Beiträge von KaMaMa

Hallo nochmal!

Ich denke, das Rätsel ist gelöst.

Gestern kam eine neues Büchlein mit der Post: Pieter van den Booms "Foliicolous liches and their lichenicolous fungi in Macaronesia and atlantic Europe". 150 Arten (darunter 109 Krustenflechten) werden im Buch besprochen und ein dichotomer Schlüssel ist begegeben.

Beim ersten Durcharbeiten lande ich wegen der makroskopisch von mir als schwarz eingestuften Apothecien bei der Gattung Catillaria (u.a. C. nigroclavata), was aber wegen der anderen Parpahysen schon nicht passen kann. Die Wahl dunkelbrauner Apothecien ohne Thallusrand führt dann wieder zu Fellhanera, was nicht stimmen kann...

Wähle ich anstatt sitzender Apothecien in Schlüssel die alternative Abzweigung "Ap. level with the thallus, immarginate", gelange ich zu Arthonia und Bryostigma.

Randlos sind die Apothecien, aber liegen auf einer Ebene mit dem Thallus? Wenn ich Bild 5 und 6 heranziehe, sind die Apothecien tatsächlich ähnlich größ wie die größten Thallusgranulen und enden teilweise in der gleichen Höhe.

Nächste Entscheidung: Sind die Apothecien globos oder nur konvex? Ich möchte meinen, dass die größeren Apothecien korrekt als konvex beschrieben werden müssen.

Dann lande ich bei "Ap. 0.05-0.24 mm diam. , dark brown to often black, ascosp. 8-12(14) x 2,5-4 µm. Bryostigma muscigenum".
In GB und F auf Koniferennadeln nachgewiesen.

Zurück zu W-H-S: Hier wird eine Arthonia muscigena geführt. Bei Italic werden Arthonia muscigena und Bryostigma muscigenum als Synonyme für Bryostigma lapidicola genannt.

Bemühe ich den Arthonia-Schlüssel im W-H-S sollten gelten: Auf Pflanzenmaterial lebend (Rind, Holz), Sp. 2z, Ap. unbereift, Ap. rundlich, Ap. R-, coccoide Grünalgen (!), Paraphysenenden mit brauner Kappe (?), Sp. kleiner als 16µm, Hyp. hellbraun, Ap. basal verengt sitzend, gewölbt, randlos, bis 0,3mm, Epihym. grünlich braun (!), Hym. farblos, 25-30µm, Thallus körnig.

Bis auf die braunen Paraphysenkappen kann ich alles so bestätigen.

Zu B. lapidicola weiß Italic noch folgendes zusätzlich: "forming < 5 mm wide patches", "paraphysioids very scanty", "Ascospores 1-septate, hyaline, ovoid to clavate, 8-12(-14) x 2.5-4(-5) μm, often with a slightly pointed end, thick-walled."

Die etwas gespitzeten Sporenenden sind vorhanden, die Sporenform asymmetrisch ("keulig", "sohlenförmig"), Papaphysen kaum zu finden.

Die französische Seite ergänzt zahlreiche gute Mikrofotos und weiß zur Jod-Reaktion bei B. lapidicola (AFL): "hyménium I- a été observé dans l’Orne et dans le Finistère (où existe également le chémo à hyménium normal, I+ rouge).", d.h. die J+ rote, hemiamyloide Reaktion ist bei dieser Art bekannt.

Eigentlich passt alles: die Sporenform, Sporengröße, die kleinen dicken Asci mit der deutliochen Okularkammer, hemiamyloides Hymenium, usf.

Ein paar Kleinigkeiten, wie z.B. braune Paraphysenenden, Thallus K/J+ blau, könnte ich noch überprüfen, aber das spare ich mir vorerst.

Andere Flechten warten!

LG, Martin

Hallo Bernd,

erstaunlich, was du alles an Stecknadeln aus der Borke herauszauberst.

Ebenso erstaunlich, wie viele unterschiedliche Stecknadelflechtenarten im gleichen Lebensraum nebeneinander coexisitieren.

Gibt es da womöglich eine Sukzession?

LG, Martin

Hallo Matthias,

ich glaube, ich frage die Flechte mal im britischen Forum nach.

Vielleicht kennt dort jemand da Teil.

Ich würden dann auf jeden Fall berichten.

LG, Martin

Hallo Matthias,

Danke vielmals für das interessante Paper.

Ich glaube fast, du hattest mir schon einmal nahegelegt, es zu lesen. Jedenfalls finde ich eine Kopie davon in meinem Taeniolella-Ordner.

