Hallo Karl
Danke! Also immerhin ein Rötling bestimmt.
Was mache ich jetzt mit den anderen zwei... bringt es etwas wenn ich die noch im Entoloma-Forum der DGfM stelle?
Oder vielleicht eher die nächste Publikation von Noordeloos abwarten und in der Zwischenzeit sequenzieren lassen.
Gruss Raphael
Hallo Andreas
Ja genau... bei Noordeloos bin ich den "nicht blauen" Weg gegangen, da kam ich zu longistriatum. Das passte mir aber nicht, weil ich keine Cheilos gefunden habe.
Gröger ist bei der Stielfarbe etwas toleranter, da kommt man dann eher zu asprellum.
Mal schauen, vielleicht schaut noch Karl W vorbei. Letztes Jahr hatte ich eine makroskopisch ähnliche Kollektion, da kam longistriatum bei raus. Die hatte aber massenhaft Cheilozystiden.
Gruss Raphael
Jetzt ist gut mit den Bildern und gratuliere zu den tollen Funden!
Hallo Schupfi
Ich fürchte du bist ein Opfer des Forum-Bugs geworden, man sieht die Bilder erst ab Pilz Nr. 16.
Gruss Raphael
Hallo Wolfgang
Vielen Dank!
Bei 3 habe ich mich nochmal auf die Suche nach Schnallen gemacht. An den Basidiolen ist das schon verflixt schwer, wohl einfach Übungssache.
Ich konnte aber immer noch keine finden. Die Basidien waren mehrheitlich 4sporig, ich habe aber jetzt auch einzelne 2sporige gesehen.
Hier eine Basidie wo man drei der vier Sporen auf dem Bild sieht (die vierte ist genau hinter der mittleren)
Und hier drei Basidiolen-Bilder:
Angenommen, ich hätte die Schnallen übersehen:
Dann würde ich nach FE5a schnell in einer Sackgasse mit E. insidiosum als einzige Option enden.
Alle anderen Arten der Gruppe scheiden aus, weil sie einen faserigen Stiel haben sollten.
E. placidum selber kann es von der Ökologie her eigentlich nicht sein, in dem Wald gibt es keine Buchen, in der unmittelbaren Umgebung nur Kiefern.
Gruss Raphael
Hallo Oehrling
Danke für deine Bemühungen!
Ja, für die Täublinge fehlen mir noch einige Grundlagen. Leider sind die erwähnten Seminare recht weit weg für mich, ich muss also weitgehend autodidaktisch an die Sache ran. Deshalb möge man mir ein paar etwas stümperhafte Bestimmungsanfragen verzeihen 
Beim dritten Täubling hatte ich die Zusatzangaben vergessen, habe ich ergänzt während du wohl schon am schreiben warst.
Und beim Spp war ich mir eigentlich sicher, habe es brav mit der Farbtabelle verglichen die mit der Marxmüller-CD geliefert wurde.
Gruss Raphael
Hallo zusammen
Ich werde mit den Täublingen nicht warm...
und mein Pilzkühlschrank ist berstend voll mit anderen Kollektionen, die noch auf eine Untersuchung warten:
Deshalb habe ich jetzt keine Nerven, mich weiter mit diesen drei Täublingen von letzter Woche rumzuärgern.
Bevor sie jetzt namenlos in der Versenke landen, stelle ich sie mal hier rein. Vielleicht kann ja noch jemand einen Namen dran schreiben.
Habitat war bei allen gleich: Mischwald mit Fichten, Kiefern, Buchen, Birken, Flaumeichen.
Alle Bilder entstanden nach langem Dauerregen, die Farben sind wohl deshalb nicht wirklich verlässlich und die Hüte wirken viel schleimig-klebriger als sie es sein sollten.
1)
Vielleicht eine banale Russula ochroleuca, dafür ist mir der Hut aber zu blass.
