Beiträge von ogni volta

Servus zusammen, ich habe gerade im Auto eine Reportage über Pilzleder auf BR24 gehört. Leider gibts die (noch?) nicht zum Nachhören auf der Website, ich möchts trotzdem kurz anreissen, weil ich die Idee gut finde. Ankündigungen alle möglichen Produkte aus pilzlichem Material herzustellen gab es in den vergangenen Jahren ja immer wieder- bis jetzt hat es allerdings meines Wissens noch kein Produkt (außer vielleicht Filzhüten aus Zunderschwamm) in den Massenmarkt geschafft. Laut dieser Reportage ist nun zumindest ein fränkisches Sportbekleidungsunternehmen daran einen Sportschuh aus einem myzelialen Kunstleder herauszubringen und hat den Launch für nächstes Jahr mit großem Tamtam angekündigt. Das stimmt mich mal zuversichtlich dass das nun vielleicht wirklich mal klappen könnte. Der Markenname des Werkstoffes lautet "Mylo" und soll aus in Bioreaktoren in großem Maßstab produziertem Fomfom-Mycel hergestellt werden. Zumindest Prototypen kann man sich auf der Website des US amerikanischen Unternehmens ansehen, die wirklich wie "echtes"... Kunstleder... aussehen. Wie ökologisch das Produkt dann letztlich wirklich ist ist die andere Frage. Aber immerhin schon mal ein Schritt. Ich bin gespannt ob man nächstes Jahr nochwas davon liest oder ob das nur mal wieder eine Greenwashing PR war..

Ps: Werbung für kommerzielle Produkte lehne ich ab (selbst für Dinge die ich gut finde) daher ist dieser Artikel ohne Link vielleicht etwas nakt, aber ihr könnt ja bei Interesse selbst in einer Suchmaschine eurer Wahl nach den Schlagworten suchen.

einen schönen Nachmittag,

Ingo

Merci Werner, des bassd!

Servus Freunde des Kleinzeugs, nichts ahnend habe ich letztens dieses Kiefernästchen eingesteckt, in der Meinung es sollte eine häufige Allerweltsart sein, die bestimmt nicht schwer zu bestimmen sei. Das kann natürlich trotzdem sein - aber irgendwie hab ich ein Brett vorm Kopf. Ich hätte die kleinen FK makroskopisch am ehesten bei den Pyrenomyceten verordnet. Allerdings haben sie hyaline riesige Sporen. Ich hielt sie zuerst für tote Nematoden weil sie so lang ausgezogene Enden haben. Bis ich Sporen aus zerstörten Asci herauslugen sah die auch diese fädigen Enden hatten. Dürfen Pyrenomyceten so helle Sporen haben? Jedenfalls passt keine Spur.. Rosellinia die ich zunächst erwogen hatte, haben 1/10 so große Sporen ...

Hat jemand einen Gattungsvorschlag für mich?

Das Ästchen ist ca 8-10mm stark

Porus in Lugol eher -

Paraphysen zylindrisch ohne Auftreibungen

Aus abgerissenem Ascus herauslugende Spore

Spore mit fadenförmigen Enden

Maße ungenau da nur 5 freie Sporen halbwegs ausgestreckt zu liegen kamen, der Rest war geringelt oder nicht senkrecht zum Strahlengang: 140 - 145.8 × (3.9) 3.92 - 5.29 (5.3) µm

Viele Grüße Ingo

Ps: die Milbe (?) wohnte auch darin - hat sie wirklich 4 Augen?

