Beiträge von boccaccio

Hallo Cyrill,

Dialonectria episphaeria kannst du hier ausschließen, die wächst auf Diatrype. Ich könnte mir hier auch gut etwas Richtung Hypomyces vorstellen, aber letztlich bleibt das ohne Mikroskopie auch alles nur Rätselraten.

Björn

Hallo Martin,

ja, die Abschattung zum Bildrand war auch mit der alten Kamera vorhanden. Mit dem 1.6x-Adapter wird das Problem sicherlich kleiner werden oder sogar ganz verschwinden.

Björn

11. Podospora pleiospora

12. Ein Chaetomium mit prismatischen Zellen am oberen Ende des Peritheciums und dextrinoider Reaktion der unreifen Sporen mit Melzer. Sporen messen 6.4-7.0 µm x 5.1-5.9 µm, womit ich dann bei Chaetomium robustum lande.

Björn

Hallo zusammen,

als ich Anfang Dezember im Landschaftspark Duisburg unterwegs war, habe ich auch einige Kaninchenköttel aufgesammelt. Die haben in den letzten Wochen einiges an Pilzen zu Tage gefördert, was ich hier im Folgenden vorstellen möchte

1. Am Anfang schimmelte es munter vor sich hin. Hier tippe ich auf einen Piptocephalis, aber eine Art traue ich mich da nicht zu benamsen.

2. Dann kamen Saccobolusse. Bei diesem hier messen die Sporencluster 41-46 µm x 15-17 µm, die Sporen 17 x 7-8 µm. Auffällig die insgesamt sehr dunklen Sporen und die relativ kompakten, festen Cluster. Ohne gelbe Paraphysen also zur Sect. Eriobolus, wo man mit van Brummelen dann bei S. versicolor auskommt. Aber das scheint ja eine schwierige Gruppe zu sein, wenn man den Diskussionen hier im Forum folgt.

3. Thelebolus polysporus

4. Im gleichen Präparat fand sich dann auch das hier

5.Schizothecium tetrasporum

6. Wieder ein Saccobolus, diesmal mit auffälligen rosa-Tönen und einigem Gezumpel am Rand. Sporencluster messen 40-44 µm x 15-17 µm, Sporen liegen bei 16-18 µm x 8-9 µm. Ist das S. caesariatus oder sind diese Haare am Rand nur dm Wachstum in Kultur geschuldet und es ist auch was um S. versicolor?

7. Das dürfte noch mal der gleiche Kollege sein wie Nr. 2, Sporencluster sind hier noch mal kompakter mit 37-39 µm x 15-17 µm.

8. Eine Anamorphe...

9. Iodophanus carneus

10. Cystobasidium fimetarium

Björn

Hallo zusammen,

an Heiligabend habe ich auf dem Weg zu meinen Eltern ein Stück Mahonie aus einem Vorgarten mitgenommen, nachdem mir daran schwarze Knubbel aufgefallen sind. Das hat sich dann mikroskopisch als Hingucker erwiesen:

1. Cucurbitaria berberidis

2. Auch noch auf dem Ast diese kleinen, weißen Knubbel, die mikroskopische leider nur aus Hyphen bestanden. Vielleicht etwas Richtung Burgoa?

Björn

Hallo Nobi,

wie weiß schon der Volksmund: Ein Leben ohne Dung ist möglich, aber sinnlos

Björn

Hallo zusammen,

bei der Tour durch die Rheinaue Walsum am 10.12.2022 habe ich auch eine Dose voller Schafsdung mit nach Hause genommen. Da das Substrat offenbar recht frisch war, tat sich am Anfang erstmal außer Schimmel nicht viel. Aber so langsam kommt das ganze jetzt doch ins Rollen.

1. Pilobolus crystallinus

2. Schizothecium tetrasporum

3. Ascobolus albidus mit Sporen von 24-27 µm x 12-14 µm

Björn

Hallo Nobi,

das freut mich aber, wenn es mit dem Dung bei mir mal so flüssig läuft

Björn

Hallo Uwe,

die blauen Fotos sind mit normalere Tinte gefärbt. Was aber für die Gelhüllen und Caudae viel besser funktioniert ist Chinatusche, die in den braunen Bildern benutzt wurde. Die lasse ich dann auch einfach von der Seite ins Wasserpräparat reinlaufen (und gerade die Chinatusche läuft da auch wirklich mit Begeisterung ins Präparat und bleibt nicht am Rand).

