Hallo Frank,
die Tomentella kann ich dir gerne zeitnah zuschicken (hier liegen ja auch immer noch einige Tomentellas vom letzten Jahr herum). Da ich in den letzten Tagen noch einige weitere Tomentellas gefunden habe, werde ich die aber auch noch in den kommenden Tagen hier vorstellen, vielleicht gibt es da ja auch noch Bedarf für eine genauere Untersuchung.
Björn
Hallo Thorben,
vergleich doch mal mit Thanatephorus cucumeris.
Björn
Hallo Uwe,
so rein von den Bildern her würde ich hier eher zu Mucilago crustacea tendieren.
Björn
Der Mehltau auf Sambucus hat mittlerweile übrigens einen neuen Namen bekommen: Erysiphe vanbruntiana var. ssambuci-racemosae.
Björn
Hallo Pilze11,
das ist Artomyces pyxidatus.
Björn
Hallo LilaAuster,
Hericium coralloides braucht alte Buchenwälder. Da die aber rar sind, ist auch der Pilz entsprechend selten. Folglich sollte man ihn zu Speisezwecken nur im eigenen Keller sammeln.
Björn
Hallo zusammen,
bei der Exkursion zum Eignerbach-Schlammteich fanden wir u.a. auch die folgende Tomentella. Mit der körnigen Oberfläche schon makroskopisch recht ansprechend, weil sie auch durch ihre inneren Werte zu überzeugen 
Das Habitat bestand aus jungen Birken und vereinzelten Kiefern und Fichten. Zystiden fehlen, Schnallen sind überall vorhanden, das Hymenophor ist nicht cyanescent, Sporen sind nicht gelappt, der Apikulus erscheint amyloid und Sporenmaße betragen 8.2+-0.5 µm x 6.8+-0.3 µm, Q=1.2+-0.1 bzw. 7.4-9.4 µm x 6.3-7.3 µm, Q=1.1-1.4. Mit Tomentella s Schlüssel kommt man damit schon mal ganz locker bis Punkt 20. Sind die Sporen nun eher elliptisch oder rund? Bei elliptischen Sporen käme ich zu T. ellisii, was aber glaube ich nicht paßt. Also rundsporig weiter: Mit dickwandigen, braunen Subikularhyphen und braunen Sporen komme ich zu 27. Tomentella lapida ist raus wegen Cyanescens, Tomentella alpina ist im Flachland nicht zu erwarten, bleiben also Tomentella fuliginea und Tomentella stuposa agg. Letztere hat einen inamyloiden Apikulus und ist damit auch raus. Paßt also T. fuliginea? Oder bin ich schon vorher irgendwo falsch abgebogen?
Sporen in KOH
Sporen in Melzer
Präparate in KOH
Björn
Hallo Matthias,
da hast du natürlich vollkommen Recht! Habe das jetzt oben korrigiert und auch die zwei Huthautfotos, die von R. decipiens noch nach unten gerutscht waren, entsprechend richtig einsortiert.
Björn
Hallo zusammen,
am letzten Oktober-Wochenende ging es mit dem Mykologischen Arbeitskreis Bergisches Land auf eine Exkursion zum Eignerbach-Schlammteich. Hierbei handelt es sich um einen Schlammteich eines Kalksteinbruchs, der im Laufe der verlandet ist. Das Gebiet ist nach wie vor noch Firmengelände (und zählt rein rechtlich als Talsperre, wir sind also über einen See gewandert), aber durch Kontakte wurde es uns ermöglicht, dort eine Exkursion zu machen.
1. Melampsoridium betulinum ex Betula pendula
2. Melampsoridium hiratsukanum ex Alnus glutinosa
pilzforum.eu/attachment/456296/
pilzforum.eu/attachment/456297/
3. Eine Ramularia auf Valeriana officinalis agg. Leider gibt es 2 Arten: Phaeoramularia valerianae und Ramularia valerianae. Erstere ist gräulich, letztere weißlich, also klarer Punkt für die Ramularia. Die Konidienform paßt dann aber wieder besser zur Phaeoramularia...
4. Sepultariella semi-immersa
5. Geopora arenicola
6. Eine Helvella, an der niemand weiteres Interesse hatte...
7. Leucogyrophana mollusca
Björn
Hallo zusammen,
weiter geht es mit dem zweiten Teil der Hohenstein- und Herford-Tour
1. Lactarius fluens
2. Nectriopsis violacea ex Fuligos sp.
2. Puccinia asperulae-odoratae ex Galium odoratum
3. Puccinia artemisiella ex Artemisia vulgaris
4. Weiter geht's auf dem Friedhof: Gliophorus psittacinus in allen Farben
5. Entoloma infula
6. Laetisaria fuciformis
7. Clavulinopsis laeticolor
8. Hygrocybe glutinipes
9. Hygrocybe mucronella. Wirklich fies bitter!
10. Amanita muscaria
11. Leccinum scabrum s.l.
12. Clavulinopsis helvola
13. Boletus edulis
14. Tricholoma columbetta
15. Phaeolepiota aurea
16. Amanita muscaria
17. Und zum Schluß noch ein Fragezeichen aus dem Hohenstein von Buchenblättern. Auf den ersten Blick kleine Becher, die aber mikroskopisch wenig hergeben. Hat da jemand eine Idee?