- Spp creme (IIa)
- Geruch fruchtig
- Geschmack mild
Makrochemische Reaktionen: Eisensulfat und KOH negativ, Phenol und Guajak siehe Bild
Sporen warzig mit wenigen Verbindungen, um 8-10 x 6.5-7.5 µm
HDS in SV, ohne Pileozystiden, Primordialhyphen inkrustiert
Cheilozystiden
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Der hier ist wohl völlig verwaschen, nur in der Hutmitte sieht man noch die richtigen Farben.
Wenn ich schlüssele, komme ich eigentlich nur auf R. azurea. Aber kann der so ausblassen?
- Spp weiss (Ia)
- Geruch fruchtig
- Geschmack mild
- Stiel gekammert-hohl
- makrochemische Reaktionen wie oben beim ersten Täubling
Sporen isoliert warzig
HDS (in SV) auch hier ohne Pileozystiden
Cheilozystiden
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Bei dem dritten habe ich nicht einmal einen vernünftigen Vorschlag.
- Spp creme (IIa)
- Geruch fruchtig
- Geschmack mild
Nach einem Tag im Kühlschrank sahen sie so aus
Makrochemische Reaktionen wie oben
Sporen: 8.5-10 x 6-7.5 µm, Warzen teilweise verbunden
HDS in SV: Eigentlich wieder dasselbe wie oben, aber kaum inkrustiert
Cheilozystiden
Bin gespannt auf eure Vorschläge.
Lg, Raphael
Hallo zusammen
Ich habe am Freitag drei schöne Gruppen von Leptonien gefunden. Nun bilde ich mir ein, ich hätte sie bestimmt, aber gut möglich dass ich daneben liege.
Vielleicht kann ja hier jemand etwas dazu sagen.
Habitat war ein montaner Mischwald (Fichten, Kiefern, einzelne Lärchen, Birken, Erlen)
1) Entoloma exile
Die wuchsen im Waldrand im hohen Gras
Sporen bis ca. 11.5 µm lang
Cheilozystiden keulig, LS heterogen
HDS: Intrazellulär pigmentiert, am Rand eine Kutis, zur Mitte eher ein Trichoderm.
Die HDS-Endzellen sind breiter als z.B. Noordeloos es angibt.
Weitere Angaben:
- Keine Schnallen gefunden (nirgends)
- Geruch unauffällig, schwach
- Basidien 4-sporig
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2) Entoloma cf. asprellum
Hier störe ich mich etwas an der Stielfarbe, da ist zu wenig blau drin. Allerdings scheint das alleine kein sicheres Merkmal zu sein.
Der Rest passt ganz gut, geschlüsselt nach Gröger (mit FE5 klappte es irgendwie nicht).
Allenfalls könnte es auch E. longistriatum sein, dafür scheint mir der Hut aber zu schwach und zu kurz gerieft zu sein.
Sporen bis 10.5 µm lang
Lamellenschneide ohne Cheilozystiden (habe mehrere Präparate gemacht)
HDS in der Mitte trichodermal mit intrazellulärem Pigment, zum Rand hin eine Kutis
Weitere Angaben:
- geruchlos
- keine Schnallen
- Basidien 4-sporig
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Dann der schwierigste Fall. Da meint man so ein markanter Rötling sei einfach zu bestimmen...
Entoloma cf. fulvoviolaceum
Eigentlich glaube ich selber nicht daran, weil diese Art so selten ist. Aber ich lande sowohl bei Gröger als auch in der FE5 bei dieser Art.
Vermutlich bin ich da irgendwo falsch abgebogen...
Sporen bis 12.5 µm lang
HDS fast trichodermal, zum Rand hin weniger abstehend, aber nirgends eine Kutis
Intrazellulär pigmentiert
Lamellenschneide heterogen, Cheilozystiden schwer zu finden aber stellenweise vorhanden.
Weitere Angaben:
- Keine Schnallen
- Basidien 4-sporig
- Geruch im Schnitt mehlig
Noordeloos beschreibt die Art mit orangebraunem Hut, gemäss dem folgenden Paper ist die Farbe aber sehr viel variabler:
(PDF) Entoloma fulvoviolaceum Noordel. & Vauras - not previously reported from Norway
Dort sind auch Kollektionen abgebildet, die meinem Funde farblich sehr nahe kommen.
