Beiträge von KaMaMa

Hallo Pilzfreunde,

diese Woche hat mich meine Frau auf einen Pilz im Garten aufmerksam gemacht, den ich bereits vergessen hatte (Bild 1).

Unweit der großen Eibe und der aus diversen Laubgehölzen bestehenden Hecke (u.a. Hainbuche, Weide, Schneeball, Zierkirsche, ...) schiebt sich ein heller, weißlicher Pilz in die Höhe.

Heute war mir etwas fad, deshalb habe ich ihn gepflückt und wollte ihn bestimmen.

Beim Stöbern in meinen Fotos finde ich ihn tatsächlich bereits Mitte Dezember von mir fotografiert, neben Jungfern-Ellerlingen wachsend (Bild 2).

Er ist dickstielig, der Hut ist schmal, er besitzt Leisten und ist außen wie innen weiß (Hut, Lamellen/Leisten, Stiel, Fleisch).

Die Maße der inamyloiden, tropfenförmigen Sporen sind 8,1-9,0-9,9 x 5,0-5,5-6,0 µm² (21 St.), sie wirken schwach ornamentiert (Bild 4).

Die Sporenmaße würden zu Cuphophyllus virgineus passen, wobei die Form etwas seltsam ist.

Die Form erinnert mich fast an Cantharellus - aber in dieser Jahreszeit, Mitten im Winter?

Die Ellerlinge sind auch längst längst verschwunden, nur dieser eine seltsame Pilz blieb.

Was mich irritiert, ist, dass ich Basidien mit unterschiedlich vielen Sterigmen finde, die auf 2-, 3- und 4-sporige Basidien hindeuten.

Passt das zu Cuphophyllus?

Die Farbe erschient mir etwas skurril für Cantharellus, da gibt es auch - glaube ich - Basidien mit unterschiedliche vielne Sporen...

Kann bitte jemand einen Tipp geben, worauf noch zu achten wäre?

LG, Martin

Bild 1 Gartenpilz heute, etwas angeknabbert und verfallend

Bild 2 Gleicher Pilz am 18.12.21, noch frisch und jung

Bild 3 Basidien

Bild 4 Sporenansammlung

Bild 5 Spore

Hallo,

wenn ich richtig informiert bin, ist es z.B. in Baden-Württemberg verboten, nachts den Wald zu betreten. Motiviert ist das damit, dass die vor allem dämmerungsaktiven Tiere ihre Ruhe vor uns haben und nicht während ihrer Aktivitätsphasen verschreckt werden. Die Gehölze stellen mit die letzten Refugien für sie dar.

Ich wüsste auch nicht, was ich nachts für Pilze im Wald finden wollte...

Wobei ich zugeben muss, dass eine Vollmond-Sommernacht im Wald tatsächlich einen ganz besonderen Zauber hat, wenn man leise ist und aufmerksam und freiwillig dort.

LG, Martin

Hallo,

ich finde das Thema Ferreum variabilis etc. im Prinzip ja auch lustig, aber ich frage mich, ob sich "Rio - neu im Forum", nicht womöglich veralbert fühlt, wenn man ihre Erstanfrage so ausweitet.

Bis 1.April ist doch noch 'ne Weile hin!

LG, Martin

Hallo Ramona!

Wow! Ein blauer Plüsch-Tintling?! Trägt der noch seinen Schlafanzug?
Sieht jedenfalls toll aus und interessant!!

Was heiẞt denn "am Wechsel", ist das eine Ortsbezeichnug?

LG, Martin

Hallo Bernd!

Das ist eine tolle Bilderserie, die du da gemacht hast, danke!

Das Hauptwachstum scheint also im August zu liegen, wenn ich das richtig sehe.

Ist es im August noch spätsommerlich, oder schon richtig herbstlich bei euch in Littauen?

LG, Martin

Hallo Bernd,

ich danke dir sehr, vielmals!

Ich werde versuchen, ein Auge auf ihm zu haben.

LG, Martin

Hallo,

vor etwa einem Monat fand ich an einem Haselbusch einen älteren Porling, der für mich völlig vergammelt wirkte.

Es handelt sich um einen resupinaten Porling mit schwarzem Rand und groben, tiefen Poren.

