Beiträge von KaMaMa

Hallo Bernd,

das ist interessant, habe ich so noch nie gesehen!

LG, Martin

PS:

Bilder besser um 90° drehen; Brummel hat wegen so etwas mal einen schiefen Hals bekommen.

Ich jetzt auch.

Hallo,

so sehr mir Cladonien gefallen, so ich tue mich ihrer Bestimmung meist schwer...

Dieser Tage stieß ich am Rand einer Schonung, hier am mittleren Neckar, an einer etwas lichteren Stelle im Wald, auf einen liegenden Abschnitt eines Baumstammes (Eiche), an dessen Stirnfläche Cladonien wuchsen.

Bild 1 Lichtung im Laubwald, Blick von Fundstelle abgewand zur gegenüberliegenden Seite der Lichtung gerichtet

Bild 2 Liegender Eichenstamm mit Cladonien, im oberen Bereich wohl C. coniocraea mit stumpf endenden Podetien; unten sprossende, unförmige, flache Becher.

(Oberhalb Hymenochaete ribiginosa, der dunkelbraune Pilz bevorzugt Eiche und Kastanie.)

Bild 3 Ein Teil der Podetien mit unförmigen, flachen Bechern

Bild 4 Podetien mit sprossenden, unförmigen Bechern; ein paar der untersten Podetien wandern mit nach Hause

Bild 5 Überblick

Bild 6 Überblick

Die sterilen, unverzweigten Podetien sind um 2cm lang, besitzen breite, unförmige, geschlossene Becher, die fingerartig sprossen.

Der größte Becher der Probe misst über 5mm in der Breite und ist deutlich gegen den Stiel abgesetzt.

Das Becherinnnere ist grünlich berindet.

Aus den Bechern sprossen kleine Stiele mit bräunlichen Pyknidien.

Die Podetienstiel sind an der Basis berindet, teils beschuppt.

Die gelbliche Rinde ist rissig areoliert, teils abfallend, das weiße Mark entblösend.

Sorale sind vorhanden, die im oberen Teil der Stiele verschmelzen.

Die Becherunterseiten sind sorediös.

Die Grundschuppen der Probe sind bis 8mm breit und 8mm lang, sind oberseits grünlich, unterseits weißlich und sorediös.

Die Podetien reagieren:

K+ gelb => langsam braun werdend

P+ gelb => langsam nach orange verfärbend

Ich werde aus der Probe nicht schlau:

Ist die Flechte nun, wie ich vermute, als grau-grün einzustufen oder womöglich doch als gelblich (fumarsäurehaltig)?

Liegt in in Bild 2-4 ein Thallus vor, läge vermutlich C. coniocraea vor; allein die sehr breiten Becher wollen für mich nicht recht ins Bild passen.

Welche Cladonie mag das hier sein?

Für sachdienliche Hinweise wäre ich dankbar!

LG, Martin

Weitere Bilder:

Bild 7 Ausschnitt eines flachen Bechers. Inneres deutlich berindet

Bild 8 Bräunliche Pyknidien aus Becherinnerem sprossend

Bild 9 Podetienstiel mit Soralen und rissiger, gelblicher Rinde

Bild 10 Grundschuppe unterseits weißlich, stark sorediös

Update:

An heißen Tagen war der Duft des Pilzes gut 10m weit und sehr(!) intensiv zu riechen.

Familienmitglieder sprachen von Gestank, weil sie den ideellen Wert des Pilzes nicht kennen.

Banausen!!!

Heute Nacht aber ging der Stamm zu Boden.

Bild 13 Pilz und Wetter leisten ganz Arbeit

Zum Abschied noch ein Foto vom gealterten Fruchtkörper:

Bild 14 Vertrockneter Fruchtkörper

Gehab dich wohl, Amelanchier, ma chère!

LG, Martin

Hallo!

Heute Nacht hat es hier, wenn auch nur sehr kurz, ordentlich geschüttet und der Wind blies, dass ich davon aufwachte.

Der Felsenkirschenstamm, der von Sarcodontia setosa befallen ist, ging dadurch zu Boden.

Bild 12 Gefalle Felsenkirsche

Der Fruchtkörper des Pilzes ist seit seiner ersten Entdeckung Mitte August diesen Jahres deutlich gealtert...

Bild 13 Braun verfärbtes, altes Hymenium des Pilzbefalls durch S. setosa

Zur Freude meines Sohnes, der sich zur Sommerszeit am betörenden Duft des Fruchtkörpers störte, muss ich den Stamm nun wegräumen.

Da ich beim Zerlegen vom Regen überrascht wurde, und der alte Stamm so schön von Flechten überzogen ist, habe ich die Pause genutzt, um ihn zum Abschied genauer anzuschauen.

Ei, was muss ich entdecken?

Bild 14 Flechtenbewuchs auf Ast der Felsenbirnen

Bild 14 Eine Polycaulonia polycarpa auf Felsenbirne!

