Beiträge von boccaccio

Hallo Nobi,

wieder mal ein toller Beitrag über deine coprophilen Lieblinge. Ich hoffe, daß die tollen Fotos noch mehr Menschen für diese kleinen Schönheiten begeistern können.

Björn

Hallo Ralf,

auf Birkenporling sollte das H. pulvinata sein. H. protopulvinata geht nur an Fomitopsis pinicola (H. pulvinata geht an beide Wirte).

Björn

Hallo Oliver,

wenn man Ascomyceten ganz klassisch bis zur Gattung schlüsseln möchte, kann man sich mal das niederländische Ascomyceten Project anschauen. Da gibt es entsprechende Schlüssel, die ich z.T. schon probiert habe und die dann für Pyrenomyceten auch ganz gut funktioniert haben.

Björn

Hallo zusammen,

genau, die runden Kugeln sind die Basidien, die vierfach septiert sind, was man auf einigen Bildern auch erkennen kann. Aus der Basidie wachsen dann die vier Sterigmen, die hier wie bei vielen Phragmobasidiomyceten sehr lang sind im Verhältnis zur Basidie. Oben an den Basidien dann wie von anderen Pilzen gewohnt dann die sich bildenden Sporen.

Björn

Hallo zusammen,

letzten Sonntag konnte ich im Duisburger Stadtwald auf einem abgestorbenem Buchenast eine Bourdotigloea finden. Mit dem Bourdotigloea-Schlüssel des niederländischen Phragmoprojekts kann ich B. lanea und B. cerea aufgrund der Fruchtkörperstruktur und moniliformen Zystiden ausschließen. Im nächsten Schritt geht es dann darum, die Form der Zystiden genauer zu beurteilen: Deutlich moniliform oder unregelmäßig bzw. schwach moniliform. Der Vergleich mit den Mikrozeichungen bei Spirin et al. 2018 hilft mir da auch nicht wirklich weiter. Sporenmaße sind 19.6+-1.1 µm x 6.4+-0.4 µm, Q=3.1+-0.2, 18.0-21.2 µm x 5.7-7.3 µm, Q=2.7-3.6, aber damit bekommt man die Arten auch nicht gescheit getrennt. Hat jemand Erfahrung mit der Gattung?

Björn

Hallo zusammen,

am letzten Sonntag war ich auf einer kleinen Runde im Stadtwald Duisburg unterwegs:

1. Hier werden die meisten wohl sofort Myxarium nucleatum schreien. Aber es gibt mit Myxarium hyalinum eine Verwechslungsart, die sich nur mikroskopisch unterscheiden läßt. Laut niederländischem Phragmoprojekt gibt es so z.B. noch keine molekular bestätigen Funde von M. nucleatum aus den Niederlanden. Hier maßen die Sporen 13.4+-0.6 µm x 4.7+-0.4 µm, Q=2.8+-0.2, bzw. 12.4-14.3 µm x 4.2-5.7 µm, Q=2.5-3.1 und man landet bei M. hyalinum.

2. Sawadaea bicornis ex Acer pseudoplatanus, wieder etwas für Tuppie

3. Massaria anomia ex Robinia pseudoacacia

4. Biscogniauxia nummularia an Fagus sylvatica

Außerdem gab es noch eine Bourdotigloea, die ich aber gesondert vorstellen möchte.

Björn

Hallo zusammen,

mühsam ernährt sich das Eichhörnchen und so gibt es aktuell nur zwei weitere Dungpilze vom Damhirsch zu vermelden:

1. Mit Sporen von 26-27 µm x 11,5-12,5 µm lande ich hier bei Ascobolus albidus

2. Ein Klassiker auch ohne Makrofoto: Iodophanus carneus

Björn

Hallo zusammen,

da Ralf und ich uns seit seinem letzten Sirobasidium-Fund immer noch nicht wieder bei Exkursionen getroffen haben, hat er mir den Ast jetzt einfach per Post zugeschickt. Der Fund ist dann natürlich auch direkt unters Mikroskop gewandert und ich denke, daß ich diesmal Bilder machen konnte, die etwas zufriedenstellender als die von 2020 sind.