Hallo Martin, danke für Deinen ausführlichen Beitrag und die interessanten Hintergrundinfos zu den gekräuselten Schilden! Toll dass Du die Flechte im Bokeh der Fotos bereits erspäht hast! Der Standort ist schon recht geschützt gelegen ohne grössere Strasse, Landwirtschaft oder Industrie in der näheren Umgebung sodass ich mir das schon vorstellen könnte, dass da auch mal was anspruchsvolleres vorkommt. Es ist übrigens nicht so dass mich Flechten nicht interessieren würden, sie sind ja sehr hübsch, ich halte die Bestimmung nur für (noch) schwieriger als bei den solitären Pilzen, sodass ich mich erstmal auf die konzentriere

Aber ich freue mich wenn Du mit uns auch hin und wieder Ausflüge in die Lichenologie teilst oder auf die Flechten im Bild hinweist

Viele Grüße an der Neckar, Ingo

Hallo Martin, sorry meine Antwort hat etwas gebraucht, ob die Flechten interessant sind oder Allerweltsarten kann ich nicht beurteilen, da ich außer Xanthoria parietina keine kenne

Aber vielleicht kannst du uns ja mehr sagen? Glücklicherweise hab ich den Ast noch auf dem Balkon gehabt. Bei Interesse gerne noch mehr Fotos per PN oder einem Extra Faden oder so.

Viele Grüße Ingo

Zitat von Steve_mt

One thing in common, there is nothing exciting to see!
Your image also fail to show distinct reproductive parts and spores.

Hi Steve, come on, don’t be so hard! did you have a jelly fungus beneath the mic? Its like playing pinball.. the specimen shoots from one side to the other as you are trying to flatten it with the coverglass.. once you managed it everything looks the same- if it looks at all.. hyaline like glass noodels. So you put dye on it and.. hyphae en masse in between the jelly, other stuff rare. So taking that in account i am pretty proud I finally found some basidia- which you can see in the center of mic pic 3 (head with 4 dreadlocks!). No spores though, you got me there

But its irrelevant anyway.. as Andreas noted the cut fruitbody reveals: no real jelly..

soo lets see what it looks like when it grows.. anything is possible.. on a hidden island far out…

Hi Steve, i cannot tell you what this is neither, if T. helvelloides could be an option, ripe fruitbodies should look like this beneath the microscope, you could compare in case. Kind regards, Ingo

Ps: personally I rather not think it is tremiscus. I have no other idea unfortunately. So i am looking forward to how it develops!

Zitat von Corne

wurden sie dann im Topf schon schleimig. Angeblich soll es helfen, die Huthaut abzuziehen. Aber das steht in keinem Verhältnis zum Aufwand!

Danke für die Warnung

damit ist das Thema für mich durch…

@ Schupfi die gelben Flocken habe ich kaum bemerkt, die haben mich mangels Kenntnis nicht gestört…Du könntest damit schon Recht haben so im Nachhinein sind sie schon auffällig.
Lg Ingo

PS: traut sich jemand noch was zum Letzten zu sagen?

Servus Schupfi, du hast doch mittlerweile einen Lupensatz: tu dir den Gefallen und werf den Borstenscheibling mal drunter! Du wirst es nicht bereuen;)

LG Ingo

Hallo Corne, danke für deinen Erfahrungsbericht! Ich kann mir gut vorstellen dass auch mich eine süßliche Note stören könnte. Wie war’s mit der Schleimigkeit im gekochten Zustand? In der Hand war der vollkommen trocken- sonst wär ich gar nicht auf die Idee gekommen. Da bin ich empfindlich- Maronen zB kann ich nicht essen. Lieben Gruß Ingo

Servus zusammen, nachdem viele von euch ja immer noch schöne Funde machen, hab ich nochmal Motivation gesammelt gen Süden zu fahren um einen Spaziergang auf einer Hochebene bei Greding in der Oberpfalz zu unternehmen. Zwischen den Feldern fanden sich immer wieder kleine Wiesenabschnitte die vermutlich aufgrund geringer Bodenauflage über den Riffkalkbänken nur extensiv genutzt werden. Sicherlich ist aufgrund der nahen Felder schon mit einem gewissen Stickstoffeintrag zu rechnen, sodass ich keine große Hoffnungen auf Saftlinge oder dergleichen hatte- die gabs auch nicht- aber doch ein paar abwechslungsreiche Sächelchen. Los gings mit mehreren großen Hexenringen von Lepista panaeolus und personata, die ich nicht photographiert habe, da sie dieses Jahr einen Lauf gehabt zu haben scheinen und ich sie schon genug ablichten konnte- die letzten Jahre habe ich bewusst gesucht und nie gefunden, dieses Jahr waren die Lilastiele überall. Am Parkplatz, am Bolzplatz, am Wegrand, auf der Verkehrsinsel, crazy.