Björn

Hallo zusammen,

hier noch ein paar weitere Funde vom Pferd:

1. Eine Coniochaeta mit Sporen von 18.9-20.7 x 15.2-16.4 µm, also wohl C. scatigena

2. Eine Trichodelitschia mit Sporen von 24-26.5 µm. Im ersten Fruchtkörper gab es leider nur Sporen, an denen sich die Gelhülle nicht beurteilen ließ. Aber in weiteren Exemplaren gab es dann auch hübsche Sporen mit dreiteiliger Gelhülle, also T. minuta

3. Auch auf dem Pferd: Podospora decipiens

4. Eine Podospora mit großen Sporen von 43-51 x 28-30 µm. Da bleiben dann nur P. intestinacea und P. fimiseda in der Auswahl. Da das Pedicel hier nach unten dünner wird und die Keimpore subapikal sitzt, wird es wohl erstere Art sein, auch wenn die charakteristisch darmförmigen Strukturen bei den Caudae nicht zu sehen waren.

Björn

Hallo zusammen,

vorgestern habe ich noch eine Runde durch den Duisburger Stadtwald und an der Regattabahn gedreht. Nach dem die Temperaturen wieder gestiegen sind und es ausgiebig geregnet hat, sprießen die Pilze nur so aus dem Totholz.

1. Octospora leucoloma

2. Trichaptum abietinum

3. Steccherinum fimbriatum

4. Botryobasidium subcoronatum

5. Hypocrea aureoviridis

6. Peronospora alsinearum ex Stellaria media

7. Ramularia glechomatis ex Glechoma hederacea

8. Chromocyphella muscicola

9. Auricularia auricula-judae

10. Exidia glandulosa

11. Eine Lasiosphaeria.... für L. ovina ist mir das ganze nicht mit genug weißem Tomentum eingehüllt. Aber die anderen Arten, die bei Candoussau et al. 2001 ausgeschlüsselt werden, passen auch nicht so recht. Hat da jemand Ideen?

12. Tremella globispora

13. Nectria cinnabarina s. str.

Björn

Das Paper schweigt sich ja leider zu der benutzen Notation aus. Aber da hier Klammer-Wert-Klammer für das Camarosporium benutzt wird, würde ich das eher so interpretieren als wären die beiden Klammerwerte Maxima und Minima und der Wert dazwischen ein Mittelwert. Ansonsten würde das ja bedeuten, daß praktisch alle Sporen gleich groß sind... was ja erfahrungsgemäß eigentlich nicht sein kann.

Björn

Hallo Eike,

nach dem Artikel von Crous et al. sind die Sporenmaße bei S. lyciicola 20.5-30.5 x 10-15 µm und bei C. quaternatum 20-26.5 x 10-13 µm. Damit liegt dein Fund doch eigentlich perfekt im Rahmen von C. quaternatum.... nur daß diese Art dann ja dummerweise auch im sehr breiten Rahmen der Sporen von S. lyciicola Platz hat.

Björn

Hallo zusammen,

am letzten Wochenende habe ich mal wieder eine kleine Runde durch den Duisburger Stadtwald gedreht und ein paar Stöckchen mit nach Hause genommen:

1. Pezicula acericola ex Acer campestre

2. Dialonectria episphaeria ex Diatrype stigma

3. Hypoxylon fuscum ex Corylus avellana

4. Tremella mesenterica

Björn

Hallo Eike,

nachdem ich gestern einen ähnlichen Fund gemacht und mich etwas in das Crous-Paper eingelesen habe, stellt sich mir die Frage, wie du Staurosphaeria lyciicola und Camarosporium quaternatum nur Anhand der Teleomorphe voneinander unterscheidest.

Björn

Hi everyone,

I don't speak any Spanish, so I will just reply in English. I don't think this is a smut fungus because there are basically no smut fungi on ferns. It does not look like a Cordyceps either, but I lack any good idea what it could be. So we need microscopic information to get further...

Björn

Hallo Pablo,

ja das sieht schon stark wie die Vakuolen aus, die Karl vor kurzem Mal gezeigt hat.

Björn

Hallo zusammen,

ja Brennnesseln lohnen eigentlich immer. Ingo Wagner hat auf seiner Homepage ja auch mal ganz explizit seine Brennnesselfunde zusammengefaßt vorgestellt.

So richtig warzig sind die Massaria-Sporen nicht.... aber auch nicht ganz glatt. Da waren schon einige Hubbel drauf, aber eben nicht an allen Sporen und auch nur sehr lokal. Keine Ahnung, wie man das jetzt zu interpretieren hat.