Er wächst an einem Ast eines Haselnuss-Strauches am Gebüschrand.

Jetzt habe ich aber im Buch eine Pilz gefunden, dessen Beschreibung und Abbildung ganz gut zu meinen Fotos und den Fundumständen passen würde.

Vor allem der schwarze Rand um den Porling erscheint mir äußerst auffällig:

Das könnte meiner Meinung nach gut ein etwas älterer Dichomitus campestris, ein Schwärzender Haselporling sein, das Substrat passt auch.

Mich stört ein wenig die Aussage, dass diese Pilzart in der nemoralen Zone und im Westen selten sei, aber in der hemiborealen Zone häufig bis gemein sei; er also baltische Bedingungen lieben sollte...

Da ich mir nicht sicher bin, ob die Zuordnung stimmt, stelle ich die Fotos ein - vielleicht hat jemand eine Meinung hierzu?

Bernd sollte ihn dann vielleicht kennen, kruenta?

LG, Martin

Bilder:

Bild 1 Pilz von links

Bild 2 Pilz von rechts

Hallo Pablo,

ja, ohne Mikroskop ist hier wieder gar nichts zu wollen.

Am besten immer voll ausgebildete Fruchtkörper zur Bestimmung nehmen. Bei den jungen sind die makroskopischen Gemeinsamkeiten größer als die trennenden Merkmale.

Es war nur ja nur ein Versuch ..

Jedenfalls schaue ich mal Kretzschmaria (deusta) an zum Vergleich.

Danke dir vielmals!

LG, Martin

Hallo Wolfgang P.

ich war heute vor Ort, um nach weiteren, eventuell größeren Fruchtkörpern von Hohenbuellia Ausschau zu halten.

Leider:

In der vergangenen Woche waren die Waldarbeiter fleißig und haben dort viele Bäume (vornehmlich große Eichen und Buchen, aber auch kleinere Stämmchen, die im Weg waren) gefällt, die jetzt dort durcheinander rumliegen und auf den Abtransport warten; auch die beiden ineinander verkeilten Kirschen, an denen ich die Hohenbuellia gefunden hatte, standen nicht mehr da, wo sie letzte Woche waren. Auch sie gingen zu Boden und wurden zerstückelt.

Nach längerer Suche und Vergleich mit der Streckenaufzeichnung und den Fotos von letzter Woche, konnte ich den Baumstamm sicher ausfindig machen.

Fruchtkörper konnte ich allerdings nur einen einzigen kleinen finden, in der gleichen Größe (2-3mm) wie letzte Woche.

Alles Größere mit Hut an diesem und den benachbarten Kirschstämmen war nur Plicatura crispa.

Was ich dir anbieten kann, wenn du möchtest, ist, dir die kleinen getrockneten Fruchtkörperchen in einem Brief zuzusenden.

Vielleicht kannst du ja etwas damit anfangen, und vielleicht bekommst du heraus, um was es sich hier genau handelt.

Ob sich das bei dieser geringen Menge lohnt, und ob du möchstest, musst natürlich Du wissen.

Also melde dich, wenn du die Fruchtkörper haben möchtest.

Andererseits konnte ich eine Menge der am gleichen Baumstamm benachbart wachsenden Dermea cf cerasi (Thorbens Vorschlag/Verdacht) und ihrer Anamorphe finden.

Die werde ich nachher mikroskopieren - bin schon gespannt!

LG, Martin

Hallo Björn,

vielen Dank für deine erläuternde Antwort!

Mit der schwarzen Oberfläche hast Du natürlich Recht, da muss es vielerlei mögliche Ursachen geben!

Zumindest in Bild 6 darf ich aber doch zurecht kleine B.adustae um die große herum vermuten, oder?

Ich werde versuchen, weiter ein Auge auf diese Objekte zu haben; vielleicht erkenne ich im Lauf der Zeit, was dahintersteckt.

Wenn ich diech recht verstehe, meinst Du vermutlich so etwas wie in Bild 7 und 8:

Hier sitzen Kohlenbeeren dicht an dicht mit etwas plüschig wirkenden Fruchtkörpern, die, wie ich vermute, die jeweils zugehörigen Anamorphe sein könnten.