Ich habe das Paper geradde durchgeblättert, in der blöden Meinung, so einen auffälligen Pilz würde ich anhand der sehr guten Zeichungen und Fotos im Paper erkennen.

O Gott, die beschriebenen Arten sehen ja alle fast gleich aus!

Ich muss nochmal an die Probenpräparation, wahrscheinlich habe ich einfach zuviel Material genommen und sehe nicht alles Wichtige.

Jedenfalls weiß ich jetzt zumindest, dass das, was ich als Phragmosporen interpretiert hatte, in Wirklichkeit die Konidiophoren sind, die ich vergeblich gesucht hatte.

Das ist ein großer Schritt in die richtige Richtung.

Morgen geht's weiter.

Aber erst mache ich einen Ausflug.

Viele Grüße und nochmals Danke!

Martin

Hallo Matthias!

Ja, genau das ist auch meine Beobachtung.

Sie steht halt nur im Widerspruch zur Angabe für die Gattung Fellhanera im Wirth ".. Hymenium farblos, J+blau ..", Itlaic zu F. viridisorediata: "hymenium colourless ... I+ blue; ...with a K/I+ blue apical dome containing a darker blue, tubular ring-structure, and an amyloid coat...", BLS zu Fellhanera "Hymenium colourless, I+ blue".

Das stört mich halt ein wenig bei der Zuordnung. Oder schreibt einer vom anderen ab und niemand prüft das, ob es stimmt? Ansonsten wird immer J+ rot bei hemiamyloiden Proben angegeben.

Sehr schöne Tafel übrigens, gefällt mir gut! Du beobachtest offenbar viele einzellige Sporen bei F. bouteillei.

LG, Martin

PS: Interessant finde ich, dass die rot-violette Färbung, wenn ich den Objektträger übernacht stehen lasse, Tags darauf verschwunden ist und einer schwachen, graublauen Färbung Platz macht; offenbar nimmt über etliche Stunden Luftkontakt die Menge an wirksamem Jod ab und die bläuliche Färbung der hemiamyloiden Probe tritt zutage. Einen deulich blauen Tholus sehe ich aber nicht. Gibt man nochmals Lugol dazu, färbt sich die Probe sofort wieder zurück um nach rot-violett.
Das hatte ich noch nicht beobachtet, normalerweise entsorge ich die Probe mit dem Objektträger noch am Abend.

Bild A1: Links Färbung nach K/J => violett / Mitte: gleiche Probe eine Nacht später => blau / Rechts: Erneute Zugabe von Lugol: wieder violett

Hi Matthias, Mreul(✝)

du hast doch sicher schon das Hymenium mit KOH auf Amyloidät geprüft. War das Ergebnis richtig blau, wie es in der Literatur heißt, oder auch so komisch violett?

LG, Martin

Hallo!

Auf altem Harzfluss einer Tanne (?) finden sich neben Fruchtkörpern von Sarea difformis und Lepraria incana (türkis, R-, K/UV+ orange) auch dicke, braune Polster, die fast ausschließlich aus unverzweigten Zellketten bestehen.

Diese Lager bestehen aus meist 4-5-zellige, aber auch um kürzere (bis 1zellige) oder längere Zellketten (Phragmosporen).

Es finden sich keine Längssepten, keine Verzeigungen.

Die Oberflächen der Sporenketten sind teils glatt, teils stark rissig ornamentiert.

Die Durchmesser der stets unverzweigten Ketten liegt bei 5 µm, die Hyphenwände sind sehr dick (knapp unter 1µm), die Septen schwach eingeschnürt.

In unmitelbarer Nähe dieser braunen Hyphenlager befindet sich meist auch Lepraria incana, weshalb ich einen lichenicolen Pilz vermuten möchte.

Einen lichenicolen Hyphomyceten voraussetzend und den Schlüssel von Diederich et al. (Lichenicolous Fungi, Volume 2 · Hyphomycetes) benutzend, gelange ich zur Gattung Taeniolllela, das scheint mir soweit vernünftig.

Dann wird es schwierig, die Flut von Hyphomyceten-Fachbegriffen ist für den Einsteiger schwer zu durchblicken.

Für den Wirth L. incana wird fakultativ Taeniolina scripta angegeben, deren Hyphen allerdings verzeigen.

Was könnte das für ein Pilz sein?

Lässt er sich weiter eingrenzen?

LG, Martin

Bilder:

Bild 1 Alter, trockener Harzfluss an Tanne

Bild 2a Braunes Hyphenpolster

Bild 2b

Bild 2c

Bild 3 in Wasser, 1000x

Bild 4

Bild 5

Bild 6

Bild 7

Bild 8

Bild 9

Bild 10

Von einen großen Lager (um 2 mm), jetzt in Öl gebettet, lassen sich auch andere Hyphen finden, die ev. zur Konidiophore gehören.

