Hallo zusammen,
Eudarluca scheint ein Faible für Roste auf Gräsern im weiteren Sinne zu haben. Auf einem Bambusrost hatte ich den auch schon und bei den Uromyces-Rosten auf Juncus steht im Klenke explizit drin, daß die oft von Eudarluca caricis befallen sind.
Das Kaleidoskop habe ich selber gar nicht gesehen 
Björn
Hallo zusammen,
am letzten Samstag war ich noch mal auf dem Gelände der ehemaligen Zeche Zollverein unterwegs und habe nach Phytoparasiten Ausschau gehalten. Neben einigen Arten, die ich schon in der Vorwoche gefunden habe, gab es auch einige neue Arten.
1. Erysiphe capreae ex Salix caprea. Fruchtkörper um die 150 µm im Durchmesser
2. Uromyces euphorbiae-corniculati ex Lotus corniculatus
3. Uromyces junci ex Juncus tenuis. Darauf als Hyperparasit Eudarluca caricis
4. Podosphaera plantaginis ex Plantago lanceolata
5. Albugo candida s.l. ex Diplotaxis tenuifolia
6. Golovinomyces artemisiae ex Artemisia vulgaris
7. Uromyces striatus ex Medicago lupulina
8. Uromyces striatus ex Medicago x varia
9. Melampsora larici-populina ex Populus maximowiczii Hybride
10. Moeziomyces bullatus ex Echinochloa crus-galli
11. Bremia lactucae s.l. ex Senecio vulgaris
12. Puccinia lagenophorae ex Senecio vulgaris
13. Puccinia artemisiella ex Artemisia vulgaris
14. Septoria cornicola ex Cornus sanguinea. An den geraden bis maximal leicht gekrümmten Konidien von S. cornina zu unterscheiden.
15. Puccinia pulverulenta und Pucciniastrum epilobii ex Epilobium hirsutum
Björn
Hallo Ben,
das würde ich rein makroskopisch für Parasola conopilea halten. Läßt sich mit dem Mikroskop leicht anhand der Haare in der Huthaut erkennen.
Björn
Sonst schneid doch einfach mal mit dem Skalpell ein Quadrat auf dem Hut. Das umdrehen und vorsichtig die Trama wegkratzen, dann wieder umdrehen und mal schauen, was du so siehst.
Björn
Hmmm, das sieht mir irgendwie zu hyphig und nicht zellig genug aus. Ist natürlich die Frage, ob du da jetzt einfach nur Hutfleisch erwischt hast oder ob wir hier wirklich Huthaut sehen. Mit getrockneten Pilzen habe ich wenig Erfahrung, da ich meistens frisch mikroskopiere. Aber ich meine, daß sich die Xerula-Huthaut beim Frischpilz relativ gut abziehen ließ.
Björn
Hallo Claudia,
wodrauf du achten solltest, hängt davon ab, ob du X. radicata bestätigen oder widerlegen möchtest Wenn es so aussieht
spräche das auch für X. radicata. Wie groß sind eigentlich die Sporen. So per Auge kommen die mir fast etwas zu klein für X. radicata vor.
Björn
Hallo zusammen,
wie sieht denn die Huthaut des Pilzes unterm Mikroskop aus?
Björn
Hallo zusammen,
als weitere Ergänzung würde ich hinzufügen, daß man sich da wahrscheinlich eher den Magen an dem alten Röhrlingsschlappen verdirbt.
Björn
Hallo Felli,
bei FB in der Ascomycetengruppe ist mittlerweile auch Ombrophila fagiseda in den Ring geworfen worden. Dort wollte man auch noch ganz gerne einen Schnitt durch den Fruchtkörper sehen. Das ist aber nicht so ganz einfach.... man kann wohl eher einen Wackelpudding an die Wand nageln als daß man diese Glibberdinger in feine Scheiben zerlegt. Das hier war das höchste der Gefühle:
Björn
Hallo Pablo,
ich bin bei den durchsichtigen Glibberdingern ja auch immer sehr skeptisch. Aus meiner Sicht sprechen aber die nicht gestielten Basidien und die Sporenmaße von (14.0+-0.9) µm x (5.2+-0.3) µm, Q=2.7+-0.2 bzw. (11.6-15.5) µm x (4.5-5.6) µm, Q=2.4-3.0 für Exidia candida. Als Vergleichswerte hatte ich die Beschreibungen in Spirin et al., On some forgotten species of Exidia and Myxarium (Auriculariales, Basidiomycota), Nordic Journal of Botany (2018) herangezogen.