Doch ein Photo wert, und ein Erstfund, waren diese Schmierröhrlinge unter Fichte und Kiefer, die ich für ringlose Butterpilze (S. collinitus) halte:

Interessant fand ich dass sich die Poren auf den Stiel herunter ausdehnen

Vermutlich ein Hasenstäubling (Lycoperdon utriformis)

den gabs auch spätern nochmal in Gelb:

Lecker roch, wenn auch nicht ganz so intensiv wie der Marzipanfälbing (meine Nr 1 der Pilzgerüche bisher): der Marzipanschneckling unter Fichte, leider ein Einzelexemplar, sonst hätt ich ihn gern mal gekostet:

Mycena pura s.l. mit tollen violetten Stielen:

der Kaffee Gabeltrichterling (Pseudoclitocybe cyathiformis) mitten auf der Wiese?! gibts doch gar nicht. Eher doch ein Rötling mit seidigem Glanz. Leider nicht eingesteckt. Achja da fällt mir ein viele viele Weichritterlinge gabs auch, die ich nicht abgelichtet habe.

Gezonter Adermossling (Arrhenia spathulata) klein aber fein:

Goldmistpilz (Bolbitius vittelinus) im 70er Bob Stil, schon ein bisschen der Lack ab:

Und zum Schluss einer, der mir sehr gut gefallen hat wegen seinen extrem entfernt stehenden Lamellen und dem gelbroten Stiel. Da sie leicht gescheckt waren denke ich es sollte ein Düngerling (Panaeolus) sein; mit den Sporenmaßen könnte sogar der gewöhnliche Heudüngerling gut passen. Wobei ich nirgends Aufnahmen mit so entferntstehenden Lamellen finden konnte... LBM oder doch L(B)MAA? Aber ja, vieleicht hat ers halt gern luftig unter den Achseln?

Cheilozystiden

gibts eigentlich noch Bowlinghallen in Deutschland? ich war seit Jahrzenten nicht mehr

Sporen:

(12.1) 12.8 - 14.1 (14.4) × (6.7) 6.8 - 8 (8.2) µm

Q = 1.7 - 1.9 (2) ; N = 18

Und da war sie auch schon wieder weg die Sonne

Habe die Ehre,

Ingo

Aha also doch eine Milbe, na die waren dann wohl gerade auf Exkursion… war keine zu Hause als ich nachgesehen habe. Die orangenen Strukturen sollten dann also „Erineum“ sein, wenn ich das richtig verstanden habe, durch die Milben induziertes pflanzliches Gallgewebe in dem die kleinen Pimpfkes heranwachsen.
Danke für den Tip.
LG Ingo

Ps: hier ist schön die Entwicklung übers Jahr dokumentiert. Ganz unten sind die Bewohner abgebildet. Sie haben ein extrem reduziertes Design: ein Schlauch mit ein bisschen Besteck vorne dran, das war’s.

Hallo Björn,

Zitat von boccaccio

Diese relativ kräftigen, orangenen Gebilde sind tierischen Ursprungs.

interessant was das wohl ist? es sind für mich keinerlei „Organe“ oder „Eistrukturen“ zu erkennen und dann war da dieser offensichtliche Stiel.. ob das vielleicht von Bakterien hervorgerufen wird

Na ich werd nochmal reinschaun falls mir sowas wieder über den Weg läuft, falls es ein Mehrzeller ist könnte man den ja mal mit Glück erwischen in den orangen Gebilden.