Heller, dünnere Wandung, Durchmesser nur um 3µm, Septen viel weiter auseinander gelegen:

Bild 11

Bild 12

Bild 13

Bild 14

Bild 15

Hallo zusammen,

beim folgenden Fund, bin ich mir nicht sicher ob die Bestimmung passt, vor allem wegen der roten Reaktion des Hymeniums auf Lugol.

Trotzdem vermute ich eine Fellhanera cf. viridisorediata.

Vielleicht liege ich aber komplett daneben?

Zur Beobachtung:

Bild 1 Ein Waldweg im Herzen der Schwäbisch-Fränkischen Waldberge, mit einer Tanne an der Böschung...

Die untersten Äste besitzen überwachsene Nadeln. Das will untersucht werden!

Bild 2 Tannenwedel mit hellen Stellen auf den Nadeln

Bild 3 Vermutlich keine Hinterlassenschaft von Vögeln, oder?

1-2-3 Zweiglein eingesackt.

Bild 4 Erstmal nichts Spektakuläres unter der Lupe, dann ein erstes, winziges, schwarzes Apothecium mit gelb-grünem Thallus!

Bild 5 Eine andere Tannennadel auf dem zweiten Ästchen besitzt viele dieser Apothecien!

Die Tannennadel ist etwas 2 mm breit. Der Thallus ist gelblich sorediös.

Bild 6 Die Apothecien sind rein schwarz, die Scheiben gewölbt, uneben.

Sie sitzen verjüngt auf dem Thallus auf.

Einen Rand (Excipulum), insbesondere einen hellen, erkenne ich nicht.

Die Fruchtkörper sind winzig, die größten darunter messen knapp 120 µm.

Der Thallus reagiert R-, UV-.

Bild 7 Apothecium in Wasser in Aufsicht.

Die blasigen Strukturen bis zum Rand sind die Asci.

Auch hier noch kein Fruchkörperrand (Excipulum) erkennbar.

Der Photobiont sind coccoide Grünalgen.

Im Zentrum stammt die Braunfärbung vom Hypothecium, der bläuliche Schimmer randlich stammt vom Epihymenium.

Bild 8 Das Auflicht enthüllt nichts wesentlich Neues, nur einige Hyphen sind seitlich besser zu erkennen

Bild 9 Dünnschnittversuch (in Wasser) - das Hypothecium ist dunkelbraun.

Auch hier kein deutlicher Rand / Excipulum erkennbar.

Kristalletest im polarisierten Licht: keine vorhanden.

Bild 10 Gequetscht in Wasser zeigt sich ein braunes Hypothecium und ein bläuliches bis bräunlich schimmerndes Epihymenium.

Dazwischen ein farbloses Hymenium mit dicken, keuligen Asci (um 20 x 10 µm).

Die Asci sind 8-sporig, was nach Färben in K/J viel besser zu erkennen ist (siehe Bilder 14/15).

Bild 11 Hymenium nach Lugolzugabe => rot-violett, ganz sicher nicht blau (nur zu allererst in starker Verdünnung)

Betroffen sind Asci, die Hymenialgallerte und die Hyphenmasse rechts im Bild, die zur Algenschicht gehören könnte.

Bild 12 Durch das Quetschen werden etliche Sporen frei.

Das Hymenium ist mit Lugol violett eingefärbt, die Sporen gelblich.

Die Sporen sind sohlenförmig (birnenförmig?), d.h. eine Zelle etwas größer und rundlicher als die zweite Zelle, die schlanker und länglicher ist.

Das Septum ist schwach eingeschnürt.

Die Sporen messen 8,0-10,0 x 3,0-3,5 µm.

Das Epihymenium reagiert K-.

Es entfärbt sich bei Zusatz von 3%iger KOH, ebenso wie das Hypothecium.

Bild 13 Nach Spülen und Zusatz von Lugol reagiert das Hymenium erst K/J+ bräunlich orange.

Dia Asci wirken bläulich.

Einen Tag später dominiert die blaue Färbung:

Bild 14 Hymenium K/J+ blau mit rötlichen Resten (1d Einwirkdauer).

Die Asci sind erkennbar 8-sporig, die Okularkammern sind gut erkennbar.

Apikalstrukuren sind allerdings nicht eingefärbt.

Erneuter Zusatz von einem Tröpfchen Lugol färbt alles orange ein:

Bild 15 K/J+ orange-rotes Hymenium.