In Bild 8 sieht man in schöner Reihenfolge, wie unter den pelzigen Strukuren die fertigen Teleomorphen herauswachsen. Interprätiere ich das richtig?

Die Anamophe wird dabei wie Brotrinde weggesprengt.

Bild 7

Bild 8

LG, Martin

Hallo miteinander!

Letztes Wochenende fiel mein Blick beim Spazieren im Wald auf einen am Wegesrand liegenden, entrindeten, schwarzen Ast, woran interessante, kleine Pilze zu erkennen waren (Bild1).

Vielleicht sind es nur unbestimmbare Jungstadien von irgendwelchen Rindenpilzen, crèmeweiß mit weichen Rundungen - aber ich bilde mir aber ein, sie erinnern mich an etwas.

Und ich könnte mir in den A.. llerwertesten beißen, weil ich keine Probe mitgenommen habe!

Auf den hellen Fruchtkörpern lassen sich schwarze, braune und graue Strukturen erkennen:

Das Schwarze ist wahrscheinlich angehobenes Holz; die Pilze scheinen sich von unterhalb hervorzuzwängen und heben dabei Teile der schwarz gefärbten Holzoberfläche mit an.

Daneben exisitieren auf den Fruchtkörpern die runden, transparent wirkenden, braunen Flecken (Bild 2+3). Damit kann ich nicht wirklich etwas anfangen, vielleicht Befall?Wenn die grauen Strukturen aber erste Porenbildungen sind, könnte es sich vielleicht um junge Bjerkanderae adustae (Angebrannte Rauchporlinge) handeln?

Sein Initialstadium sieht doch so dem sehr ähnlich (Bild 6).

Stimmt es übrigens, dass B.adusta eine schwarze Verfärbung der Oberfläche des umliegenden Holzes verursachen kann (<=> "Angebrannter" Rauchporling)?

Was meint ihr dazu?

LG, Martin

Bild 1 der Ast mit einer dichten Gruppe von weißlichen Fruchtkörpern

Bild 2 das Holz ist kohleschwarz verfärbt

Bild 3 die Fruchtkörper pressen das Holz beiseite und in die Höhe. Braune, fleckige Beläge ev. durch Befall?

Bild 4 graue Strukturen - vielleicht ein Hinweis?

20220108 1540135 Laubersteige & Hälde.JPG

Bild 5 schwarze Rhizinien müssen nicht vom gleichen Pilz sein

Zum Vergleich Fruchtkörper vonh Bjerkandera adusta in unterschiedlichem Alter

Bild 6 B.adusta an anderer Stelle gefunden, mit kleineren Exemplaren am Bildrand

Hallo Günther,

zur Sichtbarmachung der Gloeozystiden (GZ) reicht Kresylblau (KB) also vermutlich aus!

Björn hat aber recht, wenn er darauf hinweist, man muss die SV-Reaktion beobachten, wenn der Schlüssel das so verlangt;

dann führt zur Artbestimmung via Schlüssel wohl kein Weg an SV vorbei.

Es gibt nämlich mit SV einfärbbare und mit SV nicht einfärbbare GZ. Die sollen ggf. unterschieden werden.

Ob es mit KB ebenso einfärbbare und nicht einfärbbare GZ gibt, und ob diese dann deckungsgleich mit den mit SV einfärbbaren und nicht einfärbbaren GZ sind, ist denkbar aber unklar.

LG, Martin

Hallo Ingo & Björn!

Danke für die Bestätigung meines leisen Verdachtes!

Übrigens wegen Sulfovannilin zum Einfärben der Goeozystidien:

Kann es sein, dass auch Kresylblau zum Einfärben der Goeozystidien funktioniert?

Das habe ich zwar auch nicht, aber es erscheint mir etwas angenehmer im Umgang als 70%ige H2SO4...

Vielleicht bestelle ich das dann beim nächsten Chemie-Einkauf mal mit - wird wahrscheinlich nicht so schnell schlecht.

KOH zum Verseifen des Öls (?) geht also auch zum Nachweis von Goeozystidien? Wahrscheinlich muss sie dann hochkonzentriert sein (20%-30%)?

Welche Chemikalien sollte man denn vorrätig haben?