Auf dem Foto durch das trübe, herbstliche Licht bei Regenwettter etwas unscharf, aber doch recht eindeutig zu erkennen:

Da sitzt ein kleiner, gelber Thallus von Polycaulonia polycarpa zwischen den Physcien!

Die Flechte war also die ganze Zeit hier direkt vor meiner Nase in meinem Garten und ich wusste es nicht, sah sie nicht!

Ein klarer Beweis dafür, dass man halt nur das sieht und erkennt, was man schon einmal gesehen hat und ergo kennt.

Ansonsten ist man schier blind.

LG, Martin

Außerdem wächst der Pilz sogar weiter, wenn du nur ein Stück vom Rand oder einen Keil herauschneidest.

LG, Martin

Hallo Pablo,

auch ich schließe mich sehr gerne dem Reigen der Gratulanten an, und wünsche dir alles erdenklich Gute, Gesundheit, Zufriedenheit und natürlich auch feine Pilzchen!

Liebe Grüße vom Neckar,

Martin

Hallo Racoon,

Climactocystis und die Trameten verursachen meines Wissens Weißfäule und sollten damit gleich ausscheiden!

Wenn ich das richtig sehe, verursacht der Pilz eine typische Braunfäule (Bild 5+6).

Die Pilzchen auf deinen Fotos wirken deutlich gelblich.

Der Fenchelporling ist gelb bis orange an der Wachstumzone, alte Fruchtkörperanteile eines mehrjährigen Fruchtkörpers wären hingegen braun bis schwärzlich.

Deshalb wäre ich - wie Mausmann und Beli - auch beim Fenchelporling, einem braunfleischigen Braunrotter.

Im Übrigen wird dem Fenchelporling nachgesagt, nach Anis(samen) oder nach Orange zu duften!

Das passt doch fast ganz gut zu dem genannten Aprikosenduft!

Außerdem bildet er gerne Fruchtkörper oben auf Koniferenstümpfen, wie in Bild 1-4.

Bei uns hier wächst er jedenfalls gerade (Bilder vom letzten Wochenende):

Neben einem Längsschnitt, um die Farbe des Fleisches zu prüfen, schau dir auch die Unterseite mit den Poren an!

O. odoratus hätte rundliche, teils längliche Poren in der Dichte von etwa 2 Poren / mm.

LG, Martin

Hallo Freunde der lichenisierten Pilze!

In einem lichten Abschnitt eines Eichen-Hainbuchen-Rotbuchenwald, auf kalkhaltigem Boden am mittleren Neckar hier bei mir in der Nähe, steht eine Eiche mit weißlicher Borke.

Im Wald darf viel Totholz stehen und liegen bleiben.

Bild 0 Im Eichen-Hainbuchen-Mischwald

Bild 1 Weißliche Krusten in Borkenrissen einer Eiche

Beim Betrachten der Borke mit der Handlupe fallen winzige, schwärzliche Fruchtkörperbildungen auf.

In entnehme ein Stückchen Borke zur Untersuchung.

Bild 2 Schwarze Fruchtkörper

Unter der Stereolupe erweisen sich die FK als Pyknidien und die Flechte als steril.

Die Pyknidien sind unregelmäßig rundlich geformt und in den grauweißen Thallus eingesenkt.

Sie haben einen schwarzbrauen Rand, die Konidienmasse ist weißlich.

Bild 3 Trockener, weißlicher, rissiger Thallus mit bräunlichen Flecken und dunklen Pyknidien unter der Streolupe

Die Pyknidien sind oberseits schüsselförmig weit geöffnet.

Sie sind klein und haben Durchmesser um 50-200µm.

Größere Pyknidien sind häufig von einem erhabenen, weißen Wall umgeben.

Bild 4 Trockener Thallus mit eingesenkten, becherförmigen, schwarz-braunen Pyknidien, gefüllt mit weißlicher Konidienmasse

Größere Pyknidien sind von einem weißen Wall umgeben (Bildeinsatz)

Bild 5 Kratzer zum Nachweis von Grünalgen im Thallus

Beim Färbetest mit KOH färbt sich der Thallus stellenweise orange-bräunlich, stellenweise grünlich.

Ein Test mit Wasser zeigt die gleichen Farben, die offenbar die Algen und/oder das Substrat durchscheinen lassen.

Der Thallus reagiert mit den flechtenüblichen Färbereagenzien (K, C, KC, P) negativ: R-

Die Konidienmasse quillt im angefeuchteten Zustand breiig und milchig aus den Pyknidien heraus.

Bild 6 Angefeuchtete Pyknidien

Bild 7 Der durchgefeuchtete Thallus erscheint grünlich bis orange/bräunlich

Unter dem Mikroskop lassen sich Trentepohlia-Algen finden, die für die grünen und orangen Farben des angefeuchteten Thallus verantwortlich sind.

Bild 8 Trentepohlia-Algenzellen mit typ. orangen Tröpfchen im Zytoplasma

Die Pyknidien offenbaren im Querschnitt unter dem Mikroskop angenähert Halbkugelform.

Sie sitzen auf der Algenschicht auf und sind in die weiße Epinektralschicht eingebettet.

