Beiträge von boccaccio

Zitat

Jetzt haben wir einen Vorstellungsthread für die Formenvielfalt einer ganzen Gattung im Forum.

Zum Glück ist es ja eine überschaubare Gattung. Stell dir das Gleiche mal bei den Cortinarien vor

Björn

Hallo zusammen,

Dann ergänze ich auch mal bisherigen Taphrinas:

Taphrina alni ex Alnus incana

Taphrina deformans ex Prunus persica

Taphrina padi ex Prunus padus

Taphrina pruni ex Prunus spinosa

Taphrina sadebeckii ex Alnus glutinosa

Auf die Taphrina crataegi warte ich ja immer noch vergebens. Und Taphrina alni scheint die Berge zu mögen. Ich hab meine einzigen Funde in Les Diablerets, VD in den Alpen gemacht.

Björn

Hallo zusammen,

das mit den Namen ist so eine Sache. Bei etlichen Pflanzen weiß ich tatsächlich den deutschen Namen nicht oder müßte länger drüber nachdenken. Von daher sind wissenschaftliche Namen für mich schon einfacher. Man kann es ja auch so sehen: Wenn man die Pflanze kennt, braucht man den Namen eh nicht. Und wenn man sie nicht kennt, lernt man einfach direkt den wissenschaftlichen Namen.

Ansonsten habe ich mir den Golovinomyces orontii noch mal vorgenommen. Man muß da einfach nur anwenden, was man bei Jule im Phytokurs lernt: Wenn man einfach ein Stück Tesafilm auf das Blatt drückt und anschließend den Tesafilm auf einen Objektträger, auf dem sich ein kleiner Tropfen Wasser befindet, klebt, dann eröffnen sich auf einmal ganz neue Möglichkeiten und man sieht deutlich mehr vom Mycel inklusive der ominösen Appressorien, die ich hier mal rot markiert habe.

Björn

Hallo Felli,

ich kann gerne auch einen Blick auf deinen Fund werfen. So ein Phyto braucht ja nicht viel Zeit unterm Mikro. Ich glaube aber, daß die Erfolgswahrscheinlichkeiten bei der Bestimmung deutlich steigen, wenn du erst noch mal schaust, ob du an der Stelle gesunde Pflanzen findest, die wir dann bestimmen können. Ansonsten sieht das für mich auf deinem letzten Bild schon warzig aus, das sind keinesfalls irgendwelche Bläschen in der Spore.

Eine letzte Frage noch: Wo hast du die Pflanze gefunden? Planar, collin, hochalpin?

Björn

Mit Substrat ist es ja einfach Ist tatsächlich auch T. farlowii, die offenbar keine Lehrbücher liest. Wuchs auf Prunus serotina und die Ascuslänge im Bereich 20-30 µm paßt auch zu T. farlowii. Nur das Wachstum an Früchten nicht. Interessanterweise hat sie das an dem Baum letztes Jahr aber schon genauso gemacht.

Björn

Hallo Stefan,

da lege ich direkt mal mit einer Taphrina los, die ich gestern an der Uni eingesammelt habe und die ich erstmal kommentarlos zeige.

Björn

Makroskopisch sieht es definitiv so aus! Mikroskopisch habe ich da nicht wirklich ernsthaft reingeschaut. Schimmel ist irgendwie nicht so meine Welt...

Björn

Hallo Nobi,

keine Sorge, ein bißchen Dung werde ich mir immer mal wieder ins Haus holen. Die alten Proben sind nur gerade ausgelaugt bzw. von grünem Schimmel befallen und werden jetzt mal entsorgt. Dann wird es Zeit für neuen Scheiß

Björn

Boah was bin ich froh, daß ich überwiegend Phytos mache. 100% bio und ganz chemiefrei

Björn

Hallo zusammen,

erstmal vielen Dank für Eure Rückmeldungen. An A. augustus hatte ich zwischenzeitlich auch gedacht, aber da mir bei Champignons die Erfahrung fehlt und es so viele Arten gibt, die sich oft nur minimal unterscheiden, war ich mir nicht sicher. Das hat sich jetzt aber geändert.

Ich habe oben im Beitrag auch noch die Mikrofotos etwas näher beschriftet. Im Endeffekt ist es natürlich alles wild gequetschte Lamelle, was die Zuordnung nicht immer so ganz einfach macht. Im ungequetschten Zustand hat man aber leider nur erkennen können, daß die Lamellenschneide steril ist, nicht wie die Cheilozystiden genau aussehen. Was den Ring angeht, war der hängend (siehe auch die Fotos oben).

Mit der Schäffer-Reaktion ist das so eine Sache. Klar würde die beim Schlüsseln stark helfen, andererseits sammel ich selten Champignons ein und Salpetersäure und Anilin braucht man halt sonst eher selten und will sie nicht unbedingt im Haus haben...