Den Bulbillomyces hier hatte ich nicht mikroskopiert, aber ich hatte kürzlich hier im Stadtwald einen Fund, wo Anamorphe und Teleomorphe von der Partie waren.

Björn

Hallo Pablo,

ja, Entoloma vindobonense hat auch Mehlgeruch und ist mikroskopisch praktisch identisch (bis auf den mutmaßlichen Unterschied mit den Vakuolen) zu E. sericeum. Tatsächlich ist es aber wohl so, daß praktisch alle spätherbstlichen Funde von dunkles E. sericeum eigentlich E. vindobonense sind.

Björn

Hallo zusammen,

am letzten Sonntag ging es bei frostigen Temperaturen dann weiter in den Duisburger Landschaftspark, ein ehemaliges Hochofengelände und jetzt eine Parklandschaft

1. Das dürfte wohl Entoloma vindobonense sein, auch wenn ich in der Huthaut keine granulären Vakuolen finden konnte.

2. Auch diese Kollektion ist wohl E. vindobonense

3. Arrhenia spathulata

4. Deconica montana

5. Arrhenia rickenii

7. Bovista plumbea

8. Neottiella rutilans

9. Tulostoma brumale

10. Phylloscypha boltonii

11. Hohenbuehelia sp.

12. Typhula cf. setipes, ohne Schnallen, ohne Sklerotium, mit amyloiden Sporen

13. Das dürfte Entoloma graphitipes f. cystidiata sein

14. Corticifraga fuckelii ex Peltigera sp.

15. Hawksworthiana peltigericola ex Peltigera sp.

Björn

Hallo zusammen,

letzten Samstag war ich nach längerer Zeit mal wieder in der Rheinaue Walsum unterwegs. Auch wenn es Frost gab und entsprechend kalt war, ließen sich einige Pilze finden, zum Teil sogar optisch sehr ansprechend:

1. Trichopeziza sulphurea ex Urtica dioica

2. Flammulina elastica

3. Bulbillomyces farinosus

4. Pholiota conissans

5. Puccinia lagenophorae ex Senecio vulgaris

6. Spilopodia nervisequa ex Plantago lanceolata

7. Massaria gigantispora ex Acer campestre

8. Peroneutypa scoparia ex Tilia sp.

9. Illosporopsis christiansenii

11. Marchandiomyces aurantiacus

12. Torula herbarum ex Urtica dioica

Björn

Hallo zusammen,

ich kann mir hier ganz gut eine Peziza s.l. vorstellen. Was bei den Sporen auffällt, sind die Ansammlungen kleiner Öltropfen an den beiden Sporenenden. Das würde einen dann in die neue Gattung Phylloscypha führen. P. labessiana oder P. boltonii scheinen doch erstmal gar nicht unplausibel mit den Daten, die wir bisher so haben.

Björn

Hi Steve,

why do you think this is a Crepidotus? Spores appear rather pale for this... furthermore, you can see fine ridges along the spores which would be typical of Clitopilus.

Björn

Hallo Pablo,

gut, daß hier wenigstens einer aufpaßt Ich habe die Sporen jetzt einmal gründlich vermessen und komme auf 4.1+-0.2 µm x 3.2+-0.2 µm, Q=1.3+-0.1, 3.7-4.5 µm x 2.6-3.5 µm, Q=1.2-1.4. Pseudozystiden sind mir tatsächlich nicht aufgefallen, stattdessen hatte ich die mit Kristallen besetzen Hyphenenden falsch interpretiert. Von daher paßt Schizopora flavipora hier deutlich besser als das junge Huhn.

Björn

Hallo zusammen,

1. Golovinomyces sonchicola ex Sonchus oleraceus

2. Exidia glandulosa

3. Tulasnella violea

4. Bertia moriforme

5. Mycena capillaris

6. Inonotus radiatus

7. Junghuhnia nitida

8. Helvella crispa

9. Phleogena faginea

10. Bjerkandera adusta

11. Hypoxylon fragiforme

12. Cylindrium aeruginosum auf Quercusblättern

13. Phlebia subochracea

14. Daedaleopsis confragosa

15. Sclerencoelia fraxinicola

16. Thyronectria aurigera ex Fraxinus excelsior

17. Lasiosphaeria ist klar, aber wie genau unterscheidet man L. hirsuta und L. hispida?

Björn