Björn
Hallo zusammen,
Ende Oktober waren Jan-Arne und ich bei Carina und Markus zu Besuch. Zunächst ging es in das NSG Hohenstein, wo in einem Kalkbuchenwald allerlei Pilze warteten, die wir aus dem kalkarmen Ruhrgebiet nicht kennen. Anschließend ging es dann noch auf Markus' Lieblingsfriedhof in Herford.
1. Hygrophorus eburneus mit KOH-Rekation an der Stielbasis
2. Lactarius pallidus
3. Hericium coralloides
4. Tricholoma orirubens
5. Russula decipiens
6. Russula olivacea EDIT: Russula viscida
7. Hygrophorus unicolor
8. Nochmal Hericium coralloides an anderer Stelle
9. Petrakia echinata ex Acer pseudoplatanus
10. Thekopsora guttata ex Galium odoratum
11. Pluteus leoninus
12. Dictydiaethalium plumbeum
Björn
Hallo zusammen,
weiter geht es mit dem zweiten Teil der Borkenberge.
1. Lepista irina
2. Laccaria proxima
2. Ramularia grevilleana ex Potentilla argentea
3. Phyllactinia betulae ex Betula pendula
4. Phyllactinia corni ex Cornus mas
5. Erysiphe hypophylla ex Quercus robur
6. Collybia cookei
7. Eine Galerina. Sporen sind dextrinoid, nicht kalyptrat, warzig und messen 8.7+-0.4 µm x 5.7+-0.3 µm, Q=1.5+-0.1, 7.8-9.9 µm x 5.1-6.1 µm, Q=1.4-1.7, Schnallen sind vorhanden, Basidien 4-sporig, Cheilozystiden sind nicht tibiiform, Pileozystiden sind ganz vereinzelt vorhanden, Pleurozystiden habe ich keine gefunden (das muß aber ja bekanntlich nichts heißen). Caulozystiden vorhanden, mutmaßlich auf ganzer Stiellänge.
Dann also mit der Funga Nordica in den Teilschlüssel B gestartet. Caulozystiden am ganzen Stiel würden zu G. caulocystidiata führen, da passen aber die Sporen nicht. Wenn man dann alternativ weiterschlüsselt, paßt aber auch keine der Arten. Also weiter in Teilschlüssel C, wo ich dann bei G. perplexa lande. Ist plausibel?
Stiel
Lamellen
Huthaut
8. Melanospora brevirostris
9. Telephora terrestris
Björn
Hallo zusammen,
Ende Oktober war ich mal wieder in den Borkenbergen unterwegs. Auch wenn das Pilzwachstum nicht überragend war, kam am Ende doch eine ganze Menge von Arten zusammen:
1. Russula recondita, IIc, Guajak nach 8 Sekunden verfärbend, dann dunkelblau, Stielbasis ohne KOH-Reaktion, unter Eiche
2. Arrhenia retiruga
3. Amanita phalloides
4. Arrhenia rickenii
5. Omphalina pyxidata
6. Macrolepiota procera
7. Spilopodia nervisequa ex Plantago lanceolata
8. Lepista nuda
9. Hygrocybe conica
10. Ein kleiner Täubling bei Betula und Pinus. Guajak negativ, Sporenpulver IVa, leicht scharf, gilbend, nicht grauend, lange, septierte Pileozystiden. Ich schwanke zwischen Russula cessans und Russula versicolor. Was sagen de Täublingsexperten?
11. Früher hätte man das direkt im Feld als Entoloma sericeum abgehakt. Jetzt mikroskopiert man, weiß trotzdem nicht genau, wie man E. sericeum und E. vindobonense trennen soll und erkennt dann zu Hause auf dm Foto auch noch, daß man offensichtlich eine Mischkollektion zusammengesteckt hat: Einer der Hüte ist deutlich bereift. Ansonsten inkrustierte Hyphen in der Huthaut, Basidien 4-sporig mit Basalschnalle.
12. Arrhenia peltigerina
13. Hygrocybe conica
14. Suillus bovinus
15. Tricholoma fulvum
16. Tricholoma albobrunneum
17. Imleria badia
18. Hebeloma mesophaeum, meine erste selbstbestimmte Hebeloma, Sporen messen 9.5+-0.4 x 5.6+-0.3 µm, Q=1.7+-0.1, 8.5-10.3 x 5.1-6.2 µm, Q=1.6-1.9
19. Eine Russula unter Pinus. Geschmack mild, Guajak negativ bis schwach, aber leider ohne Sporen, also wahrscheinlich nicht bestimmbar. Auffällig die roten Lamellenschneiden
20. Mal wieder Hygrocybe conica
21. Geopora arenicola
Björn
Hallo zusammen,
beim Trichterling muß ich leider feststellen, daß ich schlampig gearbeitet habe. Da gib es keine Notizen zum Geruch und bei der Huthaut ist auch nur noch eine schwache Erinnerung an inkrustiertes Pigment vorhanden 
Aber ich bin nächstes Wochenende wieder auf der Halde, vielleicht stehen dann ja noch Kollektionen des Pilzes.
