Hallo Oliver,
Kannst du eventuell genauer darauf eingehen, wie du einen Weißabgleich am Mikroskop machst und was du dafür verwendest?
ich habe 2 manuelle Weißabgleicheinstellungen an der Kamera, die ich immer verwende und auch schon seit Beginn des Fotografierens verwende.
Du musst halt selber mit deiner Kamera experimentieren bis du eine Einstellung hast die passt.
Ansonsten kann ich dir mit dem Thema Weißabgleich nicht weiterhelfen, weil ich selber nicht gut darin bin.
VG : Thorben
Hallo zusammen,
an meinem Mikroskop ist eine Canon EOS 550D mit einem Adapter dauerhaft montiert.
Zum Fotografieren verwende ich einen Fernauslöser, den LiveView Bildschirm von Canon und am PC die Canon-Software.
So kann ich durch das Okular gucken und Fotos machen ohne ständig auf die Kamera schauen zu müssen.
Hinzu kommt, dass ich die Einstellungen der Kamera am Computer mit der Canon Software machen kann.
Am Mikroskop habe ich für jedes Objektiv eine eigene Belichtungszeit für die Kamera, die ich immer einstellen muss.
Dafür habe ich immer eine voreingestellten manuellen Weißabgleich, der mittlerweile nur bei Makroskopischen Bildern verändert wird.
Die Bilder werden im JPG Format aufgenommen und mit Photoshop Elements bearbeitet.
Bei der Bearbeitung wird die Funktion "Farbstich entfernen" benutzt, mit der man relativ gut seine gewünschten Farben bekommt.
Ansonsten wird nur etwas Kontrast und die Belichtung eingestellt.
Die Bearbeitung der Bilder (Achtung nur die Bilder unter dem Mikroskop) dauert im Schnitt maximal 1min.
Wenn ich Makroaufnahmen unter dem Mikroskop machen, dann verwende ich 2 Jansjö Lampen (Sieht so aus Jansjö) und einen selbstgebastelte Diffusor.
Der selbstgebastelte Diffusor ist ein durchgeschnittener Plastikbecher, dessen Ring ich um das Objekt lege, was fotografiert werden soll.
Die Mikrobilder werden in der Regel nicht gestackt, außer es müssen Ornamente oder Strukturen besser dargestellt werden, dann wage ich einen Versuch.
Ansonsten werden nur die Makroaufnahmen gestackt, weil ein einzelnes Bild zu wenig Tiefenschärfe hat.
Für das Messen der Sporen verwende ich das Programm Micam und für das Stacken Heliconfocus.
VG : Thorben
Hallo Christine,
Klaus Siepe schrieb mir vorhin, dass er bei deinem Pilz eine Urceolella crispula vermutet.
So gibt es jetzt 3 verschiedene Vermutungen, die alle Makroskopisch zu deinem Fund passen.
VG : Thorben
Hallo zusammen,
die Lasiosphaeria ovina ist das nicht, die sieht Makroskopisch anders aus.
Rein Makroskopisch könnte die Nr. 1 in die Richtung Cistella gehen.
Bei der Nr. 2 könnte es eine Calycina sein oder Hymenoscyphus.
Aber ohne Mikroskop lässt sich das nicht genau sagen, sondern nur Vermutungen anstellen.
VG : Thorben
Hallo zusammen,
hier sind ein paar weitere Bilder.
Der Verdacht geht (Danke an Keith Seifert) in die Richtung Stilbum vulgare oder Chionosphaera.
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Ich melde mich, wenn es Neuigkeiten gibt.
VG : Thorben
Hallo zusammen,
ich bin richtig happy, denn dieser Pilz hat Dank Keith Seifert endlich seinen Namen bekommen.
Es handelt sich dabei, um Acremonium longisporum.
Zum Glück habe ich das Buch "Cephalosporium-artige Schimmelpilze" (Walter Gams 1971), wo auch die Beschreibung dieses Pilzes steht, sowie eine Abbildung.
