Beiträge von Matthias

  • Ritterlinge, Raslinge und eine Telamonia

    Servus Raphael,


    die Parvuli sind eine komplizierte Gruppe, die ich - wie gesagt - mangels Material nicht gut beurteilen kann. Deine 3 alpinen Kollektionen gehören wohl in den Clade, der bei Kokkonnen (2020) als C. parvannulatus geführt wird. C. parvannulatus ss. Kokkonen wäre also ein möglichere Name. Aber der Namen ist ja auch nicht so wichtig. Die morphologischen Unterschiede rechtfertigen jedenfalls die Trennung von deinen anderen Kollektionen. Es deutet einiges daraufhin, dass es in der Gruppe morphologisch trennbare Arten gibt, die in der ITS nahe beieinander lieben. Also lieber erstmal alles sauber trennen. Ein gutes Beispiel ist C. croceocingulatus, den auch Kokkonen aufgrund morphologischer Unterschiede klar abtrennt, auch wenn es da keine Typus-Sequenz gibt. Bei Gelegenheit schau ich mir die Gruppe mal genauer an.

    Grüße Hias

  • Alles Mycena aetites ?

    Servus Thorben,


    bei 1 und 3 hätte ich wenig Zweifel. Bei 2 sehen die Stielhyphen eher glatt aus. Bei 4 kann ich es nicht erkennen. Das Problem ist, dass auch M. leptocephala mal auf einer Wiese rumstehen kann, und wenn man keine Geruchsprobe hat, bleiben dann fast nur noch die bei M. aetites divertikulierten Stielrindenhyphen als sicheres Unterscheidungsmerkmal. Cheilos mit schlanken, fast spitz zulaufenden Hälsen hat M. leptocephala in der Regel nicht, aber sie ist in dieser Hinsicht meiner Erfahrung nach doch ganz schön variabel.


    Grüße

    Matthias

  • WK-Tagung 2025

    Servus Raphael,


    tolle Schwammerln, danke für den Beitrag!

    P. cinereofuscus habe ich bislang nur terrestrisch gefunden, wobei ich nicht so genau weiß, was P. cinereofuscus eigentlich ist, denn zwei habe ich sequenzieren lassen und die passen nicht zusammen.


    LG Matthias

  • Hochmoor und Sauerwiesen

    Servus,


    ich würde auch Nr. 6 eher für C. betulinus halten. Der verändert sich stark in der Farbe (von blau zu gelb), wenn er älter wird. Kannst du notfalls über die Sporenmaße dingfest machen.


    Grüße

    Matthias

  • clitocybe rivulosa ?

    Servus,

    das sind schon Trichterlinge. Aber C. rivulosa ist eigentlich ein Wiesenpilz. Ich glaube eher, dass du C. phyllophila gefunden hast. Jedenfalls das, was ich darunter verstehe. Leider ist die Taxonomie in dieser Gattung noch recht wackelig, weil sich meines Wissens noch immer niemand die Mühe gemacht hat, die ganzen Typen zu sequenzieren.

    Achte mal auf die durch ein wolliges Tomentum aufgeblasen wirkenden Stielbasen. Oft befindet ich darunter eine gelatinöse Umhüllung des eigentlichen Stiels. Wächst in Laub und Nadelwäldern, meist in der Streu, manchmal auch auf Holzmulm.


    Grüße

    Matthias

  • Lentinellus ursinus?

    Servus Andreas,


    derselbe Lentinellus, den du auf Nadelholz (ja) gefunden hast, ist gestern auch mir und Werner über den Weg gelaufen.

    Ich bin hinsichtlich der Unterscheidung leider auch nicht schlauer als du, aber was du schreibst, klingt plausibel. Ich habe meine scharfen Fund auf Nadelholz auch als L. ursinus bestimmt.


    Beste Grüße

    Matthias

  • Cortinarius chalochrous?

    Servus Thomas,


    C. calochrous s.str. ist das sicher nicht. Der hat einen viel intensiver und dunkler gelben Hut und eine gelblich gesäumte Knolle. Vielleicht eher C. platypus, schau mal, ob er Cheilozystiden hat. C. anserinus hat eine bittere Huthaut.