Grüße Ingo

Hallo Ingo, danke fürs markieren der Haken. Puh das find ich echt schwer, ich hätte geglaubt es muss da wirklich so beulenartige Ausstülpungen über ein Septum, ähnlich der Schnallen haben... Na beim ganz rechten Pfeil kann ich das nachvollziehen. Da muss ich noch viel üben und werde euch weiterhin um Rat fragen damit ich das hoffentlich irgendwann mal hinbekomm..

> Somit dann C. subherbarum? oder kommt noch was anderes infrage, Deiner Meinung nach?

LG Ingo

Servus zusammen, angeregt durch Thorben's Empfehlung bin ich gestern mal an die Pegnitz um Bestände von Japanknöterich, Springkraut, Brennessel und Goldrute nach Ascomyceten abzusuchen. Nach drei Stunden im Nieselregen und exakt 0 Bechern bin etwas missmutig wieder nach Hause getrottet. Als Übersprungshandlung habe ich aus dem Erlenlaub an meinem Fahrradparkplatz noch einen Rost und einen verschimmelten Springkrautstängel eingepackt. Mehr aus Trotz und weil ich eh die Calycina von letztens nochmal mikroskopieren wollte damit sichs ein bischen lohnt alles aufzubauen (ich habe leider keinen Platz wo ich das Teil stehen lassen könnte und muss immer alles auf und abbauen, was mit der Fotoausrüstung doch schon ein rechter Auffwand ist). Na aber es hat sich gelohnt, die Vergrößerung hat meine Laune schlagartig verbessert, denn so vermodert und melancholisch wie die vergammelte Botanik daherkommt, so hübsch ist sie doch im Inneren. Eine Identifikation habe ich aufgrund fehlender Literatur erst gar nicht versucht, aber vielleicht gefallen sie euch ja auch ohne Namensschild an der Tür-

Ein Rost an Erlenblättern

die knubbeligen Bäumchen erinnern mich irgendwie an ein junges, basttragendes Geweih

"Schimmelpilz" unbekannter Gattung an Drüsigem Springkraut oder wars doch ein Knöterich? meine Erinnerung gibts nicht mehr her (gibts eigentlich einen Gattungsschlüssel für "Schimmel"? um "ihn" wenigstens in eine ganz große Schublade packen zu können?)

beim Blick durchs Okular fühl ich mich als wär ich in Woodstock

es lebe der Verfall! schönen Abend

Ingo

Hallo Namensvetter,

Zitat von Ingo W

ASCO-SONNEBERG - Calycina white

Aha die hatte ich nicht gefunden, da sind die Vakuolen ja auch kleintropfig.

*Zitat Ingo W: Wenn du Lugol genommen hast (nicht MELZERs!), und der Apikalring wird niedrig konzentriert blau, dann kann das Rot tatsächlich noch folgen, wenn die Konzentration sich erhöht.

> Habs nochmal probiert, habe nur Lugol, diesmal nicht in Wasser sondern in reinem Lugol gebadet, hat nicht gereicht - wurde wieder nur blau.

Zitat von Ingo W

Ist das Substrat wirklich sicher? Ich weiß, die Rubus-Ranken können manchmal ziemlich täuschen, aber ich würde hier eher sowas wie Rainfarn oder so sehen.

Ja, in dem Fall bin ich sicher weil ichs vom Himbeerstrauch abgerissen habe, das Endstück war noch dornenbewehrt.

*Zitat Ingo W: Mach mal die Hakenfrage, da kannst du auch mit Kongorot ran für das bessere Auffinden.