Ein weißer Kragen umgibt die Pyknidien.

Das Excipulum zeigt an dünnen Abschnitten eine bräunliche bis violette Färbung.

Bild 9 Pyknidien-Querschnitt (400x) in Wasser, ungequetscht. Konidienmasse weiß, Excipulum stückweise bräunlich-violett (siehe Bildeinsatz 1000x).

In KOH verbt sich das Excipulum ins Grünliche um:

Bild 10: Gleicher, ungequetschter Querschnitt in verd. KOH (wg. Öl nur 100x). Excipulum grünlich verfäbt (Bildeinsatz 1000x).

In Wasser lösen sich nur wenige einzelne Konidien aus der gelartig verklebten Konidienmasse heraus.

In verdünnter KOH hingegen löst sich die Konidienmasse schnell in Einzelzellen auf, die davonschwimmen:

Bild 11 links: gequetschte Pyknidie mit weißlicher Konidienmasse, rechts: nach KOH-Zugabe löst sich die Konidenmasse in Einzelzellen auf

Die Konidien (Pyknosporen) liegen in Form von einzelligen, meist ungekrümmten, farblosen Stäbchen (bacilliform) vor.

Ihre Abmessungen liegen ungefähr bei 4-6 x 1 µm².

Bild 12 Konidien (Pyknosporen)

Mit dem Schlüssel für sterile Flechten mit Pyknidien (nach Wirth-Hauck-Schulz) komme ich auf nichts Rechtes.

Verwende ich den interaktiven, italienischen Schlüssel auf italic.units.it, gelange ich zu einer Flechte Inoderma byssaceum:

"Pycnidia emergent, 0.15-1.4 mm in diam., dark brown to black but thickly white-pruinose at least at the base, flattened to urceolate, with pale brown conidial masses usually protruding from the apical pore, the wall K+ greenish black, N+ slowly orange-brown. Conidia bacilliform, straight, (4-)5-6 x 1-1.5 µm. Photobiont trentepohlioid. Spot tests: thallus K-, C-, KC-, P-."

Aber ob das stimmen kann, bezweifle ich allerdings...

Die Beschreibung und die verlinkten Fotos auf Consortium of Lichen Herbaria passen recht gut - aber, dass die Flechtengattung Inoderma in "Die Flechten Deutschlands" nicht erwähnt wird, lässt mich stark am Schlüsselergebnis zweifeln.

Inoderma byssaceum soll laut Britsh Lichen Society auf alten Eichen in subozeanischer Lage leben, wahrscheinlich nicht so selten in Großbritannien vorkommen, wie nachgewiesen, da vermutlich übersehen oder mit L.ecanactis abietina verwechselt (dort Pyknidien C+ rot). In der Tschechischen Republik mehrfach nachgewiesen. Könnte also vielleicht hinkommen...

Hat jemand eine Idee zur gezeigten Flechte ( nupharlutea )?

Die Euamyloität der Hyphen (J+, KJ+ hellblau) habe ich an der Probe bisher nicht nachgewiesen.

LG, Martin

Hallo Bernd,

hat der Bovist "Wurzeln" oder vielleicht einen Stiel?

Das Objekt ist ein bisschen zu stark mit Sand verschmutzt, als das man es auf dem Foto gut erkennen könnte.

LG, Martin

Hallo,

das die Zwecken nur in Gras sitzen, stimmt nicht. Erst gestern hatte ich eine Zecke in Kopfhaar gefunden, eine halbe Stunde nachdem ich in gebückter Haltung in die lichte Hecke hinter dem Komposter bin, um die Pilze dort zu kontrollieren

Da hier noch nichts zum Thema statische Aufladung gesagt wurde, hier ein Link zum Thema bei Spektrum der Wissenschaft: Die Tierchen müssen nur loslassen, wenn ihr vorbeikommt und geschehen lassen, was die Natur von ihnen will.

So auch wir. Fügt euch!

LG, Martin

Hallo Claus,

vielen Dank für das Foto zum Erklären des flockig-Frauen Stiels und die erläutern Worte.

Ich weiß, dass die von dir genannten Pilzarten nur Vorschläge zu meinen Funden sind und die richtige Bestimmung ausschließlich von mir, den Finder durchgeführt werden kann.

Trotzdem sind solche Vorschläge sehr hilfreich für Lernende, wie mich.

Eine Farbtabelle mit dem Romagnesi-Code versuche ich zu finden, er scheint sehr hilfreich in der Kommunikation über die Farbnuancen der Täulingssporen zu sein. Ohne ihn wird es schnell umständlich.

LG, Martin

Hallo Mareen,

das war natürlich nur ein dummer Witz.

Die Stiche sehen schlimm aus und schmerzen bestimmt auch heftig.

Ihr habt mein volles Mitgefühl!

LG, Martin

Hallo Benjamin,

also die Verbreitung dieser Biester sind ganz sicher nicht auf Norddeutschlands beschränkt.

Hier am mittleren Neckar gibt es die auch!