Im Moment habe ich zuhause

- Lugol (Flechten)

- Natrium-Hypochlorid (Flechten)

- Paraphenylen-Diamin (Flechten)

- KOH 20% & 30% (Flechten)

- Kongorot in SDS

- Karminessigsäure

Ich habe den Verdacht, Baumwollblau (Kollagene), Kresylblau (pos. gel. Moleküle) und ev. Methylenblau (Pektine, Chromatin, usw.) wären von Zeit zu Zeit auch nicht schlecht zu haben.

LG, Martin

Hallo,

der Sporenabwurf war jetzt erfolgreich und viele reife, avertrocknete Sporen liegen vor.

Ich musste habe in Wasser quellen lassen, beobachtete aber viele Sporen mit Vakuolen (?), weshalb ich noch ein Tröpfchen Lugol zusetzte - das soll ja erlaubt sein.

Dann wurden nur Sporen ohne Vakuolen gemessen.

Bild: Sporen in Wasser, wieder aufgequollen

Die gestrige Messung wird bestätigt, allerdings leicht nach oben korrigiert (+0,5µm), da die Sporen vermutlich besser ausgerichtet sind.

Einen Faktor 2 schaffe ich leider nicht, Björn.

L x B = (7,0) 8,0-8,5-9,0 (9,0) x (3,5) 3,8-4,0-4,2 (4,5)

Ich frage mich, ob das Medium durch den osmotischen Druck, den es auf die Zelle ausübt, womöglich einen erheblichen Einfluss auf das Ergebnis der Sporenmessung hat.

Wahrscheinlich resultieren u.a. hieraus die leichten aber merklichen Schwankungen der Messergebnisse.

Geplatzte Zellen/Sporen konnte ich allerdings keine entdecken...

Zum Thema Gloeozystidien wollte ich noch nachfragen, ob damit so etwas hier gemeint sein könnte,

lange Zystidien mit seltsamem, wie gefaltet wirkendem Inhalt (in Kongorot gefärbt):

Bild 3g 400x

Bild 3h 1000x

Ich könnte natürlich versuchen diese auffälligen Zellen zu vermessen, sie wirken jedenfalls recht lang.

Vorgestern habe ich sie fotografiert, aber leider nicht gemessen.

LG, Martin

Hallo Björn,

tja, davon habe ich weder das eine noch das andere.

Martin

Hallo Björn,

ich steh auf dem Schlauch - was ist SV?

Martin

Hallo Peter,

so viel weiß ich: Schichtpilze erkennst du mit am besten an der Unterseite!

LG, Martin

Hallo,

mein erster Sporenabwurf hat leider nicht geklappt, die Chose ist wieder eingetrocknet - tja: eindeutig Anfängerfehler!

So, nach dem erneuten Einweichen habe ich vorhin an 4-6 Stellen von der Probenoberfläche Material gezupft und unter das Mikroskop gelegt.

Der Rest der angefeuchteten Probe liegt derzeit unter einem vom Durchmesser passenden Kunststoffschälchen auf einem Objektträger im Schrank, vielleicht klappts ja heute nacht.

In der Folge habe ich vorhin 22 Sporen auf dem Boden des Objektträgers liegend vorgefunden und gemessen, dann abgebrochen da die Werte dicht beisammen liegen.

Das Ergebnis liegt tatsächlich deutlich höher als bei der Erstmessung (Warum?).

Der Minimalwert von heute entspricht dabei etwa dem Maximalwert der Erstmessung.

Ergebnis jeweils in der Form (Min) - Median-StAbw - Median - Median+StAbw - (Max) - ich hoffe das passt so!

Länge: (7,0) 7,4-8,0-8,6 (9,0) µm

Breite: (3,0) 3,7-4,0-4,3 (4,5) µm

Quotient: (1,8) 1,8-2,0-2,2 (2,3); jeweils aus den L/B-Wertepaaren der einzelne Sporen gewonnen

Wenn ich bedenke, dass sich die Sporen in Wasser durchaus mal drehen und dadurch die Längenmessung zu kleineren Werten verfälscht ausfällt - der Vorteil eines Sporenabwurfs wird dadurch offensichtlich - liegen die Werte zwar am unteren Rand des Wertebereiches von P.incarnata (8-12 x 3,5-5 oder 7,5-10 x 3,5-5 je nach Quelle), aber sie liegen drinnen - wie Ingo eben schon orakelt hat!