Sowohl die Beschreibung als auch die Abbildung passt perfekt zu meinem Fund, auch Keith konnte diesen Pilz selber mal in einem Gewächshaus finden.
Interessant ist das Substrat, denn das soll eher Canna und Musa sein.
Jedoch gibt es auch zu älteren Kollektionen Angaben zu Salix, Juglans und Acer pseudoplatanus.
Ich gehe mal davon aus, dass die Acremonium longisporum nicht selten auf Fallopia japonica wächst und es wahrscheinlich nach gezielter Suche mehr Funde geben wird.
In meinem Fall wird der Pilz höchstwahrscheinlich nächstes Jahr wieder erscheinen, denn das ist in der Regel bei den meisten Pilzen der Fall im Naherholungsgebiet Hohenstein.
Der Thread kann zu den Portraits Beorn , Climbingfreak oder anderes mit Rechten zum Verschieben.
Besten Dank im Voraus.
VG : Thorben
Hallo Ralf,
wenn du den Pilz trocknest, dann werden die orangenen Tröpfchen hart 
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Die Tröpfchen sind eine Masse von Konidien.
Sobald ich diese in Wasser packe, löst sich die Masse und wird wieder weich.
Vergleichbar mit Dacrymyces stillatus.
VG : Thorben
Hallo Ralf,
vielen Dank für dein Angebot! Ich war heute tatsächlich nochmal dort und hab mir ein kleines Stückchen gesichert. Jetzt muss ich nur noch überlegen, wie ich es, ohne dass es auf dem Weg kaputt geht, zu dir bekomme..
Ansonsten Streichholzschachtel oder etwas anderes kleines zum reinpacken.
Theoretisch reicht würde es auch ausreichen, wenn du das Stück grob in Zewa einwickelst und dann in einen normalen Briefumschlag verschickst.
Die Fruchtkörper sind relativ robust und sollten das eigentlich aushalten.
P.S.: Wenn ich schon schicke, wär das hier möglicherweise auch noch spannend? Ich habs beim Pröbchen holen nebenan an ich glaube irgendwelchen Kohlenbeeren hängen sehen und kann nicht sagen, ob es irgendwas insektiges oder doch nur was pflanzliches ist, aus dem diese "Härchen" ragen..
Das ist eine Hülle von einem Insekt oder besser gesagt der Überrest von dem was darauf geschlüpft ist.
Leider weiß ich nicht mehr das ist 
Das kannst du beipacken, aber denke es sind nur Hyphen. Trotzdem bin ich gespannt, ob ich mich vielleicht irre
VG : Thorben
Hallo zusammen,
die Bilder von der Strongwellsea sp. sind bearbeitet.
Bisher konnte ich keine Art finden, die zu Ralfs Fund passen, aber werde einen Spezialisten in Dänemark kontaktieren.
Hier sind die Bilder:
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VG : Thorben
Hallo Ralf,
Glückwunsch zu diesem Fund
Es kam auf facebook die Einschätzung, es könne sich um Gracilistilbella clavulata handeln. Aber ich fürchte ohne Mikro geht da wieder nix, oder?
So häufig wurde dieser Pilz, zumindest in Deutschland, noch nicht gefunden.
Das wäre der 3. Fund für D. und auch der 3. Fund für NRW.
Letztes Jahr hat mir Thomas Kalverarm einen Fund geschickt, der auch im Tintling publiziert wurde, dazu habe ich auch hier im Forum ein Portrait gemacht.
Gracilistilbella clavulata (Mont.) Seifert - Sonstige - Pilzforum.eu
Makroskopisch sehe ich da eine G. clavulata und auch Mikroskopisch gesehen sollte da nichts anderes bei rauskommen.
Falls du den Fund sicher bestimmt haben möchtest, dann kann ich dir anbieten diesen Fund zu bearbeiten, sowie diesen Fund für dich auf Pilze-Deutschland zu kartieren.