Ich bin bisher zwar nur eine guten Handvoll von ihnen begegnet, und hatte bisher das große Glück nicht gestochen zu werden, aber es gibt sie definitiv auch hier im Süden!

Neulich kitzelte mich was am Nacken im Auto auf der Rückfahrt aus dem Wald. Immer wieder lange ich halb unbewusst hin, bis ich plötzlich so ein schon flügelloses Viech zwischen den Fingern hatte. Ich war kurz vor der Panikattacke, was am Steuer nicht so gut kommt...

Ich schleuderte es auf Amaturenbrett, von wo es mich anglotzte. GRAUSIG!

Das möchte ich so schnell nicht mehr erleben!

LG, Martin

Hallo Mareen,

wo auf deinem Foto ist denn der Stich?

Der Fleck unter deiner Kniescheibe?

LG, Martin

Hallo Claus,

vielen Dank für deine Antwort!

Das hilft sehr.

ad 1)

Es freut mich, mit R. velenovskyi vermutlich richtig zu liegen.

ad 2)

R. aurora/velutipes ist eine gute Idee, der Pilz sieht recht ähnlich aus und soll tatsächlich weiche Lamellen haben.

Einen einwärts gebogenen Hutrand glaube ich auch sehen zu können.

SV habe ich leider nicht im Sortiment, kann ich also nicht testen.

Mittlerweile sind die Pilze ohnehin knochentrocken.

Interessant ist vielleicht die frische Stielbasis im Wald, als der Stiel noch nicht berührt war.

Er soll eine "netzflockig bepuderte Stielspitze" (Wikipedia) haben.

Mit dem Begriff kann ich nichts anfangen.

Bild B6 Brauner Täubling direkt nach Auslösen aus Substrat noch mit stark fasrigem Stiel

ad 3)

Da bin ich ein wenig enttäuscht, mit dem mutigen Tipp - trotz tief violettem Hut ohne Grüntöne - auf R. ionochlora falsch zu liegen.

Ich war u.a. auf diese Idee gekommen, da neben den anderen von mir angegebenen, zur R. ionochlora passenden Merkmalen, insbesondere das Fleisch unterhalb der Huthaut violett ist.

Das stand in der Übersichtstabelle (Lyschik) und im hiesigen Russula-Feldschlüssel von Bernd nur bei wenigen Arten und bei R. atropurpurea wird dieses Merkmal gar nicht erwähnt - oder ist das trivial und nicht erwähnenswert?

R. atropurpurea agg. passt natürlich schon vom Namen her prima, allerdings hatte ich gar keine Schärfe feststellen können.

Das kann aber an den Wasabi-Nüssen gelegen haben, die ich nicht allzulange zuvor gegessen hatte.

Er soll ja auch schwarzviolett daherkommen!

Die Farbwerte nach Romgnesi für das Sporenpulver kann ich leider nicht angeben, da ich die entsprechende Tabelle nicht habe.

Was ich versucht habe, war ein Vergleich mit den Farben im Pilzrad in FoTE.

Ob das was bringt, weiß ich nicht, ich kann es aber mal einstellen, vielleicht hilft das.

Falls du auch das (gedruckte) Buch haben solltest, und die Exemplare alle identisch gedruckt sind, wäre so ein objektiverer Vergleich mit realen Farben denkbar.

LG, Martin

Sporenpulver auf farbtafelartigen Vergleichsbildern:

Bild V6 Sporenpulver zu Russula 1 (R. velenovkyi) auf Pilzrad aus FoTE

Bild B7 Sporenpulver von Pilz 2 (ev. R. velutipes) auf Pilzrad aus FoTE

Bild I5 Sporenpulver von Pilz 3 (ev. R. atropurpurea) auf Pilzrad aus FoTE

Hallo!

Im Wald ist gerade nichts los, weil seit zu langer Zeit kein Regen fällt.

Ich gestern war mal in den Bergen oberhalb des Neckarbeckens unterwegs, wo Sandstein ansteht und der Boden sauer ist.

Eichen-Rotbuchen-Hainbuchen-Laubwald mit vielen eingestreuten Kiefern und Lärchen.

Bild 1

Jede Menge Scleroderma citrinum - Funde inkl. Pseudoboletus parasiticus sprechen für den sauren Boden!

Bild 2 Doppel-Erstfund und Nachweis für saueren Boden:

Scleroderma citrinum (Sporen unterbrochen netzig ornamentiert, Peridie sehr dick um 1cm, kein Scheinstiel) mit parasitischem Röhrling Pseudoboletus parasiticus

Gefunden habe ich ferner einige wenige Täublinge:

Vielleicht hab jemand Lust, die drei Funde anzuschauen, bei ersten und dritten der Täublinge konnte ich ein Bestimmung durchführen, bei der zweiten Art bin ich ahnungslos.

Die Sporenbilder erspare ich euch, mit Lugol bekomme ich das Ornament nicht kontrastreich eingefärbt.

