euch...
also langsam werd ich neidisch... die Möglichkeit neben einem Haufen Wiesenpilzlern noch H. spadicea zu treffen und am Ende noch Gansl futtern... ich wünsch euch viel Spaß, gutes Wetter und einen Haufen bunter Schwammerl
Liebe Grüße
Servus Adrian,
Cantharellus und Craterellus sind die beiden Schwestergattungen in der Familie der Cantharellaceae (Pfifferlingsartige).
Cantharellus (Pfifferlinge) umfasst die typischen Eierschwammerl-Arten
Craterellus (Kraterellen) umfasst die ganzen restlichen Leistlinge, also die ganzen Trompetenpfifferlinge uÄ
Liebe Grüßer
Grüß euch,
... lange hat's gedauert, bis es mich das nächste Mal auf die Alm verschlagen hat...
weil sie einfach viel zu schön sind um sie nicht zu zeigen, und uns die beiden Arten heute den ganzen Tag treu begleitet haben, gibt's zuerst eine kleine Wiederholung
Porpolomopsis calyptriformis
Clavulinopsis fusiformis
Aber natürlich gab es auch noch ein paar Neuigkeiten
Entoloma bloxamii s.l.
Pseudotricholoma metapodium
Pseudotricholoma cf. metapodium (auch die vergammelten Fruchtkörper rundum haben kein nennenswertes Schwärzen gezeigt. Wird wohl nix anderes rauskommen, aber mal schauen)
Geoglossum cf. vleugelianum
im Sphagnum am Rand eines Übergangsmoores; Spp: spätreifend, 3-7 Septen, 42-75µm; Paraphysen braun, sehr variabel geformt, Septen teilweise eingeschnürt, teilweise nicht, Endzellen nur teilweise verdickt, zylindrisch, keulig, pyriform, globos
Liebe Grüße
Servus Karl,
die Bovista hab ich nach Jeppson bestimmt. Stimmt perfekt mit der von ihm als B. pusilla vorgestellten Art überein.
Die Geoglossum habe ich anhand der Stielbekleidung, in Kombination mit den recht langen Sporen (bis 105, mittel etwas über 90µm) und den Paraphysen mit meist +-subglobosen, angeschwollenen Endzellen als G. fallax bestimmt. Die Fruchtkörper waren war noch ziemlich unreif (Septierung der Sporen war noch nicht zu erkennen), aber nach den mir vorliegenden Infos sollte da nichts anderes in Frage kommen
Abgeglichen hab ich sie mit der Beschreibung von Kees Roobeek in "aardtongen in de duinen van noord kennemerland".
Liebe Grüße