Gruss Raphael
Hallo zusammen
Danke euch für die ausführliche Erklärung. Schon spannend, wie widersprüchlich die Literaturangaben selbst bei einer scheinbar so trivialen Art sein können. Ich dachte die Angabe in der FN und die Bestätigung bei Munoz reichen - aber ok, offenbar nicht. Hinzu kommt, dass ich keinen Abwurf gemacht habe. Der Hut war vom Dauerregen so durchnässt, das wäre nur eine braune Brühe geworden. Ich lege den Fund also als L. scabrum ab. Insbesondere die fehlende Grünfärbung in der Basis hat mich überzeugt.
Lg, Raphael
Hallo Pablo
In der FN flog der bei Frage 10 raus (mittlerer Sporen-Koeffizient, welcher klar unter 3 ist). Die 2.8-2.9 bei L. schistophilum würden genau passen. Munoz gibt für L. scabrum sogar 3.4-3.8 an, leider ist dort L. schistophilum nicht drin.
Gruss Raphael
Hallo Jörg
Danke, das hilft schon weiter 
Christoph scheint leider im Moment abgetaucht zu sein...
Gruss Raphael
Doch, in der Stielrinde und auch in der Mitte. Vielleicht kommen die Farben auf dem Bild schlecht rüber...
Hallo zusammen
Ich brauche hier die Unterstützung der Röhrlings-Fanatiker.
Dieses Leccinum habe ich heute gefunden, und drehe mich bei der Bestimmung im Kreis.
Habitat war natürlich ein Mischwald. Es gab Fichten, Kiefern, Birken und vereinzelt Lärchen.
Sporen um 16x5.5 µm, Q um 2.8
HDS
Schnittbild nach ca. 10 Minuten: Die rosa Verfärbung tritt sofort ein und wird dann nur langsam etwas intensiver.
Je nachdem womit ich schlüssele, komme ich auf L. schistophilum, variicolor, oxydabile oder roseofractum.
Aber nirgends sind die alle zusammen drin, so dass ich sie vergleichen könnte.
Kann jemand das anhand dieser Angaben eingrenzen?
Gruss Raphael
Ernsthaft? Ich habe den hier in der Gegend noch nie gefunden, weil es praktisch keine Laubwälder gibt.
Aber gut zu wissen, danke.
Gruss Raphael
die Steinpilze schaun aber schon stark nach B. aestivalis aus.
Hallo Werner
ja das tun sie... aber es gab im Umkreis von 20 Metern nur Fichten. Hab sie dann aber auch nicht genauer angeschaut.
Vielleicht hast du auch recht und ich habe irgendwo einen Laubbaum übersehen.
Gruss Raphael
Hallo Andreas
Die HDS hatte ich in zwei Präparaten gründlich durchsucht, weil ich mich erst wunderte dass ich gar keine Dermatozystiden finde.
Da bin ich also recht sicher dass es keine gab.
Der Standort könnte schon stimmen. Es war ein montaner Mischwald (ca. 1000m) auf Kalk, normalerweise sehr trocken, wo auch ein paar eingestreute Buchen wachsen.
Aber mit R. vinosobrunnea kann ich mich auch anfreunden. In der FN ist der gar nicht drin (!), deshalb hatte ich den nicht auf dem Radar.
- Ich habe viele Sporen knapp unter 8 µm gemessen, das passt nach Sarnari besser zu R. vinosobrunnea
- Das Sporenornament habe ich nun auch nachgemessen und konnte Warzen bis 1 µm finden
- Einzig störend ist das doch sehr deutlich netzige Ornament, das passt wieder besser zu R. alutacea
- Die Phenol-Reaktion ist wohl sehr ähnlich, denke nicht dass uns das weiter gebracht hätte.
Ich belasse es mal bei Russula cf. vinosobrunnea, und besuche den Standort diese Woche nochmal.
Es hat noch fleissig geregnet, vielleicht finde ich ja noch frische Fruchtkörper.