> Wäre ne Idee gewesen, ich hab das so drin, dass ich Ascos nicht färbe ausser mit Lugol da hab ich das gar nicht in Betracht gezogen...na jetzt isses zu spät, mit einer kleinen Restunsicherheit die meiner mangelnden Erfahrung geschuldet ist, bin ich der Meinung keine gefunden zu haben. Verbessert mich gerne wenn ihr doch welche seht.

Bilder:

Excipulum

Basis junger Asci, mMn Haken-

*Ps: entschuldigt das Layout, ich komm mit der Forensoftware nicht zurecht, beim "teil-"zitieren haut es mir immer wieder alles aus dem grau hinterlegten raus, das Spiel hab ich ein paar Mal mitgemacht, jetzt hatte ich keine Lust mehr

Grüße nach Sonneberg (wo ich schändlicherweise no nie war, obwohl der Regionalexpress, denn ich jahrelang täglich gefahren bin dort hinfärt. Das muss ich mal nachholen)

Ingo

Oh dass daran sogar so viele vorkommen hätt ich ja nie gedacht! Danke für den Tip da schau ich mir mal welche an wenn ich einen geeigneten Standort find Klasse! Ingo

Hi Thorben,

Zitat von thorben96

Bitte schaue dir mal die Antwort von Zotto an, die er mir auf Ascofrance (Siehe hier) gegeben hat. Ich war mir auch unsicher bezüglich der blauen Iod Reaktion, aber Zotto konnte weiterhelfen.

Ah ok, du warst da also auch unsicher... danke fürs Nachfragen:) da hab ich ja sogar richtig geraten, dass es an der Konzentration bzw an der Verwendung von Melzers liegen könnte. Dann passt das ja. Falls sie am Wochenende noch nicht verschimmelt sind schau ich vielleicht noch mal rein ob ich ihnen noch ein Rot entlocken kann mit entsprechend starkem Stoff. Und nach den Klauen schau ich auch nochmal, bei deinem C. subherbarum sind sie ja wirklich gut zusehen. Mich hat erstaunt dass du die an Goldrute gefunden hast, bei mir wächst Solidago nur an richtig trockenen Standorten wie Bahndämmen etc. - brauchen die Becher nicht mehr Feuchtigkeit?

LG Ingo

Hallo nochmal, also in die Richtung scheint es schon zu gehen, denn auch mikroskopisch ist das schon mal ähnlich. Es passt aber nicht alles, ich versuche mal die strittigen Punkte zu diskutieren:

1) Substrat: FotE schreibt Vorkommen an "herbaceus stems and leaf petioles mainly urtica" also krautigen Pflanzen wie Brennnessel <> Jürgen Marqua hat eine Kollektion an Salix dokumentiert, scheint also doch mit verholzenden Substraten zurecht zukommen

2) Sporen enthalten Öltropfen, bei Ingo W. jedoch wenige große, ich fand eher mehrere kleine <> ähnlich Thorbens Kollektion 1

(12) 12.5 - 15.4 (15.9) × (2.5) 2.6 - 3 (3.2) µm Q = (4.2) 4.6 - 5.6 (6.2) ; N = 20

3) der Ascusporus soll mit Iod rot reagieren, bei mir wars definitiv blau... allerdings weiss ich nicht ob ich mit dem Lugol vielleicht zu sparsam war, denn ich habe es nur runtergesaugt und nicht die Gewebeproben darin eingeweicht <> das scheint mir allerdings bei Thorbens Kollektion 2 an Springkraut auch so zu sein.

4) Interessanterweise scheint er auch Konidien bilden zu können und das in meiner Kollektion auch reichlich zu tun (siehe Pfeile)

cave: ich bin nicht sicher ob alle herumfliegenden Konidien auch wirklich vom Becher kommen, einge Schimmelhyphen siehe Bild 2 waren schon auch drin nach einer guten Woche in der Tupper. Aber einige sind ja definitiv inflagranti gerade am Abschnüren erwischt.