1) Russula velenovskyi - Die Bestimmung halte ich eigentlich für schlüssig:
In einem Bereich mit Birken fanden sich Exemplare von mittelgroßen, weinroten Täublingen mit oranger Hutmitte.

Größe: 8cm Höhe und Hutdurchmesser, Stiel 1,5-2cm dick.

Auffällig sind die roten Lamellenkanten am Hutrand!

Auch der Stiel zeigt an der Basis stellenweise schwachen Rotschimmer, KOH-.

Der Stiel ist weich, im Inneren markig gefüllt.

Das Mark rollt sich beim Schneiden - wie bei einer frischen Semmel - zu einer Kugel zusammen.

Der Pilz riecht unauffällig (nicht unangenehm) und schmeckt mild.

Das Sporenpulver ist orange-gelb (hätte ich bei diesen Lamellen viel heller erwartet).

Die Huthaut ist weit abziehbar und deckt darunter rötliches Pilzfleisch frei.

In der Huthaut befinden sich um 100µm lange, rötlich gefüllte Dermatozystiden.

Das Sporenornament ist deutlich und leicht netzig verbunden, etwa A2/A3.

Sporengröße: 7,5-8,5 x 5,8-7 µm²

Die Lamellen sind sehr spröde und splittern sofort.

Ich möchte deshalb Russula velenovskyi, den "Ziegelroten Täubling" vermuten.

Bild V1 Rote Russula bei Birken, Eichen, etc.

Bild V2

Bild V3 Rote Lamellenkanten, crmeweiße Lamellen

Bild V4 Sporenabwurf gelb-orange, Stiel rötlich

Bild V5 Rot gefüllte Dermatozystide

2) Unbestimmter Täubling

Ein ganzes Stück weiter fand ich einen sehr kleine, fuchsbraune Russula auf der Rückegasse.

Rotbuchen und Eichen umher, sehr nah bei den Kartoffelbovisten (Bild 2) und der Russula cf. ionochlora (s.u.) gefunden.

Geruch unauffällig, Geschmack mild.

Größe: Hutdurchmesser nur 4cm, Pilzhöhe ebenso 4cm.

Huthaut matt, trocken.

Auffallend sind die weichen, geschmeidigen, cremefarbenen Lamellen. Sie splittern kaum, sondern biegen sich unter den Fingern.

Das Sporenpulver ist creme-weiß (ich schätze Ib).

Das Sporenornament besteht aus ganz schwach vernetzten Warzen, (B2?).

Sporengröße: 6,8-8,3 x 6,0-6,5 µm²

Hier komme ich auf keine passende Täublingsart.

Die weichen Lamellen sollten vermutlich stark eingrenzen.

Muss ich die Huthaut mikroskopieren?

Bild B1 Brauner Täubling auf Waldweg

Bild B2 Lamellen creme-weiß und weich, nicht splitternd

Bild B3

Bild B4 Hut im Tageslicht

Bild B5 Sporenpulver

3) Russula ionochlora

Ein paar Meter weiter finde ich ein Einzelexemplar eines frisch umgestoßenen Pilzes, eine Russula mit schwarz-violetter Huthaut.

Der Pilz interessiert mich schon wegen der sehr dunklen Huthaut, im Wald wirkte sie schwarz.

Eichen und Rotbuchen stehen in der Nähe.

Der Pilz hat mittlere Größe: der Hut hatte um 8cm Durchmesser , der Stiel misst 8cm Länge und 2cm Dicke.

Flache Fraßstellen am Hut sind violett gefärbt.

Huthaut glänzend glatt und dreckverklebt.

Geruch unbedeutend, Geschmack mild.

Die Lamellen sind cremeweiß, ohne untermischte Lamelletten und sehr brüchig.

Die Huthaut lässt sich weit abziehen (>50%) und gibt violettes Fleisch frei.

Der weiße Stiel ist schwammig weich.

Das Sporenpulver ist weiß bis ganz hell cremefarben (Ia/Ib).

Das Sporenornament ist deutlich verbunden, ich würde B2/B3 schätzen.

Sporengröße: 8,0-9,0 x 6,5-7,0 µm²

Trotz aller fehlender Grüntöne und der überaus dominanten "Violettnote" komme ich beim Schlüsseln zu R. grisea / R. ionochlora.

Da R. grisea eher größer sein soll und dunkleres Spp haben soll, tendiere ich zu R. ionochlora - ob's stimmt?

Bild I1 Umgestoßene Russula

Bild I2 Huthaut dunkelviolett, Fraßstellen violett, Lamellen cremeweiß und spröde, Huthaut dreckverklebt

Bild I3 Stelle nach Abziehen der Huthaut

Bild I4 Sehr helles Sporenpulver

Ob zumindest eine Bestimmung zutrifft?

Täublinge finde ich zunehmend spannend!

LG, Martin

Hallo Bernd,

vielen Dank für die viele Arbeit, die du dir hier zumutest, für das Zusammentragen der Informationen zu den Täublingen!

Danke auch allen anderen, die hier Daten und Fotos beisteuern - ein tolles Projekt!