Eventuell hat vorhandesnes Rest-KOH die J-Konzentration soweit abgesenkt, dass das hemiamyloide Hymenium blau erschien (?). Die Erhöhung der Jodkonzentration liefert eine klare orange-rote Reaktion.

Paraphysen kann ich nicht auflösen, nicht in Wasser, Lugol auch in BWB gefärbt nicht eindeutig, wenn überhaupt sehr, sehr wenige.

Substrat und die 2-zellige Sporenform führen meiner Meinung nach zu Flechten der Familie Pliocarpaceae (Fellhanera, Fellhaneropsis, Byssoloma), entsprechende Gattungsschlüssel dann immer zu den gleichen Verdächtigen:

Wirth-Hauck-Schultz: 1* Hyp. blassbraun - 6 Thallus sorediös / mit Soralen - 7 F. viridisoretdiata: Ap. mit deutlich hellem Rand ? / 7* F. boutteilei: Ap. rosa bis ocker (passt nicht)

Italic: 1* mit Ap. - 2 Ap. schwarz => F. christianensii (Hym. J+blau, Ap.rand heller, Sporen 4-8-zellig,...) passt gar nicht.

bzw. 2* Ap. nicht schwarz (Durchlicht ja bläulich/bräunlich) => F. bouteillei / F. viridisorediata

Lücking ("Foliicolous Lichens in the Black Forest, Southwest-Germany", carolinea, 67, 2009): 1a Apothecien - 2b Sporen nicht 10x länger als breit - 3b nicht Scoliciosporum curvatumm Sporen nicht mondsichelförmig - 4b Ascosporen 2-zellig - 5a Sporen 2-zellig, Ap. dunkelbraun, Th. mit diffusen, grünlichen Soralen => F. viridisorediata

British & Irish Lichens / Key to genera of Pilocarpaceae => F. bouteillei / F. viridisorediata

Auch wenn die Beschreibung nicht 100%ig passt, ich stolpere also dauernd über Fellhanera viridisorediata.

Kennt jemand die gefundene Flechte bzw. Fellhanera viridisorediata und möchte hierzu etwas sagen?

Jede Anmerkung nehme ich dankend an, denn alles ist letztlich lehrreich.

LG, Martin

Hallo Paulis,

solche Fomfom-Städtchen kann man mittlerweile kaufen. Sie werden aus dem Pilz geschnitten und nach oben herausgeschoben.

Die Fensater und Türen werden noch irgendwie hineingebrutzelt.

Das hat Hans hier im Forum schon einmal vorgestellt.

Allerliebst!

LG, Martin

Oh, ich wollte nicht sagten, dass ich kein Wachstum erkenne. Vielmehr scheint ein zusätzliches An- und Abschwellen durch Feuchtigkeitsaufnahme und- abgabe überlagert zu sein. Die Größenänderung durch Änderung des Feuchtigkeitsgehaltes ist stark oder gar stärker als da Wachstum selbst von Frame zu Frame.

Klare Worte zu finden und sich angemessen auszudrücken ist immer schwierig.

Bzgl. der Caloplaca: Meinem Verständnis nach wächst der Thallus am Rand, was kann ich in der Thallusmitte erwarten? Nur am Rand kann die 2D-Kruste sich vergrößern und seinen Algen zusätzliche Fläche bieten. Dickenwachstum bringt nichts, aufsteigende Lappen etc. hat die Kruste nicht. Um sich zu vergrößern und nicht selbst überwachsen zu werden, muss sie am Rand zulegen. In der Thallusmitte steht anschließen Platz für die Vermehrung zur Verfügung (Fruchkörpe, Isidien, Sorale).

Wächst sie nicht, wird sie überwachsen, gefressen oder geht aus anderen Gründen irgendwann unter (Krankheit, Parasiten, Phys. Effekte). Nur wenn sie unaufhörlich weiterwächst, ist auf Dauer die größte Chance für erfolgreiche Vermehrung gegeben.

In der Mitte passiert wenig. Manchmal stirbt die Flechte hier sogar ab und wächst nur am Rand nach außen weiter (z.B. C. cirrochroa u.a.)

LG, Martin

Hallo Peter,

sehr hübsche Idee und schön umgesetzt!

Bei den vielen der beobachteten Krusten scheint wenig zu passieren. Das An- und Abschwellen durch Befeuchtung dominiert gegenüber dem Wachstum.

Die kleine Phaeophyscia (?) hingegen gibt richtig Gas und man kann prima ihre Entwicklung in deiner Bilderfolge verfolgen.