Gruss Raphael
Hallo Oehrling,
danke, aber leider waren die Maden und der Schimmelbefall schneller, ich musste die FK gestern Abend entsorgen.
Nächstes Mal weiss ich es besser. Ich habe nur die Reaktionen getestet die beim Schlüsseln in der FN abgefragt wurden.
Muss mich wohl daran gewöhnen, dass ich bei Täublingen zur Sicherheit immer alles teste.
Gruss Raphael
Hallo zusammen
Vielen Dank für die Rückmeldung!
Die Farben und der scheinbar klebrige Hut könnten täuschen, weil ich direkt nach sehr viel Regen unterwegs war. Abgetrocknet waren die Farben sehr viel trüber.
Eine Rotverfärbung vor dem Schwärzen konnte ich auch nicht feststellen, habe das fast permanent beobachtet.
Übrigens war das Fleisch mild, nur die Lamellen scharf. Das hatte ich oben nicht erwähnt.
Das in Kombination mit der vakuolären HDS-Pigmentierung schien mir in der FN eindeutig für anthacina statt acrifolia zu sprechen.
Gruss Raphael
Hallo zusammen
Gestern Mittag gab es eine kleine Runde im Mischwald. Raritäten gab es keine, aber ein paar Täublinge.
Ich bin immer noch dran mich intensiver mit den Täublingen zu beschäftigen. Daher wäre ich froh, wenn jemand hier laut schreit, falls meine Bestimmung falsch ist:
1) Russula aurea - ok der ist wohl klar, habe ihn auch nicht mitgenommen.
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2) Russula anthracina
- Fleisch schwärzt im Schnitt innert 5-10 Minuten
- Spp weiss
- Geruch unauffällig
- Lamellen ziemlich scharf
Sporen mit feinen, verbundenen Warzen
Hymenialzystiden in SV grau
HDS mit vakuolärem Pigment in SV
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Russula cf. vinosobrunnea
- Geruch etwas fruchtig
- Mild
- Spp gelb (IVb). Lamellen auch, sieht man auf dem Foto dummerweise nicht
- Fleisch im Schnitt gelb verfärbend
- Stiel nach einer Nacht im Kühlschrank mit Rosatönen im unteren Bereich
Sporen um 7.5-9 x 6.5-7.5 µm, netzartig, Ornament bis 1 µm lang
HDS in SV, ohne Dermatozystiden oder Primordialhyphen.
Hymenialzystiden in Kongorot, um 60 µm lang.
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Natürlich gab es auch ein paar andere Sachen:
Agaricus moelleri agg. - mit Tintengestank und gilbender Basis. Unreif, deshalb nicht weiter untersucht.
Boletus edulis. Die durften ausnahmsweise für den Kopftopf mitkommen, nachdem mein dreijähriger Sohn sie schon ausgerissen hatte.
Marasmius rotula
Lg, Raphael
Hallo zusammen
Diese Woche hatte ich noch keine Zeit in den Wald zu gehen. Aber im Garten gab es zwei schöne Samthäubchen, damit war ich dann auch zufrieden:
1: Conocybe albipes
Die Sporen sind zum Teil recht unregelmässig geformt, deshalb war ich bei der Bestimmung anfangs unsicher.
Cheilozystiden...
... HDS mit einzelnen Pileozystiden...
... und Stiel ohne lecythiforme Kaulozystiden.
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Und beim zweiten Samthäubchen kommt Freude auf:
2: Conocybe aurea - die vermehren sich wie die Karnickel.
Im Mai fand ich die ersten paar jämmerlichen Fruchtkörper, es kommen immer wieder neue und immer mehr.
Ich schätze jetzt die Population auf 40-50 Fruchtkörper. Sie sind mir höchst willkommen, ich würde wohl eher die Gemüseernte opfern als diese Pilze zu schädigen.
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Am Sonntag war ich noch kurz im Wald, da war wenig los, aber immerhin:
3: Mycena viridimarginata
Die grünen Schneiden kann man hier nur erahnen, mit einer starken Lupe sieht man sie am Hutrand recht gut.