Björn

Hallo zusammen,

aller guten Dinge sind ja bekanntliche drei, deshalb also hier die dritte Tomentella. Ebenfalls unter Fagus und Corylus gefunden. Schnallen sind vorhanden, Zystiden fehlen, Sporen messen 7.1+-0.4 x 6.5+-0.5, Q=1.1+-0.1, 6.4-8.0 µm x 5.6-7.4 µm, Q=1.0-1.3 und sind eher gelappt als ellipsoid. Damit lande ich erstmal bei Schlüsselschritt 14. Sind die Sporen damit durchschnittlich 6-7,5 µm groß? Falls ja, würde ich im nächsten Schritt die Subikularhyphen als dickwandig bezeichnen und lande bei T. neobourdotii. Alternativ ging es dann zu 30, 31, 33 (Hyphen sind bei mir um 5 µm breit). Die Optionen, die sich dort dann auftauchen, erscheinen mir aber alle nicht so richtig überzeugend. Was meint Tomentella dazu?

Björn

Hallo zusammen,

weiter geht es mit der zweiten Tomentella aus dem Duisburger Stadtwald. Begleitbäume auch hier Fagus und Corylus. Die Sporen messen 7.3+-0.4 x 6.0+-0.5, Q=1.2+-0.1, 6.8-8.4 x 4.9-6.9, Q=1.0-1.4 un sind unregelmäßig, Schnallen sind vorhanden, Zystiden fehlen, Rhizomorphen sind vorhanden, beim Präparieren in KOH färbte sich die Flüssigkeit gelb-grün, so daß ich hier relativ sicher zu Tomentella punicea tendiere. Gehst du damit Tomentella ?

Björn

Hallo zusammen,

am 6.11.2022 habe ich im Duisburger Stadtwald drei Tomentellas gefunden, die ich hier einerseits vorstellen möchte und andererseits um Bestimmungshilfe bitten möchte Tomentella

Los geht es mit dem ersten Fund, der an Laubholz wuchs, Begleitbäume waren Fagus und Corylus. Die Sporen messen 9.7+-0.4 x 8.1+-0.7, Q=1.2+-0.1, 8.6-10.5 µm x 7.1-9.3 µm, Q=1.1-1.4, Stacheln bis 1.7 µm, nicht bifurkat und die Sporen sind irgendwo zwischen rundlich und schwach elliptisch zu verorten. Zystiden gibt es keine, Schnallen sind vorhanden, das Hymenium ist nicht cyanescent, wobei ich aber an einigen Stellen doch einige wenige cyanescente Elemente beobachten konnte.

Damit ist man schon mal ganz locker bis Schlüsselschritt 20 gekommen. Entscheide ich mich dort für elliptische Sporen, lande ich mit den braunen Subikularhyphen bei T. atramentaria, bei der das Hymenophor aber glatt sein sollte. Gehe ich bei den runden Sporen weiter, komme ich mit braunen, nicht inkrustierten Subikularhyphen und braunen Sporen zu Tomentella stuposa agg., die aber laut Franks Homepage auch glatt sein sollte.

Sporen in Melzer

Björn

Hallo zusammen,

Helvella fuscolacunosa paßt zumindest von der Sporengröße her ganz gut. Aber irgendwie werde ich mit den Helvellas nicht so richtig warm...

Ja, ich hab den Hypomyces noch und kann den gerne mal eintüten.

Björn

Hallo Ingo,

ich habe gerade mal die Sporen gemessen und komme auf 16.8+-0.6 µm x 11.7+-0.3 µm, Q=1.4+-0.1 bzw. 16.1-18.2 µm x 11.2-12.2 µm, Q=1.3-1.6

Björn

Hallo zusammen,

am letzten Sonntag ging es mit dem APR beim strahlendem Sonnenschein zu einer Exkursion auf die Halde Hoppenbruch. Das Wetter hatte auch etliche Neulinge angelockt, so daß wir mit geschätzt 25 Leuten loszogen. Aber neben vielen Teilnehmer:innen gab es auch etliche Pilze:

1. Puccinia phyllostachydis ex Phyllostachys sp. Der einzige bekannte Fundort dieses Pilzes, der an den septierten Paraphysen der Uredien gut erkennbar ist.

2. Tomentella bryophila, leicht kenntlich am amyloiden Apikulus

3. Lindtneria panphyliensis (oder eben L. bryophila, wenn man beides zu einer Art zusammenwirft)

4. Phallus impudicus

5. Hypomyces stephanomatis an Geoglossum cookeanum. Normalerweise ist der Pilz an Humaria zu finden.

6. Geoglossum cookeanum

7. Eine Helvella... früher hätte man einfach H. lacunosa dazugesagt.

8. Erysiphe syringae-japonicae ex Ligustrum vulgaris

9. Helvella crispa

10. Hier haben wir im Feld gerätselt, was das für seltsame Stäublinge sein mögen. Mikroskopisch zeigte sich dann ein Capillitium ohne Poren und Septen, mit Paracapillitium untermischt, dazu praktisch glatte Sporen ohne Pedicel von 3,1-3,8 µm Durchmesser. Also Apioperdon pyriforme.