LG, Martin

Hallo,

ich frage mich schon lange, wie schnell eigentlich unsere heimischen Krustenflechten wachsen. Man liest für Krustenflechten von wenigen Millikmetern pro Jahr, während Blatt- und Bartflechten erhebleich schneller wachsen können.

Gestern habe ich eine schöne, leicht identifizierbare Stelle mit Variosporen fotografiert, die ich im April von 2 Jahren (2023) bereits aufgenommen hatte.

Damals war die alte Weinbergsmauer am Ortsrand noch von Brombeeren überwachsen und in Halbschatten getaucht.

Das Haus am Ende der Sackgasse, wo die Flechte wohnt, war seit Jahren leer gestanden.

Bild 1 Variaporen im April 2023

Gestern war ich wieder einmal dort und musste feststellen, dass die Brombeeren zurückgeschnitten waren und im Haus am Ende der Straße eifrig gebort und gehämmert wurde. Die neuen Bewohner richten sich das alte Haus her.

Die Varisporen sind jetzt im grellen Sonnenlicht ausgesetzt, was sie aber sicher nicht stört.

Bild 2 Variosporen im Mai 2025

Ich hatte eigentlich keinen Vergleich im Sinne, aber jetzt am Rechner, finde ich das spannend. 2 Jahre, da sollte man einen Unterscheid sehen, oder? Auf den ersten Blick ist kein Unterschied festzustellen.

Ich wähle zwei Bildausschnitte, in denen zwei Flechten dicht benachbart sind, da sich die Lücke hier aus zwei Richtungen schneller schließt und ein Vergleich leichter fallen sollte:

Bild 3 Bildausschnitte

Bild 4 Bildausschnitt oben - die kleine Lücke zwischen den beiden Thallus schließt sich allmählich.

Die Verluste durch Schneckenfraß sind nicht unerheblich, überwiegen vermutlich den Zuwachs.

Bild 5 Bildauschnitt unten - auch hier scheint sich die Lücke zu schließen. An anderer Stelle (ganz oben) fehlen auch ganze Lappen, die vor 2 Jahren noch da waren.

Was hier fehlt, ist ein Maßstab.

Für Variospora flavescens wird eine typische Lappenbreite von 1(-1,5) mm angegeben, für V. aurantia etwa die doppelte Breite. Die Breite der Lücke hat sich vielleicht um 1-2 Lappenbreiten verjüngt.

Mehr als einige wenige Millimeter für jeder der benachbarten Flechten kann es damnach nicht sein. Damit scheinen 1-2 mm Wachstum pro Jahr durchaus realistisch zu sein.

Ich hoffe für die Flechtlein, dass sie noch viele Zentimeter älter werden dürfen. Allerdings ich fürchte, dass die alte, wacklige Mauer bald entfernt werden wird. Die neuen Bewohner haben sich diesbezüglich geäußert, als ich ihnen erklärte, was ich hier mache.

LG, Martin

Wow, Maximillian!

Diese schöne ungestielte Nadelflechte habe ich bisher nicht finden dürfen.

Ende Juni bin ich wieder in den Alpen - mal schauen, was mir alles über den Weg wächst.

LG und Gratulation zum tollen Fund!

Martin

Hallo Ernst,

Danke für den Tipp!

So steht es auch in dem von dir fotografierten Buchauszug (Die Flechten BWs?).

Schiefer gibt es hier nicht. Basalt wird auch genannt, gibt's hier auch nicht. Ich habe bisher nicht darüber nachgedacht, aber Gleisschotter besetzt wohl meist aus Basalt. Der hohe Schwermetallanteil durch den Metallabrieb der Laufreifen und Schienen macht das Gelände natürlich noch interessanter in puncto Flechten.

Die Höhenlage und Besiedlungsdichte spielen sicher auch eine wichtige Rolle. BW ist hier im Neckarraum ziemlich dicht besiedelt.

Alte Industriebrachen znd Tagebaugelände wären sicher auch nicht schlecht.

Na ja, ich habe das in im Hinterkopf und schau weiter, wo es vielleicht ähnliches hier im Odenwald / nördl. Schwarzwald gibt.

LG, Martin

Aha,

entlang von Bahngleisen auf von Eisenost überzogenem Schotter vorkommend?

Hat so etwas heute noch Gültigkeit? Ich hätte gedacht, dass die DB alles mit Gift besprüht, um die Vegetation fernzuhalten.

Alte, kleine Bahnhöfe und Gleisanlagen fand ich früher immer spannend. Leider lebe ich seit geraumer Zeit nicht mehr in der Nähe davon. Ob sich ein Abstecher flechtenmäßig lohnen würde?

Was meint ihr?