Über Täublinge stolpere ich regelmäßig im Wald, sogar wenn sonst praktisch nichts zu finden ist.

Weil ich sie so häufig finde, versuche ich mich immer wieder in Täublingsbestimmung, wobei mir dein Schlüssel und die anderen PDFs, die in der Thread-Übersicht aufgelistet sind, zunehmend helfen.

Ein interessanter Punkt, auf den ich heute gestoßen bin, ist die Floureszenz der Täublinge im UV.

Bei den drei gestern gesammelten Arten, färbt sich die Huthaut der einen Täublingsart unter UV von dunkelviolett nach türkisgrün, die andere Art zeigt statt weißem plötzlich rosa Stielfleisch, während eine dritte Art giftgelbe Lamellen bekommt.

Zu dem Thema (außer einem Kurzartikel zu Thema im Tintling anno 2015) ist nicht viel zu finden.

Bei Flechten wird die UV-Reaktion neben den chemischen Färbereaktionen durchaus als bestimmungsrelavantes Hilfsmittel herangezogen, hat mich dort aber bisher nicht richtig überzeugen können - vielleicht, weil die Flechten so klein sind und wenig Material unter meiner UV-Quelle (Taschenlampe) liegt.

Die Täublinge sind im Verleich groß und unter UV sehr gut zu kontrollieren, ich finde die Reaktionen wirklich eindrucksvoll.

Ist das / könnte das bestimmungsrelevant für Täublinge sein, weiß du etwas hierüber?

LG, Martin

Hallo Steven,

die Frage, die sich da auftut, ist, auf welchen Reiz der Pilzfruchtkörper da im Moos reagiert und sich stärker steckt.

Verfügt er über chemische (Anwesenheit bestimmter Nachbarpflanzen über best. Moleküle im Boden), taktile oder gar optische Rezeptoren irgendwelcher Art, um zu erkennen, wann der Hut oberhalb der umgebenden Moos/Krautschicht steht?

Grüße, Martin

Hallo Rika,

wenn das also so sicher ist, streiche ich das confer natürlich gerne.

Vielen Dank,

Martin

Hallo Proletus Edulis, Benjamin, ibex und Ulla, lamproderma !

Vielen Dank für die wertvollen Anregungen, denn die beiden Pilzarten, die ihr nennt, hatte ich nicht auf dem Schirm.

Noch eine Anmerkung vorneweg:

Ich kann mit Lugol keine Amyloidität der Sporen nachweisen!

Das liegt aber vermutlich am Testen mit Lugol.

Ich hatte bereits getestet und vergessen das Ergebnis anzugeben.

Da A. rubescens, A. porphria und selbst A. eliae amyloide Sporen haben sollen, habe ich den Objektträger nochmal aus dem Abwurfgläschen gefischt und mit den verbliebenen Sporen den Test nochmals mit 3 Tropfen Lugol wiederholt: a-b-s-o-l-u-t negativ: die Sporen sind in Lugol inamyloid, kein Hauch von Blau oder Violett.

Es könnte am Lugol liegen, ich glaube, die Pilzler testen immer mit Melzers oder Baralscher Lösung.

Mit Lugolscher Iod-Lösung habe ich auch bei der Dekoration von Täublingssporen echte Probleme.

Würde ich also nicht zu ernst nehmen...

A. rubescens war mehr eine Verzweiflungs-Idee, weil mir nicht besseres einfiel und der Pilz hier sehr häufig vorkommt - wenngleich seine Hochzeit schon einem Monat zurückliegt.

Zudem könnte auf dem Bildern eine, wenn auch ganz schwache, Rötung/Bräunung vorliegen.

An anderen, sonst typischerweise rötenden Stellen, fehlt die Rötung, ein starkes Gegenargument!

Zu A. eliae recherchiere ich: er hätte deutlich längere, verm. ellipsoide Sporen (10-13 x 6-8), damit sollte er eigentlich schon ausscheiden, oder?

Er kommt - wie du, P. edulis, schon schriebst - eher an bei Laubbäumen, ev. auch an Kiefer, vor.

Der Geruch sollte unbedeutend sein, mein Fund riecht eher intensiv süßlich, kartoffelig.

Die Lamellen sollten ferner über den Hutrand kammartig (!) hervorstehend sein - das ist hier meiner Meinung nach nicht der Fall.

Zudem gilt diese Pilzart auch noch als selten.

Prinzipiell scheint A. porphyria erst mal besser zu passen:

Tatsächlich sind allerdings rundliche Sporen angegeben, die Abmessungen könnten grob passen.

Gehen die tropfenförmigen Sporen in Bild 11 als rundlich durch?

Ansonsten soll A. porphria eine dicke, zwiebelartige Knolle ohne Spitzchen (nicht rübenartig) haben.

Mein Pilz hatte eindeutig ein Rübenspitzchen unter der schlanken Knolle (Bild 6+8).

Abgesenen von der spitzigen Knolle passt eigentlich alles, von sauren Boden unter Fichten bis hin zu Hutfärbung, schwach geriefter Ring, etc. - sogar der Kortoffelgeruch würde passen.