VG : Thorben
Hallo Nobi,
Auch wenn ein paar zusätzlich Maße (zB Haare, Ascus) hilfreich gewesen wären, sehe ich hier ebenfalls Lasiobolus intermedius.
Ich finde die Art zu 50% an Dung vom Wildschwein, aber auch zu 25% an Reh- und Hirschlosung.
Ich wusste doch das ich etwas vergessen habe 
Die Haare habe ich grob gemessen und folgendes herausbekommen:
160-240 x 7-18 Mikrometer (nur von einem Fruchtkörper)
Asci muss ich mal schauen, ob ich da noch etwas nachmessen kann.
Falls ich es nicht vergesse hole ich das die Tage nach.
Ich bin froh, dass du auch L. intermedius siehst
VG : Thorben
Hallo Nobi,
das freut mich, dass du den Fund bestätigst
Dann kann ich ihn auch ohne Bedenken kartieren und ablegen.
Jetzt können die anderen Arten aus der Gattung kommen 
VG : Thorben
Hallo zusammen,
ich kann vermehrt an Fallopia japonica einen weiß-orangenen Belag entdecken.
Unter dem Mikroskop zeigen sich dann lange Ketten von Konidien, die an warzigen Konidienträgern gebildet werden.
Als Arbeitsnamen habe ich cf. Gliomastix genommen, aber denke nicht das die Gattung passt.
Vielleicht hat ja jemand von euch eine Idee dazu.
Hier sind die Bilder dazu:
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5. Konidienträger manchmal septiert
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7. warzige Konidienträger
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VG : Thorben
Hallo zusammen,
am 23.10.22 konnte ich wieder eine Typhula micans finden.
Der Fundort war ein Auenwaldbiotop und das Substrat Impatiens.
Hier sind die Bilder:
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2.1 Basidien 4-sporig
2.2 junge Basidien mit Schnallen
2.3
VG : Thorben
Hallo zusammen,
in diesem Portrait möchte ich euch die Ciboria viridifusca zeigen, die an Erlenzapfen wächst.
Der Fund stammt vom 14.10.22 und wurde in einem Auenwaldbiotop gemacht.
Hier sind die Bilder:
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2. Haken +
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4. Reaktion auf Lugol
VG : Thorben
Hallo zusammen,
gerade bin ich dazu gekommen einen Ascomyceten aus der Hymenoscyphus fructigenus-Gruppe zu bestimmen.
Der Fund stammt vom 06.10.22 und das Substrat war ein Samen von der Linde (Tilia).
Die Asci sind ohne Haken (-).
Hier sind die Bilder:
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2. Haken -
3. Sporen mit Cilien an beiden Polenden
VG : Thorben
Hallo zusammen,
am 21.10.22 habe ich auf Dung vom Reh diese Lasiobolus angeschaut.
Ich denke es ist eine Lasiobolus intermedius oder ?
Hier sind die Bilder:
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VG : Thorben
Hallo zusammen,
gestern habe ich mir auf Dung vom Reh eine Saccobolus angeschaut mit gelben Paraphysen.
Bei mir steht Saccobolus minimus als Arbeitsname.
Folgende Messungen konnte ich machen:
Sporen = 12-13,5 x 6-7 Mikrometer
Sporencluster = 27,5-31 x 11-11,5 Mikrometer
Asci = grob gemessen 70-75 x 16,5-17,5 Mikrometer (nur 2 Asci gemessen)
Hier sind die Bilder:
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VG : Thorben
Hallo zusammen,
gerade konnte ich die Bilder zu der Chalara spiralis fertig bearbeiten.
Dieser Pilz wächst an den Fruchtständen der Buche (Fagus) und ist eigentlich nicht selten, sondern eher unterkartiert.
Gefunden hatte ich diesen am 14.10.22 an einer Frucht der Buche.
Interessant sind die gekräuselten gelben Hyphen.
Hier sind die Bilder:
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4. Konidienträger
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VG : Thorben
Danke Karl
Dann muss ich auch mal ein Tomentella hinzufügen, damit Frank ihn auf die Taxrefliste packen kann.