LG, Martin

Hallo Ernst,

bei derartig unvollständigen, teilweise widersprüchlichen Angaben ist es natürlich schwierig zu einem Ergebnis zu kommen.

Vielleicht meldet sich ein erfahrener Forent zum Thema.

LG, Martin

Bei AFL wird für S.evolutum wird KC+ violett genannt, für S. saxatile P-.

Hast du außer P noch andere Tests durchgeführt?

LG, Martin

Hallo Ernst,

zuerst: ich kenne die Flechte nicht.

Mit den Beobachtungen, die du nennst, gelange ich im dt. Schlüssel ebenso (recht eindeutig) bis zur Verzweigung S. evolutum / S. saxatile.

Die Fotos sind stark vergrößernd und daher fehlt Tiefenschärfe. Ich würde nicht alle Bilder so stark vergrößern, da geht mehr Detail verloren, als man gewinnt.

Ich vermisse ein Übersichtsfoto vor Ort im Habitat, in Gesamtansicht. Das ist immer sehr hilfreich.

Das Wissen um das Habitat könnte hilfreich sein. Oft ist es bestimmungsrelevant. Schiefer ist ein metamorphes, urspr. feinkörniges (Ton)Gestein und kann aus allem möglichen hervorgehen.

Ich lese zu beiden Arten:

S. evolutum auf kalkfreiem Silikat (sauer), an schattigen, erdinkrustierten, bemoosten Flächen; hochmontan-alpin. Selten in der montanen Stufe. An der Basis reicht verzweigend - sehe ich nicht, da würde wieder ein Übersichtsbild helfen.

S. saxatile wie S. vesuvianum, also auf basischem Silikat (Basalt), auch im Tiefland und oft mit S. vesuvianum vergesellschaftet.

Vielleicht hilft dir auch eine weiterführende Recherche zum vorliegenden Schiefer weiter.

LG, Martin

Ach, ja:

die Beschreibungen bei AFL sind ganz gut gemacht:

Stereocaulon evolutum

Stereocaulon saxatile

Hallo!

Dieser Tage war ich endlich im Nördlinger Ries, wo es mich schon lang hinzieht. Zuletzt war ich bei meinem Schulausflug vor bald 40 Jahren hier in der Gegend.

Wie erhofft, ist auf den mageren Böden und den zahlreichen Kalkfelsen Schönes und bis dato Unbekanntes zu beobachten.

Bild 1 Blick zum Berg Ipf (668 m) über Bopfingen, am Rande des Rieses - angeblich der schönste Berg Deutschlands, meinen offenbar einige.

Das hat mich dann doch etwas überrscht. Nun gut, er hat schon etwas!

Linden gibt es hier viele, dementsprechend auch viele Lindenschüsselflechten (Parmalina tiliacea).

Zwar nichts besonderes, aber durch ihre weiß-silbrigen Thallus und die isidiöse Thallusmitte, die der Flechte einen zarten Violettton verleiht, kann sie ein schönes Motiuv geben.

Bild 2 P. tiliacea im Kampf um Platz und Licht mit einer isidösen Braunschüsselflechte - an einem Lindenstamm, wie es sich gehört.

Bild 3 Ein kurzer Abstecher in einen aufgelassenen Suevit-Steinbruch: gelblicher Suevitaufschluss zwischen grauem Kalk.

Hier am Rande des Rieses ist alles durcheinandergeschmissen, aufgeschmolzen, verbacken, rekristallisiert.

Bild 4 Lepra albescens mit ihren flachen Soralen, dem radialrissigen, knopeligen Thallus und einem sehr schön mehrfach gezontem Thallusrand.

Die Risse sind dem Wachstum des Substrates geschuldet.

Bild 5 Wahrscheinlich eine sterile Leproplaca chrysodeta, mit einem senfgelben, leprösen Thallus auf Kalkmoosen und direkt auf Kalkstein. Nicht näher untersucht.

Bild 6 Darf im Kalkland nicht fehlen: Peltigera rufescens

Bild 7a Kein Plätzchen kostbare Steinoberfläche bleibt ungenutzt, Kruste wächst auf Kruste, schiebt sich über Nachbarkrusten:

Diese Caloplaca, die auf einer weißen, epilithischen Kruste (Aspicilia?) wächst, ist parasitisch.

Da der orange Thallus kräftig entwickelt und keineswegs reduziert ist, sondern körnig bis grobschollig ist ...

Bild 7b ... und die Sporengroße von 10-12 x 5,5-7,5 µm zeigt, ein Septum um 3,5-5 µm, Thallus und Ap. C-, sollte das wahrscheinlich Athallia inconnexa sein.