Zudem gilt der Pilz als häufig und gemäß dessen mit hinreichender Wahrscheinlichkeit von mir findbar, lt. DGfM in meiner Gegened sogar kartiert.

Vielleicht hat noch jemand eine weitere Idee, die ich prüfen könnte, ansonsten lege ich den Fund als A. cf. porphyria ab.

Vielen lieben Dank für eure Beiträge, jeder davon ist lehrreich für mich!

LG, Martin

Hallo!

Beim Gang durch einen fichtendominierten Waldabschnitt mit moosigem Boden und buschigem Unterwuchs fand ich eine einzelne, ältliche, weißliche Amanita, mit hell bräunlicher Huthaut ohne Schuppung, die ich zum Bestimmen mitnahm.

Bild 1 Waldabschnitt mit Fichtendominanz

Bild 2 Pilzfund: Amanita voll aufgeschirmt, Hut ohne Flocken (ev. abgewaschen), Rand schwach gerieft

Nachdem ich das Moos vorsichtig beiseite gedrückt hatte, wurde ein Stiel mit Ring erkannbar:

Bild 3 Seitenansicht; oberer Stielabschnitt mit Ring, im Moos liegen links vom Stiel Fetzen, verm. Ringreste.

Beim Haraushebeln aus dem Untergrund tauchen lappige weiße Häute auf, die ich erst für Fetzen eine Volva hielt, aber ev. doch zum Ring gehören.

Leider ließ ich diese Fetzen unbeachtet liegen.

Im Bild 4 sind diese Fetzen noch zu erkennen.

Bild 4 Amanita ausgegraben, Basis knollig mit rübenartiger Spitze, oberer Stielabschnitt wirkt hellgrau genattert

Bild 5 Ein leichtes Röten an der Stielbasis!

Mit der Zuordnung von Gerüchen habe ich es nicht so.

Meine Frau riecht einen süßlichen Geruch, ich denke an Kartoffeln und rieche promt frische, junge Kartoffeln - nicht aber muffigen Kartoffelkeller.

Weitere Bilder im Tageslicht aufgenommen.

Bild 6 Etwa 15cm hoch, Stiel dünn (< 1cm), Hut 8cm Durchmesser, Zwiebelknolle 2cm breit

Der Ring hängt unter dem oberen Stielfdrittel.

Bild 7 Die Ringmanschette ist gerieft! Der Stiel oberhalb hellgrau genattert.

Der Stiel ist ganz oben gerieft, bzw. Lamellen mit feinem Zahn herablaufend.

Bild 8 Knolle mit rübenartiger Wurzel, angebrochen. Das Röten (Bild 4/5) ist mittlerweile verschwunden und kommt auch nirgend neu.

Der Untere Stielbereich ist dunkler als oben, mehr grau als weißlich

Bild 9 Blick auf Lamellen - Lamellen nicht wirklich frei, sondern sehr, sehr dünn bis Stiel weitergehend und dort herablaufend

Bild 10 Hutoberseite mit cremebrauner Färbung, Rand leicht gerieft

Bild 11 Sporen farblos, tropfenförmig, 8-9 x 6-7 µm groß

Ich habe eine Weile gerätzelt, was hier vorliegen könnte - bis mit das schwache Röten an der Stielbasis auf den Aufnahmen im Wald auffiel.

Könnte es sich um einen alten Perlpilz handeln, der nur sehr wenig rötet, wie ich vermute?

LG, Martin

Hallo Bernd,

die Flechte hat sich mir zwar bisher nicht persönlich vorgestellt, aber wenn ich über sie nachlese, scheint die Beschreibung mit deinem Fund doch sehr gut zu harmonieren.

Glückwunsch zum "Flechtenhof zur vierten Peltigera-Seligkeit"!

Den Fund finde ich gut!

LG, Martin

Hallo nobi_† ,

das ist ja mal interessant, dass der Perlpilz Anthrachinone in der Haut enthält - das erklärt die Rotfärbung!

Diesen Stoff kennt man als sekundäres Stoffwechselprodukt auch aus der Welt der Flechten, die dort vermutlich u.a. auch als Fraßschutz dienen. Der Stoff dient dort als Bestimmungsmerkmal: Gibt man KOH auf eine anthrachinonhaltige Flechte (z.B. Xanthoria, Caloplaca s.lat., etc), färbt sich die Flechte in Windeseile an der benetzten Stelle purpurrot.

Offenbar setzt der Perlpilz bei Verletzung durch Druck oder Fraß best. Stoffe frei, die den pH verschieben und die Rötung auslösen.

Flechten enthalten im Vergleich zu Pilzen sicher erheblich höhere Konzentrationen.

Hat hier schon mal jemand geprüft, ob ein Perlpilz auf der unverletzten Haut, im Fleisch etc, auf KOH rot reagiert?

LG, Martin

Hallo Frank

Tomentella ,

die Untersuchung deines Belegs bestätigt meiner Meinung nach eindeutig deinen Verdacht mit Opegrapha vulgata (Schreibfehler: natürlich nicht "O.varia").