Was die Diplodia angeht, liegen die Sporen bei 20-21 µm x 8-10 µm, also passend zur D. tiliae. Die steht ja sogar im Ellis und Ellis drin, keine Ahnung, warum mit der Pilz da nicht aufgefallen ist...
Björn
Hallo zusammen,
dann haben wir ja fast alle Bundesländer durch. Ich konnte ihn am Wochenende auch in Rheinland-Pfalz nachweisen 
Björn
Hallo zusammen,
Ende Oktober war ich für eine kleine Runde auf der Halde Hoppenbruch in Herten, die für ihren Pilzreichtum bekannt ist.
1. Cuphophyllus virgineus
2. Cyclaneusma minus ex Pinus nigra
3. Rhytisma acerinum ex Acer pseudoplatanus
4. Phragmidium tuberculatum ex Rosa sp.
5. Mycena acicula
6. Rickenella swartzii
7. Pithya cupressina
8. Clavulina rugosa
9. Arrhenia retiruga
10. Volvopluteus gloiocephala
11. Phragmidium potentillae ex Potentilla argentea
12. Geoglossum cookeanum
13. Gymnosporangium sabinae ex Pyrus communis
14. Puccinia phyllostachydis ex Phyllostachys sp. cult.
15. Auf Tilia sp. gab es dann noch diese braunen, zweizelligen Konidien. Da gibt es aber leider im Ellis und Ellis keine passenden Kandidaten für, so daß ich keine gute Idee habe.
16. Und dann gab es noch diese Trichterlinge(?). Wuchsen am mageren Wegrand unter Kiefern. Bis jetzt hatte ich aber noch keine Zeit, mich näher mit diesem Fund zu beschäftigen. Aber wenn es Ieen gibt, immer her damit.
Björn
Hallo Markus,
ich messe alles per Software und gar nicht am Okular. Dazu benutze ich Fiji. Das ist zwar am Anfang nicht ganz übersichtlich, weil es viel mehr kann als nur Sporen zu messen, hat aber den Vorteil, daß es Open Source ist und als Java-Anwendung auch unter Linux läuft.
Björn
Hallo Schupfi,
im Zweifelsfall muß man wirklich fast so doll quetschen bis die Basidien platzen ;-D Das passiert mir bei Entolomen ganz gerne, weil man da ja irgendwie auch junge Basidien freistellen muß um auf Schnallen zu prüfen.
Björn
Hallo zusammen,
das mit der Tiefenschärfe ist ja im Wesentlichen durch die Physik limitiert. Da hilft also nur, daß man ein gutes Präparat herstellt, das möglichst flach ist. Das gelingt natürlich nicht immer und erst recht nicht immer auf Anhieb, sprich da geht dann schon einiges an Zeit drauf. Zum Teil muß man in so einem Präparat dann auch einfach länger suchen, bis man eine Stelle findet, die hinreichend fotogen ist.
Björn
Hallo Oliver,
nein, die Canon-Software nutze ich gar nicht. Ich hole die Bilder einfach händisch von der Kamera und verwalte die Bilder dann mit dem Programm Digikam.
Björn
Hallo Oliver,
das ist einfach die Kamera, die ich auch sonst benutze. Wenn man noch keine Kamera hat, sollte man eher nach einer spiegellosen Kamera schauen, das wackelt beim Auslösen noch weniger (mit der Spiegelreflexkamera muß man dann immer die Spiegelvorauslösung via Live-View nutzen).
Björn
Hallo Oliver,
ich nutze ein trinokulares Panthera C von Motic (unendliche Optik). Oben kommt dann meine Canon EOS 850D drauf, ohne weitere Optik. Dadurch ist das Bild am Randbereich nicht ganz perfekt ausgeleuchtet, aber das kann man dann bei Bedarf wegschneiden oder einfach ignorieren. Ich selber bearbeite meine Fotos gar nicht nach. Stacking benutze ich in der Praxis auch fast gar nicht, außer ich fotografiere sehr kleine Ascomyceten etc. durchs Mikroskop.
Björn
Hallo Schorsch,
Exidias sind in der Tat etwas fies zu mikroskopieren, da sie zwar gallertig sind, aber gleichzeitig auch relativ zäh. Da hilft nur ein möglichst kleines Stück zu nehmen, daß dann erstmal etas in KOH einweicht bevor man das Deckgläschen drauf gibt. Beim Quetschen muß man dann immer schauen, daß der Pilz nicht nach links oder rechts rausflutscht.
Ansonsten empfehle ich zum Bestimmen von Phragmobasidiomyeten die holländischen Schlüssel, die es hier gibt.
Björn
Hallo zusammen,
wenn man einmal weiß, daß es die Art gibt, ist sie offenbar schnell gefunden. Am Freitag brauchte ich am NSG Hohenstein in Hameln nur drei Ahornblätter um sie auch zu finden:
Björn
Hallo Adrian,
Entoloma hebes ist das sicher nicht. Der ist viel schlankstieliger und insgesamt zierlicher als dein Fund.
Björn