Man beachte, wie die Areolierung durch den randlich hervorstehenden Wirt (hier grün-grau) aufgeprägt ist.

Bild 8 Diplotomma alboatrum besitzt konvexe Apothecien, die jung einen weißen Thalluskragen besitzen.

Hier auf einem Kalkstein neben dem Weg im Halbschatten. Die kleine Clapolaca links daneben könnte interessant sein!

Bild 9a Physconia muscigena, eine eher seltene, arktisch-alpine Blattflechte, die auf Moos über Kalk wohnt und nur reliktisch in niederen Lagen auftritt.

Bild 9b Ein wenig mit Wasser besprüht, damit sie zum Leben erwacht. Der Zauber ist von kurzer Dauer.

Die warme Vorsommerluft nimmt die Feuchtigkeit in Sekundenschnelle auf.

Bild 10 Schattige Lindenallee und nicht weit entfernt...

Bild 11 ... sonnig heiße Regolitflächen aus Kalksteinschutt und engestreuten Felsspitzen, die herausragen.

Bild 12 Am besonnten Böschungsrand unter Grasbüscheln viele kleine, bläulich breifte Kissen der Thalloidima physaroides.

Die blasigen Thallusschuppen sind mit kleinen weißen Pseudocyphellen verziert. Sehr artig.

Bild 13 Ein weiterer Flechtenparasit neben/auf Protoparmeliopsis muralis (als weißliche Kalkform links vorne mit im Bild).

Die Placocarpus schaereri hatte ich natürlich zuerst falsch bestimmt.

Weiß man, um was es sich hier handelt, passen Beschreibung (z.B. jung auf Lecanora muralis und Lobothallia radiosa, Sporen jung halonat, 24x11µm, Mark J+blau, US schwarz, Areolen mit Fuß verengt aufsitzend, etc.) und Fotos, bestens zum Fundbestand. Gar nicht so selten hier.

Bild 14 Dermatocarpon miniatum, eine pyrenocarpe Nabelflechte, die auf Kalk anzutreffen ist.

Es freut mich immer, wenn ich sie antreffe. Etwas für die Freunde der pyrenocarpen Flechten, wie auch die Placocarpus.

Bild 15 Lobothallia radiosa ist hier allgegenwärtig

Bild 16 Auch die gesteinsbewohnenden Collema cristatum, an den aufgebogenen Lappenrändern gut erkennbar, ist vermehrt anzutreffen.

Bild 17 Einige alte Stäublinge lagen lose (!) im Kalkmagerrasen herum.

Wenn ich nicht so viele Flechten gefunden hätte, hätte ich bestimmt einen eingesteckt.

Interessant wäre es schon zu wissen, was das hier ist.

Vielleicht hat jemand eine Idee?

Gehölze waren meines Wissens Wacholder und einige niedrige Laubbüsche unbekannter Art in der Nähe.

Bild 18 Cladonia pocillum zwischen Mossen

Bild 19 Kein Quadratzentimeter bleibt unbewachsen.

Bild 20 Ein Abschiedsblick zurück zum Ipf in der Ferne, dann geht es zurück nach Hause.

Dort ist es ja bekanntlich am schönsten.

LG, Martin

Eine Beschreibung der Arten mit Schlüssel zum Schwerpunkt pyrenocarpe Flechten (Flechten mit Perithecien, bzw. Pyrenocarpen als Fruchtkörperform) hat Alan Orange 2013 zusammengetragen:

Das 250 Seiten starke Werk "British and Other Pyrenocarpous Lichens" liegt seit 2013 in Version 2 als Download vor und umfasst alles, was der britische Pyrenoflechtenfreund braucht:

- ausführliche Einleitung

- dichotomer Schlüssel zur Bestimmung der Gattungen

- Gattungsschlüssel führen zur Flechtenart

- Beschreibungen aller Arten, häufig inkl. Makrofotos und/oder sehr guten Mikroszeichnungen (stets bemaßt)

- Literatur und

- Tabelle mit Sporengrößen zu Verrucaria, Heteroplacidium, Hydropunctaria and Placopyrenium

Die Zeichnungen in der Arbeit sind nicht zu unterschätzen, da viele Mikrofotos alles mögliche zeigen, nur nicht das, was erkannt werden soll - ein wirklich gutes Mikrofoto ist eine Kunst!

Zeichnungen sind aufwendiger anzufertigen, und stellen alles Wesentliche klar und deutlich in den Vordergrund.

Einzigartig ist wohl auch die ausführliche Einleitung mit der Beschreibung zum Bau und Histologie dieser Fruchtkörperform.