Bild U1 Borkensplitter mit Flechtenbeleg

Folgende Eigenschaften werden für das Erschlüsseln der Art festgestellt:

Die lirellenförmigen, unbereiften Apothecien sitzen auf einem dünnen, grau-grünlichen, bereichsweise bräunlichen, rissigen Thallus auf.

Es sind keine Sorale und kein schwarzer Prothallus sichtbar; der Thallusrand läuft weißlich-grau aus.

Die Apothecien der Probe haben eine typische Länge von geschätzt bis 500 µm, bei einer Breite um 150 µm.

Sie sind meist unverzweigt, stehen meist vereinzelt, bilden mehrfach sternförmige Gruppen.

Die Lirellen sind meist ritzenförmig schmal geöffnet und besitzen einen wulstig-erhabenen Rand.

Bild U2 Lirellenförmige Apothecien, teils verzweigt; häufig sich gewinkelt, Spitze an Spitze berührend.

Im Querschnitt zeigt sich ein kohlig schwarzes Gehäuse, das geschlossen (U-förmig) unter dem Hymenium durchreicht.

Dieses Excipulum ist um 40 µm breit und reagiert K-.

Das Hymenium ist etwa 50 µm dick und schwach gelblich gefärbt, und reagiert in Lugol J+ deutlich orange.

Die Asci sind keulig, die Paraphysioide sind verzweigt, teils netzig verbunden (nicht gezeigt).

Bild U3 Querschnitt durch Thallus, Fruchtkörper und Substrat (in Wasser)

Beim Algenpartner handelt es sich, wie erwartet, um Trentepohlia.

Die Alge ist an den karotinoid-haltigen Tröpfchen im Plasmaraum erkennbar.

Bild U4 Trentepohlia-Algenzellen mit gelb-orangen Tröpfchen (in Wasser)

Den Test auf Trentepohlia kann makroskopisch durch Anritzen des Thallus erfolgen, wodurch der Blick auf die gelblich orangen Algen frei wird:

Bild U5 Ritztest orange

Die reifen Sporen sind farblos, 6-zellig querseptiert, mit eckig wirkenden Sporenfächern (Zellen) und dünnen Septen.

Die Sporen haben Abmessungen von 20-36 x 3,5-4,0 µm².

Damit landen wir in der Gattung Opegrapha.

Bild U6 Reife, 6zellige, spindelförmige Spore mit eckigen Sporenfächern (in Wasser)

Das Hymenium reagiert mit Lugol eindeutig J+ orange:

Bild U7 Hymenium J+ orange

Die Pynknidien sind nicht, wie bei O. vermicellifera auffällig kugelig erhabene, stark weiß bereifte Gebilde.

Die Pyknidien finden sich nach kurzer Suche am Thallusrand in Form von eingesenkten, schwärzlichen Wärzchen.

Bild U8 Winzige, eingesenkte, punktförmige, schwärzliche Pyknidien am Thallusrand

Feucht sind die Pyknidien bräunlich und entleeren ihren Inhalt bei sanftem Druck durch eine kleine, polständige Öffnung.

Bild U9 Vergrößerte und angefeuchtete Pyknidien

Die gequetschten Pyknidien setzten große Mengen nadelförmiger, gekrümmter, einzelliger Pyknosporen frei.

Die bestimmungsrelevanten Abmessungen der Pyknosporen liegen bei 15-20 x 1 µm².

Bild U10 Gequetschte Pyknidie mit freigesetzten Sporen in Wasser

Bild U11 Nadelförmige, gekrümmte Pyknidien, Länge um 15-20 x 1 µm (Ölimmersion 1000x, in Wasser)

Damit sollte es sich um die Flechte Opegrapha vulgata, die Gewöhnliche Zeichenflechte, handeln.

Alle im Schlüssel erwähnten Eigenschaften, die zur Art führen, sind überprüft.

Sogar das Excipulum reagiert in KOH negativ (nicht rot oder grünlich), was den Befund stützt.

Die Flechtenart gilt als selten und kommt auf saurer bis subneutraler, glatter Rinde, meist von Laubbäumen und Tanne vor.

Sie hat es gerne luftfeucht, schattig, niederschlagsreich.

So "gewöhnlich" finde ich sie nicht, denn für gewöhnlich finde ich sie nicht.

Danke dir, dass ich eine neue Flechtenart kennenlernen durfte!

LG, Martin

Hallo Uwe,

doch, es handelt sich um glasiertes Porzellan. D....x drauf, beim Aufhellen zuschauen (10s oder so), wässern, fertig.

Hat erstaunlich schnell und gut geklappt.

Da saßen offenbar klebrige, eiweißhaltige Rückstände in den feinen Rissen der Glasur, die mit den üblichen Reinigungsmethoden (inkl. Scheuermilch) nicht beizukommen war.

Jetzt sieht er wieder wie seine Freunde im Schrank aus.

LG, Martin