Für P.aurantica finde ich die Sporengrößen-Angabe von 16-18 x 8-9.

Da liegen wir aber noch weit weg, obwohl mir der von der Farbe her mehr zusagen würde...

Bin schon auf den Abwurf gespannt und hoffe, er klappt diesmal!

VG, Martin

PS.: Übrigens ist die Pilzkruste gar nicht so dick, wenn man mit der Pinzette hineingreift, ist man sofort auf der Borke und hat quasi nichts erwischt.

Die einzelnen Pinzettenzupf-Proben haben alle etwa die gleiche Dicke, könnte das nicht die Krustendicke sein?

Mirkoskop 100x

Hallo Björn,

der Sporenabwurf läuft.

Ich hoffe er klappt noch, die Probe war schon fast eingetrocknet...

(Ich habe sie wieder angefeuchtet)

LG, Martin

Hallo.

Für Peniophora incarnata sind die Sporen viel zu klein. Phlebia subochracea passt da besser, dachte ich.

LG, Martin

Hallo Ingo!

ich glaube, ich habe ganz oben eindeutig schwarze Rhizinien gesehen.

Sind hier also 2 Peltigeren durchmischt gewachsen?

LG, Martin

Hallo,

gestern im Wald konnte ich einige für mich neue Pilze an Holz beobachten:

1) An einer umgekippten Fichte relativ eindeutig Stereum sanguinolentum (Blutender Nadelholz-Schichtpilz):

Bild 1a

Bild 1b

2) An liegender Rotbuche ein bläulich-grauer Pilz: Oligoporus cf. alni = jetzt Cyanosporus cf. alni (Fastblauender Erlen-Saftporling):

Bild 2a

Bild 2b

Etwas weiter an einem Fichtenstubben nochmals und sogar noch blauer (Unterseite ist leider verwackelt):

Womöglich Oligosporus cf. ceasius = Cyanosporus cf. caesius (Nachbestimmung Andreas - Danke schön!)

Bild 2c

3) An Astabfällen neben einer Waldarbeiterhütte viele orangene Krusten von Peniophora spec (ev. incarnata - siehe weiter unten in Konversation. Danke Björn, Andreas und Ingo für die Nachbestimmung/Korrektur!) Phlebia subochracea, den hätte ich eher gelb erwartet:

Bild 3a

Bild 3b

Mikroskopisch lassen sich hier erkennen:

- dickwandige, kristallbesetzte Zystidien

- Schnallen

- gelhaltige Bereiche

- 4-sporige Basidien

- Riesenzystidien in Ampullenform

- inamyloide Sporen der Größe 3-3,5 x 5-6 (7) µm

Bild 3c

Bild 3d

Bild 3e

Bild 3f Sporen

4) An liegendem, vermoostem Laubholz vermutlich Datronia mollis (Großporige Datronie oder Weicher Resupinatporling):

Bild 4a

Bild 4b

Könnten meine Zuordnungen stimmen?

LG, Martin

Hallo Wolfgang,

ich denke, es lässt sich durchaus einrichten, da nächstes WE nochmals hinzugehen.

Das war schon eine interessante Ecke.

Ich war noch nie dort und konnte einige Erstsichtungen machen - und es ist noch nicht mal weit weg.

Da lohnt sich ein weiterer Besuch allemal!

À propos:

Es ist nicht so, dass ich nicht nach 4-sporigen Basidien gesucht hätte.

Nach dem ersten Überblick suche ich nach Basidien und Sporen.

Möglichst nach Sporen an Basidien, dann kann ich am ehesten davon ausgehen, dass sie zur Probe gehören; und habe zugleich eine Information über die Parallaxe der Sporen an der Basidie und damit über die Zuverlässigkeit der Messung dieser Sporen.

Wenn Basidien gefunden werden, fahre ich vorsichtig den Schärfebereich durch, um möglichst alle Sterigmen zu erkennen.