    Grüße

    Matthias

  • Cortinarienschwemme in der Eifel

    Zitat von Karl W

    Am Rand eines Buchenbestandes, wuchs eine kleine Art, die uns Rätsel aufgibt. Jung blau, rasch verblassend, scharf gerandete Knolle. KOH auf dem Hut führt zu einer rosabraunen Verfärbung. KOH im Fleisch negativ. Sporen amygdaliform im Mittel 9,5 x 5 mµ

    Cortinarius sp.

    Servus Karl, was spricht denn bei dem kleinen Blauen gegen C. caerulescens?

    Grüße

    Matthias

  • Tricholoma Bestimmungshilfe

    Mir scheint T. columbetta die plausibelste Bestimmung. An T. stiparophyllum glaube ich nicht, schon gar nicht im Nadelwald. T. columbetta kenne ich aber auch nur von wenigen Funden (auch im Nadelwald).

    Grüße

    Hias

  • Inocybe geophylla?

    Servus beinand,


    in den letzten Jahren habe ich mich auch schon mit etlichen Kollektionen aus dem Geophylla-Aggregat herumgeschlagen. Vermeintliche cygnea, oloris oder geophylla haben sich dann bei der Sequenzierung als posterula entpuppt.

    Da mir fruchtloses Herumrätseln keinen Spaß macht, lasse ich die Seidig-Weißen jetzt stehen. Ich nehme nur noch die "Lilacinae" mit, aber nur, weil sie so hübsch sind. Bestimmen ist auch bei denen schwierig.


    LG Hias

  • Telamonia mit angenehm süsslichem Duft -> Cortinarius boreasensis (sequenziert)

    Servus Benjamin,

    die Exsikkat sind bei mir meist halbierte oder geviertelte Fruchtkörper je nach Größe der Pilze. Dann nehme ich z.B. den getrockneten halben Pilz, mache zunächst einen "Vorschnitt" am Hut, damit eine glatte Schnittfläche entsteht. Dort mache ich dann in der Regel in Scheitelnähe (aber nicht direkt am Scheitel) mit einer scharfen Rasierklinge radial einen Feinschnitt. Den nehme ich mit einer Pinzette ab und verfrachte ihn in einen Tropfen KOH auf dem Objektträger. Das gelingt nicht immer auf Anhieb, braucht manchmal a bissl Geduld. Manchmal verfachte ich auch 2 oder 3 Schnitte ins Präparat und suche mir dann das Beste raus.

    LG Hias

  • Telamonia mit angenehm süsslichem Duft -> Cortinarius boreasensis (sequenziert)

    Servus Benjamin,

    ja genau, über den Weißabgleich den Hintergrund neutralisieren. Ich habe gute Erfahrungen damit gemacht.

    Ob das methodisch abolut korrekt ist, weiß ich nicht, aber ich denke, entscheindend ist, dass du es immer gleich machst, so dass du vergleichbare Ergebnisse hast.

    Du kannst dir ja mal ein paar Dokus von mir durchschauen. Immer das letzte Sporenfoto ist in Melzers und mit neutralisiertem Hintergrund. Dadurch sieht man schon auf den Thumnails in der Übersicht sofort den Farbumschlag durch die dextrinoide Reaktion.


    Beispiele


    Die HDS-Schnitte mach ich immer am Exsikkat, bei Telamonia sollte es aber auch bei Frischmaterial ganz gut funktionieren. Bei schleimiger Huthaut wie bei "Phlegmacien" oder vielen Milchlingen tut man sich am Exsikkat leichter, weil das Gewebe nicht "abhauen" kann. Ich mache die Schnitte mit nur einer Klinge und ohne Quetschen, aber da muss jeder seine eigene Technik herausfinden, die ihm am besten liegt.


    Grüße

    Hias

  • Telamonia mit angenehm süsslichem Duft -> Cortinarius boreasensis (sequenziert)

    Servus beinand,


    zur Bestimmung der Art kann ich leider nichts Erhellendes beitragen. Die Fk sind aus meiner Sicht auch ein bisschen zu alt, als dass sinnvolle Aussagen zur Makroskopie möglich wären.