Das sieht man übrigens auch auf Thorbens Kollektion 1 (Bild 1.4) sehr gut. Bei J Marqua sieht man's auch, er erwähnt es aber nicht, bei I. Wagner sind keine zu sehen.

Tja ob das jetzt wirklich alles die selbe Art ist wage ich nicht zu beurteilen. J Marqua erwäht C. subherbarum, die Haken haben soll (ob das zur Abtrennung ausreicht?). Ich hab eher keine gefunden tu mich damit aber auch schwer.

Viele Grüße Ingo

Servus Nobi und Thorben, danke euch für den Tip. Den hatte ich sogar gefunden, dachte aber irgendwo gelesen zu haben dass der an nicht verholzenden Gewächsen (wie Brennnessel) vorkommt? daher hatte ich ihn hier verworfen. So makroskopisch passt der aber schon sehr gut! Ich schau mir das heut Abend mal genauer an. Merci einstweilen!

Hallo zusammen, vielleicht könnt ihr mir helfen auf die Gattung zu kommen? Das folgende weisse Becherchen fand ich an einem toten Rubus-Zweig in Bachnähe (feucht aber nicht aquatisch). Die Fruchtkörper sind ungestielt, unbehaart, weiss, trocken angedeutet becherförmig, nass eher kissenförmig, mehr oder weniger altweiss (ohne Gelb-, Grau- oder Grünstich) und bis maximal 1mm groß. Ich finde nix passendes... eine Mollisia so ganz ohne Graustich?

Danke für eure Vorschläge, wo es sich lohnen könnte zu suchen.

Mikroskopiert wird natürlich noch, aber ich hätte gerne einen groben Plan wohin es gehen könnte..

Merci schon mal, Ingo

Zitat von Steve_mt

but both classical and statistical use the formula

(Min) Range (max) while I wished (min) mean (max).

oh sorry, than I didnt understand it right , i couldnt try it myself as i am not home

Zitat von Steve_mt

It would be great if Pixmetere can allow formatting of the formulas. I really like a simpler (min-) mean (-max)

That is possible, Steve! it is called "formule classique" and you can change it in the menu, where it says "formule dimensionelle" , clic on it and it changes to "formule classique"

(Statistically it is less exact though, as explained in the manual)

LG Ingo

Yes Björn, I am absolutely with you there and this of course is not the intention of this forum, thats what there are lectures for.

Yet also as an amateur it would be nice to have a basic idea of whats going on so I am not so easily pulled over the table... Ok, ok I better shut my mouth now. Good night,

Ingo

Hi Björn, I am a little disappointed by your comment I must admit. Before writing my comment I thougt about instead posting your name here to call you, as you are to my knowledge the one with most experience in the mathematics/physics field here in this forum. I didnt because I thought if you would have liked to answer you probably would have done so in the meantime und thus either are busy with other things or simply didnt want to, which also is ok. So actually I took the time to look it up and tried to explain it in a simple way, as I understood it (not beeing an mathematician and not talking english after highschool years).

The term is of course not erroneous (neither is it "right") it is an approximation on reality as one does not want (and cannot) measure all spores of a fruitbody plus the error of the measurement itself. So all we can do (and Piximetre does) is give a certain probability (e.g 95%) that spore sizes are within certain limits.

For you reading these statistical terms might be like reading soccer charts for someone else, yet for people not involved in this field it might be hard to understand. Which of course is due to insufficient education of statistics at school, but thats another problem. So what I am a bit sad about is you posting the link to the statistics (again) and write that if one does not understand it one should leave it or it will be crap. Which is ok as an opinion but doesnt get us any further and also I think this forum lives from sharing knowledge. I speculate you probably are confronted with crap statistics in papers everyday making you angry which led you saying so. I just had wished you let us participate a little of your knowledge and tell Steve something like "look thats the reason why these limits are correct even if they seem large" or at least "read this chapter on statistics in Wikipedia it might help you understand the term".

Kind regards, Ingo