11. Eine Teilnehmerin fand dann diesen Käfer mit Beauvaria bassiana

12. Sawadaea bicornis ex Acer pseudoplatanus für Tuppie

13. Mytilinidion decipiens

Björn

Hallo zusammen,

vielen Dank für die Schleimpilzbestimmung, Ulla. Beim zweiten Schleimi war mein Problem, daß ich mit dem Capillitium ohne Kalkknoten nie zu Physarum gekommen wäre, sondern immer schon vorher zu Didymium abgebogen wäre...

Ellis und Ellis ist was Phytoparasiten angeht einerseits nicht vollständig, andererseits wird teilweise ein breites Artkonzept verwendet und außerdem fehlen natürlich neu aufgespaltene Arten. Das Buch ist aber trotzdem gut, wenn man Pilze auf toten Pflanzen bestimmen will. Man muß dann zwar auch immer im Hinterkopf haben, daß es mehr Pilze gibt, als im Buch beschrieben sind, aber man bekommt zumindest eine erste Idee und oft hilft es ja schon, wenn man mal in der richtigen Gattung ist.

Björn

Hallo zusammen,

juhu endlich mal eine Sordaria richtig bestimmt. Und ja, das Substrat war ebenfalls Kaninchen.

Dungpilze sind auf jeden Fall sehr schmackhaft, Oliver! Und mit Nobi haben wir hier im Pilzforum ja auch einen echten Experten zur Hand, der immer geduldig mit Rat zur Seite steht. Und Pflanzenpilze lohnen natürlich auch immer, wobei man dafür ja den Klenke und nicht den Ellis&Ellis braucht.

Björn

Hallo beli,

deine Hymenochaete tabacina würde ich eher für Porostereum spadiceum halten. Das paßt auch besser zu Fagus sylvatica als Substrat.

Björn

Hallo zusammen,

zunächst einmal wieder ein dickes Danke an Nobi fürs Drüberschauen und Korrigieren An die 37 Arten wird mein Dung wohl nicht rankommen. Der liegt jetzt schon zwei Wochen in der Kammer und es tut sich fast nichts. Aber wer weiß, vielleicht kommt dann ja am Ende ein seltener Knüller... Ansonsten mache ich im Winter ja immer wieder gerne Dungpilze, und hatte jetzt auch in den Borkenbergen noch im Feld zwei Arten einstecken können (die dann aber nicht extra hier ins coprophile Unterforum gestellt).

Gibt es auch Zahlen, wie viele Kilogramm Dung schon aus dem Depot in heimische Wohnzimmer gewandert sind?

Björn

Hallo Oliver,

die Sporen liegen so bei 5.5-7.5 x 4.5-5.5 µm, passen also sehr gut zu R. heterophylla. Crins waren zwar nicht viele vorhanden, an einer Stelle habe ich sie aber gesehen.

Björn

Hallo zusammen,

am letzten Wochenende war ich noch mal in den Borkenbergen unterwegs. Leider hatte es dort in der Nacht den ersten Frost gegeben, so daß es sich mit der pilzlichen Herrlichkeit in engen Grenzen hielt. Aber ein paar nette Funde gab es dann trotzdem noch.

1. Peronospora vernalis ex Spergula morisonii

2. Eine Hypocopra auf Kaninchen. Sporen messen 24.2-27.1 µm x 12.0-13.1 µm, sind leicht asymmetrisch und in jungem Zustand zweizellig. Die Keimspalte nimmt nur einen Teil der Spore ein und mißt ca. 15 µm. Der Apikalapparat ist komplett amyloid. Da wenigstens teilweise mehrere Perithecien in je Stroma vorhanden sind, lande ich bei Hypocopra brefeldii.

3. Cladonia sp.

4. Bovista pusilla

5. Suillus luteus

Huthaut

Röhren

Stiel

Sporen

6. Botryobasidium subcoronatum, Sporen 7.6+-0.4 x 3.1+-0.2, Q=2.5+-0.2, 6.9-8.2 x 2.7-3.4, Q=2.1-2.7

7. Geopora arenicola

8. Ein Schleimpilz, bei dem ich nach einigem Überlegen zu Leocarpon fragilis tendieren würde, auch wenn die Sporen mit 11-12 µm etwas klein sind.