Sporen in Melzer
Cheilozystiden mit fingerförmigen Auswüchsen
HDS mit kleinen Auswüchsen
Stipitipellis ebenso
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Und dann noch eine unerwartet schwierige Bestimmung. Ich hatte die nur aus Langeweile mitgenommen. Ein Purpurfilziger Holzritterling halt.
Aber eben nicht der Arttypus, sondern:
Tricholomopsis rutilans var. albofimbriata
Hier sieht man die Lamellen, die fast glasig wirken. Grund dafür:
Riesige Cheilozystiden. Im Gegensatz zur normalen Tricholomopsis rutilans gibt es zwei auffallend verschiedene Formen von Zystiden:
Relativ kleine/keulige, und riesige, schlank spindelige. Letztere sind häufiger, kollabieren aber nach 2-3 Tagen im Kühlschrank zunehmend.
Die spindeligen Zystiden sind teilweise septiert oder gegabelt.
Ich konnte Zystiden bis fast 300 µm finden, damit übertreffen sie bei weitem alles was ich in der Literatur finden konnte (Maximum in der Funga Nordica mit 200 µm).
Pleurozystiden waren fast keine vorhanden, wenn überhaupt dann direkt bei der Schneide.
Dadurch scheidet die kleine Tr. flammula aus.
Die Sporen haben einen etwas höheren Q-Wert als beim Arttypus. Meistens um 1.6, einzelne bis 1.9.
Diese Varietät findet sich in der mir verfügbaren Literatur selten.
Die Darstellung in von A.H. Smith 1960 (Tricholomopsis (Agaricales) in the Western Hemisphere - Brittonia 12) überzeugt mich aber.
Ludwig erwähnt sie zwar, macht es sich aber zu einfach ("mit weisser Lamellenschneide"). Auf die doch deutlichen mikroskopischen Unterschiede geht er nicht ein.
Ob diese Varietät schon molekular untersucht wurde weiss ich nicht, mal abwarten.
In der Gattung werden ja laufend neue Arten beschrieben, es würde mich nicht wundern wenn diese Varietät irgendwann in den Artrang erhoben wird.
Lg, Raphael
Hallo Schupfi
Jetzt bin ich neidisch, ich finde viel zu wenig Dachpilze.
Mikroskopieren tu ich die immer in Kongorot, nur für ganz exakte Sporenmessungen in Wasser. Braucht es aber meistens nicht.
Melzer bringt dir bei Dachpilzen nichts, die Sporen sind inamyloid. HDS und Zystiden siehst du in Kongorot oder KOH besser.
Gruss Raphael
Hallo Pablo
Zu Befehl... hier das Schnittbild. Das Fleisch ist recht weich und faserig, es lässt sich leicht in 90° zu den Poren aufbrechen.
Die Poren sind ca. 10mm lang. Für A. ramentacea scheinen sie mir aber deutlich zu fein zu sein.
Mit Leucopaxillus compactus und Lactarius zonarius im Doppelpack habe ich noch keine Erfahrungswerte.
Der Milchling war ein Perser für mich, Eichenwälder sind hier sehr rar. Diese Flaumeichenwälder sind normalerweise im Sommer etwa so feucht wie die Wüste Sahara.
"Normale" Eichen wie ihr sie kennt gibt es hier gar nicht.
Gruss Raphael
Hallo Nobi
Das hoffte ich auch, aber die Sporen sind zu gross, bis über 18 µm.
Gruss Raphael
Hallo,
Hat doch Werner auch geschrieben , hat nur statt 1 / 2 - A / B genommen.
Oder hab ich was missverstanden ?
Grüße
Norbert
Ja, ich bin doof, danke für den Hinweis. Im zweiten Beitrag habe ich mich vertan. Habs jetzt korrigiert.
Hallo Werner
Die Namen stimmen, aber es ist genau umgekehrt
1=evosmus
2=zonarius
Aber ok, es ist so von oben auch fast unmöglich. Man kann allenfalls erahnen, dass die Zonierung auf dem ersten Bild zur Mitte undeutlicher wird.
Gruss Raphael