    Noch ein Hinweis zur Erfassung der Dextrinoidität der Sporen:

    In FAN8 wird eine 4-stufige Skala von D0 bis D3 verwendet, wohl in Anlehnung an die Dissertation von Tuula Niskanen (2008), die aber nur die Begriffe

    non dextrinoid, weakly dextrinoid, moderately dextrinoid, and strongly dextrinoid und nicht die D-Abkürzungen verwendet hat. Das ist ein bisschen verwirrend, da die von Jan Vesterholt für Hebeloma eingeführte 5-stufige Skala D0-D4 von vielen (z.B. von mir) auch für Cortinarius benutzt wurde.

    Bei nur schwacher Dextrinoidität sind Vergleichsfotos, wie sie Benjamin erstellt hat, sehr nützlich, am besten (falls das technisch möglich ist) mit neutralisiertem Hintergrund. Feinere Unterschiede sieht man am besten am Sporenabwurf.


    Und noch eine Anmerkung zur HDS-Struktur:

    Es würde mich wundern, wenn die HDS bei der gezeigten Art wirklich "simplex" wäre. Ich wüsste auf Anhieb keine telamonioide Art mit einfacher HDS. Das Hypoderm kann man sehr leicht übersehen, wenn der Schnitt nur minimal zu dick ist. Auf dem gezeigten HDS-Fotos sieht man aber gut, dass keine grobe Inkrusationen oder Pigment-Placken vorhanden sind, was z.B. die Sektion Flexipedes ausschließt.


    LG

    Hias

  • Zweimal Pluteus

    Servus Nils,


    der Zweite gerhört sicher zum Plautus-Komplex. Es gibt aber (Stand 2020) weder für P. plautus, noch für P. semibulbosus und P. depauperatus Typus-Sequenzen, so dass diese Namen noch nicht stabil verwendet werden können. Alle drei zu synonymisieren wie im Pilzkompendium halte ich aber für falsch. Nach Gröger ist der dunkelbraune mit den braunen Stielschuppen P. plautus, der ganz blasse wie du ihn gefunden hast P. depauperatus/semibulbosus.


    Grüße

    Matthias

  • Phlegmacium aus den Bergen -> Cortinarius dovrensis

    Servus Raphael,


    eine zündende Idee habe ich nicht, auch weil ich ja so gut wie nie oberhalb der Baumgrenze herumlaufe. Aber C. argenteolilacinus kenne ich von zwei Funden aus dem Bergwald. Gemessen an diesen Funden kann ich mir nicht vorstellen, dass deiner da dazugehört. Die Wald-Kollektionen hatten praktisch keine Brauntöne, sondern dominierend Grautöne am Hut, eine stärker eingewachsen faserige Huthaut und fast leuchtend blaue Farben an Stielspitze und Lamellen.


    Grüße

    Hias

  • Endlich eine Inocybe

    Servus Raphael,


    I. brunneorufa habe ich schon ewig nicht mehr gefunden, aber meine älteren Aufsammlungen waren allesamt viel schlankstieliger, hatten längere Sporen und auch längere, voluminösere Hymenialzystiden.


    Beste Grüße

    Hias

  • Ritterlinge, Raslinge und eine Telamonia

    Servus Raphael,


    bei den Parvuli habe ich selbst nur wenig Material und kann das schlecht beurteilen. Aber: Synonymisierungen ganzer Sektionen wie in FAN8 (Decipiens-Gruppe!) sehe ich kritisch. Ich finde, Arten, die morphologisch gut trennbar sind, sollte man nicht zusammenwerfen, nur weil die ITS keine schlüssige Trennung ermöglicht. C. croceocingulatus sieht z.B. völlig anders aus als C. neofallax und hat in Gegensatz zu Letzterem indextrinoide Sporen.

    LG Hias

  • Ritterlinge, Raslinge und eine Telamonia

    Servus Raphael,

    sehr interessant! Die "Parvuli" sind ein bisserl unübersichtlich (Kokkonen 2020). Meine beiden ex parvannulati sind inzwichen als C. neofallax bestimmt. So weit ich weiß, gibt's noch keine Typussequenz von C. parvannulatus. Wie war denn die Ökologie bei deiner Aufsammlung? Meine C. neofallax standen beide montan im jungen Fichtenwald über Kalk bzw. Würmmoräne.

    Grüße

    Hias