9. Erysiphe alphitoides ex Quercus robur

10. Noch ein Schleimpilz mit Sporen von 9-11 µm. Hier fehlt mir allerdings jegliche gute Idee... lamproderma

11. Zum Schluß noch eine Sordaria mit Sporen von 31-32 µm x 19-20.5 µm, Q=1.5-1.7, womit ich hier bei Sordaria macrospora rauskomme. Aber bis jetzt bin ich in dieser Gattung fast noch nie bei der richtigen Art rausgekommen....

Björn

Hallo Ogni,

da das Hackfleisch ja weder Pflanze, noch Tier, noch Pilz ist.... ist es ganz offensichtlich vegetarisch

Björn

Hallo zusammen,

eigentlich wollte ich am letzten Wochenende ja in den Duisburg Landschaftspark, aber am Bahnhof mußte ich dann feststellen, daß ich zum einen meine Kamera nicht eingepackt hatte und zum anderen die Straßenbahn durch SEV ersetzt wurde, was die Reise deutlich verlängert hätte. Also gefrustet wieder nach Hause, Kamera eingesteckt und dann einfach eine Runde in den Duisburger Stadtwald gegangen:

1. Bulbillomyces farinosus

2. Rhopographus filicinus

3. Phlebia radiata

4. Ein Täubling mit Sporenpulver Ia und mildem Geschmack, den ich gerne als Russula heterophylla ablegen würde wollen.

5. Phacidium lauri

5. Tricholoma ustale in alt und gammelig

6. Arcyria stipata

7. Coleosporium tussilaginis ex Tussilago farfara

Björn

Hallo zusammen,

wenn man mit Karl im Depot unterwegs ist, sollte man sich natürlich auch etwas Dung für die gute Stube mitnehmen. Das habe ich auch in Form von altem Pferd und frischem Hirsch gemacht. Bis jetzt halten sich die Pilzfunde darauf zwar noch in Grenzen, aber ein paar nette Bilder gab es dann doch.

1. Auf Hirsch: Pilobolus roridus, Sporenmaße 5.4-7.8 x 3.7-4.8, Q=1.4-1.8

2. Auf Pferd: Podospora decipiens

3. Auf Pferd: Eine Sporormiella, bei der die Sporen 39.5-43.5 µm x 7.5-8 µm messen. Hier tendiere ich zu S. lageniformis

4. Noch eine Sporormiella auf Pferd: Sporen messen 63-69 µm x 11-12 µm, so daß ich hier zu S. teretispora tendiere.

Björn

Hallo zusammen,

weiter geht es mit dem zweiten Teil aus dem Depot

1. Auf den Gräsern wuchs leckere Zuckerwatte in Form von Laetisaria fuciformis

2. Poronia punctata darf im Herbst natürlich auf dem Konik-Dung nicht fehlen

3. Cuphophyllus virgineus

4. Hygrocybe acutoconica

5. Lycoperdon utriforme

6. Agrocybe praecox

7. Trichoglossum hirsutum

8. Geoglossum cookeanum

9. Cuphophyllus virgineus var. ochraceopallida

10. Hyaloperonospora praecox ex Draba verna agg.

11. Erysipe alphitoides ex Quercus robur

12. Hier hatte ich im Feld auf Helicobasidium gehofft, aber es war dann doch nur eine Anamorphe, zu der ich keine Idee habe.

Björn

Hallo zusammen,

am 1.11. hat Karl Jan-Arne und mich mal wieder auf eine tolle Tour mit ins Depot genommen, von der ich im Folgenden einige Bilder zeigen möchte:

1. Dendrocollybia racemosa. Nicht mehr ganz frisch, aber immer noch beeindruckend

2. Lactarius controversus

3. Tricholoma populinum

4. Entoloma sp.

5. Entoloma sp.

6. Omphalina velutipes

7. Entoloma sp., die Karl eingesteckt hat.

8. Sarcodon squamosus

9. Tricholoma equestre

10. Lactarius rufus

11. Lactarius mammosus

12. Nectriopsis lecanodes auf Peltigera

13. Gliophorus psittacinus

14. Clavulinopsis laeticolor

15. Es gibt ihn doch: Nach unzähligen Neottiella rutilans habe ich endlich mal Neottiella vivida erwischt

Björn