Die Sterigmen sind in unserem Fall ja recht prominent und kaum zu übersehen, da gibt's ja ganz andere Fälle...

Nun, die vermeintliche Spore in Bild 11 setzt sich weit in der Tiefe fort und gehört wohl zu einer Paraphyse oder Basidiole oder was auch immer, das kann man noch jetzt an der Bildunschärfe erahnen.

Ich habe, bevor ich ein Bild speichere, immer den Tiefenbereich durchgefahren und den Bildbereich nach Sporen abgesucht.

Wäre da nur eine Spore gewesen, hätte ich in diesem Fall auch ein Bild gemacht, um Daten zu sammeln.

Eine (!) frei schimmende Spore (rundum scharf umgrenzt), oder das, was ich dafür halten würde, habe ich tatsächlich gefunden.

Den Fund habe ich oben nicht weiter erwähnt, da unklar ist

- ob sie überhaupt zur Probe gehört (freischwimmend),

- dass in Wasser wahrscheinlich durch eine Parallaxe die Messung verfälscht ist (Länge verkürzt, da im Wasser gedreht),

- ob sie überhaupt reif und ausgewachsen ist,

- man bei einer Spore keine statistische Verteilung erhält,

Es gibt sicher noch mehr Punkte, mir fällt im Moment nichts weiter ein.

Gemessen habe ich 3,5 x 5 µm², Messfehler bei < 0,5 µm, liegt also durchaus im Bereich der im Schlüssel erwähnten Sporenmaße.

Aber wie gesagt, der Dickenmessung glaube ich erheblich mehr als der Längenmessung, das Maß ist ziemlich sicher größer.

LG, Martin

Sporenbild

Hallo Wolfgang,

ich denke es ist am zielführensten, wenn ich nächstes Wochenende vor Ort gehe und mir die Sache nochmal im Detail ansehe, wenn du das möchtest.

Vielleicht finde ich dann auch größere Fruchtkörper irgendwo am Stamm.

Damit stiege auch die Chance, Sporen zu erhalten.

Mittlerweile habe ich eine Ahnung, wie die gereiften Fruchtkörper aussehen könnten.

An allzu exotische Funde glaube ich nicht, eher an eine Fehldeutung meinerseits.

Vielleicht sind die Basidien nicht 2-sporig:

Die eine, vermeintlich von mir gefundene 2-sporige Basidie (Bild 12) hat sich ja mittlerweile scheinbar als nematodenfangende Zystidie herausgestellt.

Ich möchte an dieser Stelle allerdings darauf hinweisen, dass das zweite, unschärfere Schnörpselchen in Bild 12 links zur gleichen Zelle gehört wie das im Fokus liegende.

Damit hätte die Cystidie entweder zwei Fangschnörpsel (gibt's das?) oder es ist doch eine Basidie, oder sonst was anderes.

LG, Martin

Hallo Thorben,

das klärt natürlich die kleinen grauen Schildchen.

Ich vermute die gelben Stielchen sind dann die zugehörige Anamorphe, aus der sich im Laufe der Zeit die Teleomorphe entwickelt?

Es handelt sich also doch zweierlei Pilze, die dicht besammen wachsen.

Dermea cerasi und eine Hohenbuehelia spec.

Da könnten tatsächlich kleine Apothecien sein, die teilweise aufgequollen sind:

Sind die zugehörigen Anamorphen wirklich gelb, nicht schwarz?

Hallo Wolfgang,

ich gebe dein Lob ans Mikroskop weiter: Ist eigentlich nur ein billiges China-Konstrukt mit Smartphonehalterung d'rüber, aber das tut's für mich.

Mitgenommen habe 5-6 oder 7 der Hütchen, wobei die alle etwa ähnlich klein waren, um 3mm Durchmesser.

Die inkrustierten Hyphen habe ich im Huttrama im gelhaltigen Bereich gefunden, da sehen alle Hyphen so aus.

Dem Schlüssel in Thorn/Barron folgend lande ich bei Hohenbuehelia approximans.

Bei Hohenbuehelia approximans wird in Sonia Mentrida Arbeit als einzige ausdrücklich auf Prunus vorkommend erwähnt.

Passt Hohenbuehelia approximans zu den Bildern?

LG, Martin