Sonst bleibt die Art für Deutschland unterkartiert.
Hallo Ralf,
du sagtest ja, ich soll nur ein bisschen nehmen. Und das hab ich auch getan.
Das ist sehr gut
Der größte Teil des Materials wird aufbewahrt und ein kleiner Teil, wahrscheinlich die Pulverreste werden Mikroskopiert.
Wichtig ist halt, dass die Sporen gut abgebildet werden und gemessen.
Eventuell kann man den Fund so bestimmen, was ich hoffe, aber nicht glaube.
Ich habe Siegfried Keller bezüglich deines Fundes Kontaktiert und um Rat gebeten.
Ich schicke dir gleich eine PN.
Edit: Ich schreib immer Thorsten abstatt Thorben. Das muss mit Siggi (Freud) zusammen hängen..
Keine Sorge, dass passiert vielen 
Pass nur später auf das der Absender richtig ist
VG : Thorben
Hallo zusammen,
ich kann seit einigen Jahren regelmäßig diesen Pilz hier auf Collembola finden.
Dank Siegfried Keller (für die Beschreibung) und Annette Bruun Jensen (für die Genetische Beschreibung), sowie den Leuten im Hintergrund konnte der Pilz als Pandora batallata sp. nov. beschrieben werden.
Jetzt hoffe ich, dass die Pandora batallata mehr Bekanntheit erlangt und dadurch mehr Funde gemacht werden.
Auf jeden Fall ist jetzt wieder ein schwieriges Pilzrätsel gelöst und jetzt kommen die anderen dran
Hier ist die Arbeit:
VG : Thorben
Hallo Ralf,
ich hoffe gerade, dass du noch Material von dem Pilz und vielleicht der Fliege übrig hast.
Denn es könnte sich, um.eine Strongwellsea handeln.
Wenn Material vorhanden ist, hätte ich auf jeden Fall daran Interesse.
Ich werde später auch einen Experten anschreiben und fragen was er zu deinem Fund sagt.
VG : Thorben
Hallo zusammen,
zurzeit komme ich mit dem Mikroskopieren kaum hinterher, geschweige dem Bilder bearbeiten, weshalb viele Funde bestimmt, aber nicht fertig bearbeitet abgespeichert sind.
In diesem Fall möchte ich auf einen häufigen, aber doch recht unbekannten Pilz aufmerksam machen.
Es handelt sich dabei, um die Petrakia echinata, die man an Blättern von Acer pseudoplatanus finden kann.
Hier sind die Bilder:
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Interessant ist, dass bisher noch kein Fund auf Pilze-Deutschland verzeichnet ist.
Aber ich denke das lässt sich ändern und hoffe, dass sich bald die Karte etwas füllt
VG : Thorben
Hallo Ralf,
Aber ein kleines orangenes Bröckchen hab ich noch gesichert. Bin zwar kein Mikroskopierer, aber ich versuch trotzdem morgen mal rein zu gucken. Kannst du mir in wenigen Worten sagen, auf was ich achten muss? Ansonsten mach ich einfach mal ein paar Bildchen..
Das ist gut das du etwas davon gesichert hast
Zuerst einmal solltest du gucken, dass du nicht alles sofort Mikroskopierst, sondern nur ein kleines Stückchen.
Dann solltest du nach Sporen-ähnlichen Gebilden Ausschau halten.
Ich rate jetzt mal und tippe auf Sporen die an Hyphen gebildet werden.
Besser ist du Mikroskopierst ein Stück und machst genügend Fotos, dann kann man vielleicht schon mehr dazu sagen.
Dein übriges Material nicht feucht lagern oder in den Kühlschrank packen, sondern ganz normal trocknen und dann in einem kleinen Döschen oder anderes kleines verschließbares Gefäß packen.
Zu Not geht auch eine Streichholzschachtel.
Ich bin gespannt auf deine Bilder
VG : Thorben