Björn

Hallo zusammen,

als ich gestern ins Büro gegangen bin, stand neben einem Straßenbaum auf nackter Erde eine Gruppe aus vier recht kräftig wirkenden Pilzen. Da ich keine Kamera dabei hatte, habe ich mir dann mal zwei Fruchtkörper mit nach Hause genommen. Insbesondere der größere der beiden Fruchtkörper scheint einen Trockenschaden zu haben, aber bis zu Agaricus komme ich trotzdem. Dann wird es aber schwer.

Geruch teilweise eine leichte Marzipannote, besonders beim Anschneiden, ansonsten aber eher leicht unangenehm. Stiel und Hutfleisch zeigen keine Reaktion mit KOH. Sporengröße (7.9+-0.6) µm x (4.9+-0.2) µm, Q=1.6+-0.1. Hat da jemand eine Idee?

Wild gequetsche Lamellen...

Basidien

Basidiolen oder Cheilozystiden?

Basidien

Noch mal ein Überblicksbild, wo man glaube ich einige Cheilozystiden erkennen kann

Cheilozystiden

Cheilozystiden

Basidien 4-sporig

Björn

Hallo zusammen,

von DEM Erbsenrost zu sprechen ist auf Euphorbia eher ungünstig, weil es viele verschiedene Roste gibt, die auf Euphorbia Aecien vom Aecidium-Typ ausbilden und zu solchen Deformationen führen. Auf Euphorbia sind die praktisch nicht zu bestimmen und man muß dann wissen, auf welche Pflanze sie wirtswechseln. Aber das nur am Rande.

Zu den Sporen: Bei Phytoparasiten braucht man eigentlich nie irgendwelche Färbemittel oder sonstige Chemie, die kann man einfach in Wasser mikroskopieren. Deine Fotos scheinen aber eher optische Schnitte durch die Spore zu zeigen. Versuch doch mal, den Fokus etwas höher auf die Oberseite der Spore zu setzen. Ich hänge mal zwei Bilder mit unterschiedlichem Fokus an, beim zweiten kann man die Oberfläche und die Stacheln deutlich besser erkennen:

Björn

Kannst du uns auch noch zeigen, wie die Oberfläche der Teliosporen aussah? Warzig? Mit Längsleisten? Glatt?

Björn

Hallo zusammen,

die Pflanze ist, wie schon geschrieben, eine Euphorbia. Hilfreich wäre es zu wissen, welche Euphorbia genau. Wuchsen dort in der Nähe auch nicht deformierte Pflanzen?

Die kleinen gelben Punkte mit den Konidien sind die sog. Spermogonien, das Stadium 0 des Rostpilzes. Dann haben wir da in braun noch die Telien. Da die Teliosporen einzellig sind, ist es keine Puccinia (die gibt es auf Euphorbia gar nicht), sondern ein Uromyces (Melampsoras gibt es zwar auch auf Euphorbia, die bilden aber Aecien vom Caeoma-Typ und die sehen wir hier nicht). Und um da weiter zu kommen, wäre der genaue Wirt jetzt sehr hilfreich.

Björn

Hallo zusammen,

gestern war ich eine Runde am Rhein spazieren. Der Großteil der Tour - zumindest zeittechnisch - war in Neuss auf der Ölgangsinsel, anschließend ging es aber auch noch auf Düsseldorfer Seite am Rhein entlang. Dabei waren auch wieder jede Menge Phytoparasiten mit von der Partie, die ich Euch hier zeigen möchte.

1. Hier erstmal ein Dank an Jule, die meine Pflanzenbestimmung korrigiert hat. Diese Hecke hier ist natürlich Prunus laurocerasus. Der Mehltau darauf ist eine Podosphaera, aber für die genaue Artsbestimmung muß ich noch mal die Konidienträger genauer betrachten.

2. Bei der Bestimmung der Distel tue ich mich schwer. Der Mehltau sollte aber unabhängig davon Golovinomyces montagnei sein.

3. Podosphaera aphanis ex Rubus fruticosus agg.

4. Peronospora dipsaci ex Dipsacus fullonum

5. Podosphaera fugax ex Geranium sp.

6. Puccinia punctata ex Galium mollugo agg.

7. Melanotaenium endogenum ex Galium mollugo agg.

8. Puccinia phragmites ex Rumex sp.

9. Epichloë sp. auf unbekanntem Gras

10. Melampsorella symphyti ex Sympthytum sp.

11. Thekopsora guttata ex Galium mollugo agg.

12. Ein Streifenbrand der Gattung Urocystis an unbekanntem Gras

Björn

Hallo Werner,

Appressorien habe ich keine gefunden. Und zwar in meinem ganzen Leben noch nicht. Die sind laut Jule aber wohl auch nicht so ganz einfach zu präparieren. Man muß halt nicht nur die Seitenstränge des Myzels mit den Konidien erwischen, sondern eben auch einen Myzelhauptstrang.