Wen schon immer der Unterschied zwischen Paraphysen, Paraphysoiden, Pseudoparaphysen, Periphysoiden und Periphysen interessiert hat, ist hier richtig aufgehoben.

Hallo Peter,

ich war auf der Suche nach Beschreibungen und Fotos zu einer Schuppenflechte über Kalk und entdecke zufällig im genannten Artikel eine Abbildung dieses Pilzes. Reiner Zufall also.

LG, Martin

Hallo Ingo,

sehr interessant, das! Hab ich auch noch nie gesehen, das.

Sind die Sporen einzellig, vielzellig? Sie sehen seltsam aus.

Bin mir aus kannst du mit deinem Moos-Einführungskurs sehr germe weitermachen. Das ist auch spannend. Irgendwann wollte ich mir das Thema ohnehin vornehmen.

LG, Martin

Hallo Maximilian,

wie schön, ein Flechtenbeitrag über die Alpen! Das macht Appetit auf mehr.

Die Baeomyces hat schon kurze Stielchen. Die Apothecien scheinen über dem Thallus zu schweben. Eine Icmadophila hätte sehr viel hellere, rosa Apothecien, meist direkt aufsitzend, groß, und oft wellig verbogen. Ansonsten sind auch die Sporen unterschiedlich.

Cladonien sind immer so eine Sache, ein Tüpfeltest kann da gleich sehr helfen.

Spannend!

Liebe Grüße, Martin

Hallo Ingo,

ich schließe mich Brummel an, ganz toll dokumentiert.

Das hatte ich noch nie gesehen, super!

LG, Martin

Kurz zusammengefasst und nachgehakt:

Charakteristische Punkte

- auf Moos in Kalkgebiet

- Thallus weißlich/hellgrau, zusammenhängend warzig-körnig

- Apothecien ohne Anzeichen eines thallinen Randes, jung mit dünnem, braunem Eigenrand

- Apothecien verjüngt aufsitzend, randlos, stark gewölbt

- intensive K+, C+ und P+ purpurne Reaktionen des Epihymeniums

- Epihymenium N-

- Sporen-Nachmessung : 16,5-19,5 x 8,1-9,9 µm (Septum 2,6-4,4 µm), Q = 1,9-2,4; N = 15

Bild 9 Reife Sporen mit breitem Septum

Bild 10 Ap.-Schnitt in Wasser

Bild 11 Farbreaktion des Epihymeniums mit C unter Mikrsokop

Bild 12 Farbreaktion des Epihymeniums mit P in Wasser unter Mikroskop

Die Nachmessung reifer Sporen aus einem größeren Apothecium ergeben etwas kleinere Sporen- und Septenmaße.

Es lohnt erneutes Nachdenken:

Bryoplaca jungermanniae möchte ich jetzt endgültig ausschließen, da ein bleibender Eigenrand vorhanden sein soll.

Zudem gilt die Flechte in Deutschland als extrem selten bis verschollen.

Bei den beiden Arten in der engeren Auswahl mit gewölbten Apothecien, Bryoplaca livida und Blastenia ammiospila, sind die Sporenmaße deutlich kleiner und schmaler angegeben (13-18 x 6-8 resp. 14-16 x 6-8 µm). Das passt nicht gut.

Hingegen Bryoplaca sinapisperma hat u.a. folgende Angaben (Wirth-Hauck-Schultz):

"Sporen ... 12-22 x 6-12 µm, Ap. rostrot bis braunschwarz", "Thallus weiß bis d. grau, körnig, dünn, uneben", ferner die Angaben

vorwiegend alpin, reliktisch an (sub)montanen Stufen, kalkhold, auf absterbenden Moosen und anderem Pflanzenresten; selten; Funde in Schw./Fränk. Alb

Die Septumbreite wird bei Italic mit 2,5-3 (4) µm angegeben, was noch recht gut passt.

Bryoplaca sinapisperma hat passende Sporenform und -größen, der Thallus wird explizit als weiß, körnig, dünn angegeben.

Sie ist in der Schwäbischen Alb nachgewiesen und gilt nur als selten.

Ich denke, diese Art ist die bessere und auch eine gute Arbeitshypothese für den Fund.

Hallo Patrick nupharlutea , vielleicht magst du deine Meinung geben, ob B. sinapisperma eine gute Zuweisung für den Fund sein könnte?

LG, Martin

P.S.:

Zwischenzeitlich bekam ich eine Rückmeldung via Facebook, dass die Merkmale des Fundes (konvexe, randlose Apothecien) weniger für B. jungermanniae, sondern tatsächlich für B. sinapisperma sprechen. Da fühle ich mich bestätigt.