Tabak scheint unten andere Blätter zu haben und Kermesbeere kriegt keinen falschen Mehltau. Ich könnte mir vorstellen, daß Nr. 3 am Ende auch eine Oenothera ist (dann aber nur lokal und nicht systemisch befallen). Mal abwarten, irgendwann blüht die Pflanze ja auch.

Björn

Hallo zusammen,

am letzten Freitag war ich am späten Nachmittag auf einer kleinen Runde im Botanischen Garten Duisburg und habe nach Phytoparasiten Ausschau gehalten. Das hat sich insgesamt auch sehr gelohnt, aber sehr selbst:

1. Golovinomyces orontii ex Vinca major

2. Peronspora arthurii ex Oenothera biennis agg.

3. Hier bin ich mir leider bei der Pflanze unsicher, entsprechend bleibt der flasche Mehltau erstmal ohne Namen

4. Uromyces hyacinthi ex Hycinthoides x massartiana

5. Puccinia obsucra ex Luzula sylvatica

6. Pseudopeziza trifolii ex Trifolium repens

7. Puccinia sessilis ex Arum maculatum

8. Melampsora euphorbiae ex Euphorbia sp.

9. Hier bin ich mir bei der Wirtsbestimmung nicht ganz sicher. Wenn es aber Geranium pyrenaicum ist, ist der Pilz Uromyces kabatianus

10. Puccinia komarovii ex Impatiens parviflora. Endlich hab ich ihn mal im Aecienstadium erwischt.

Björn

Hallo Frank,

vergleich deinen Pilz doch mal mit Agrocybe praecox.

Björn

Hallo Carina,

schöne Bilder zeigst du uns da! Da muß ich direkt an das Meer aus Frauenschuhen denken, daß ich vor einigen Jahren in Arth-Goldau in der Schweiz gesehen habe.

Bei der ersten Orchidee handelt es sich um Orchis militaris. Die blauen Blüten, die du für Platterbsen gehalten ist, sind Akeleien. Der Duft kommt übrigens vom Weißdorn und nicht vom Apfel. Der hätte deutlich größere Blüten.

Björn

Hallo Thorben,

vielen Dank für den Hinweis. Ich hab gerade noch mal ein Präparat erstellt.

Konidien in Wasser:

Konidien in Lugol

Konidien in 3% KOH

Björn

Hallo zusammen,

ich hatte hier in einer feuchten Kammer noch ein Stückchen abgestorbenen Adlerfarn aus dem Duisburger Stadtwald liegen. Gestern Abend habe ich mir das noch mal alles genau mit der Lupe angeschaut und dabei Camarographium stephensii entdeckt. Davon gibt es bis jetzt genau eine Fundmeldung bei Pilze-Deutschland vom letzten Jahr aus Wuppertal. Makroskopisch macht der Pilz einfach kleine Schlitze auf dem Farn. Im Inneren werden dann braune, muriforme Konidien gebildet.

Björn

Hallo zusammen,

für mich geht das auch in Richtung Gitterrost. Handelt es sich bei dem Baum um Wacholder (bzw. genauer gesagt um irgendeinen Baum aus der Gattung Juniperus)?

Björn

Hallo zusammen,

was Chlorix etc. angeht, möchte ich anmerken, daß man das teilweise für gezielte Farbreaktionen bei der Flechtenbestimmung benutzt (gut, normalerweise nimmt man Natriumhypochlorit, aber Chlorix ist der erstbeste Ersatz). Es kann also gut sein, daß der Fleck damit nur seine Farbe ändert. Aber Versuch macht klug.

Björn

Hallo Matthias,

Pyrenopeziza bzw. Mollisia war auch der Tipp von Björn Wergen bei FB. Mollisias gibt es wohl auch in der Tat einige auf Juncus. Leider bin ich übers Wochenende nicht dazu gekommen, den Fund weiter zu bearbeiten und jetzt ist er nicht mehr so ganz frisch... Puhh eine Mollisia gespart

Björn

Hallo zusammen,

gestern war ich auf einer kleinen Runde auf der Halde Rungenberg und habe dort nach Pilzen geschaut. Hier ist die Ausbeute:

1. Peronospora aparines ex Galium aparine

2. Blumeria graminis ex Bromus hordeaceus

3. Golovinomyces asperifolii ex Myosotis sp.

4. Lophodermium arundinaceum. Als ich die meiner Nichte gezegt habe, war sie ganz begeistert von den kleinen Mündern, die sich bei Trockenheit schließen und bei Feuchtigkeit öffnen.

5. Puccinia malvacearum

6. Phragmidium sanguisorbae ex Sanguisorba minor

7. Taphrina pruni ex Prunus spinosa

8. Aus dem Vorgarten meiner Eltern dann noch Taphrina deformans ex Prunus persica cult.

9. Peronospora arborescens agg. ex Papaver sp.

10. Sphaeropsis sapinea ex Pinus nigra

Björn