Björn
Hallo zusammen,
am vergangenen Sonntag hat sich der APR mal wieder zu einer Pilzexkursion getroffen. Ziel war das Asbachtal in Velbert. Die Nacht vorher hatte es ausgiebig geregnet. Das half zwar dem aktuellen Pilzwachstum eher wenig, macht aber zumindest Hoffnung für die nahe Zukunft.
1. Cyathus striatus
2. Peziza varia mit leichten Schwierigkeiten bei der Reaktion mit Luhol
3. Puccinia arenariae ex Stellaria aquatica
4. Puccinia coronata ex Festuca gigantea
5. Puccinia graminis ex Festuca gigantea
6. Puccinia coronata ex Arrhenatherum elatius
7. Puccinia laschii ex Cirsium palustre
8. Puccinia graminis ex Dactylis glomerata
9. Rhodocollybia maculata
10. Gymnopus confluens
11. Exidia candida
12. Peniophorella praetermissa
13. Puccinia artemisiella ex Artemisia vulgaris
Björn
Hallo Felli,
da hatte Viktorie Halasu mich bei FB gerade auch drauf gestoßen (heißt jetzt wohl H. kathiae). Und das sieht soweit sehr gut aus. Insbesondere konnte ich gerade auch die Blaufärbung des Stiels mit Lugol beobachten.
Björn
So, Nr.5 ist auf FB von Ingo Wagner gerade als Hymenoscyphus fagineus benamst worden.
Hallo Felli,
Ascomyceten machen einem das Leben schwer 
Hier zunächst mal Fotos von Nr.4, dem geblichen Hymenoscyphus (Fruchtkörper röten übrigens bei Verletzung). Sporen sind (12.2+-0.9) x (4.8+-0.4) µm bzw (10.3-14.0) x (3.9-5.9) µm
Dann zur Nr. 5. Da ist mir zum einen aufgefallen, daß es ganz winzige, junge Fruchtkörper nebendran gibt, die quasi schwarz sind. Sporen gab es dann von den reifen Kerlen auch. Interessanterweise scheinen die eine Gelhülle zu haben. Konnte man im Mikro optisch erahnen und mit etwas Tinte wurden dann auch die Umrisse sichtbar. Sporen sind (11.3+-0.7) x (4.2+-0.2) µm bzw (10.0-12.9) x (3.8-4.7) µm
Björn
Hallo Felli,
bei Nr.4 habe ich gerade noch mal ein paar neue Fotos gemacht. Wirklich intensiv ist die IKI-Reaktion nicht (das ist jetzt komplett in Lugol gebadet), ich hoffe aber, daß man die Reaktion jetzt wenigstens etwas besser erkennt. Ich bin jetzt auch der Meinung, daß die Asci sehr wohl Haken haben.
Die Nr.5 war schon relativ fest für einen Ascomyceten.
Björn
Hallo zusammen,
gestern war ich am späten Nachmittag auf einer kleinen Runde im Duisburger Stadtwald unterwegs. Der Wald ist nach wie vor noch sehr trocken, so daß Pilze Mangelware sind. Aber ein bißchen was ließ sich dann doch finden.
1. Phragmidium bulbosum ex Rubus fruticosus agg.
2. Tranzschelia discolor ex Prunus spinosa
3. Ein Pluteus so ähnlich wie Thorbens Fund letztens. Die Sporen messen (5.9+-0.5) µm x (5.2+-0.3) µm, Q=1.1+-0.1, bzw. (5.2-6.7) x (4.8-5.7), Q=1.0-1.3. Die Zystiden würde ich überwiegend für sackförmig halten, womit ich bei Pluteus pallescens rauskäme.
Lamelle: Cheilzystiden
Pleurozystiden
Basidien
Cheilzystiden
Huthaut
Sporen
4. Ein Ascomycet an einem feucht liegenden Laubholzstöckchen. Wer hat Ideen? Vielleicht ein Hymenoscyphus? Asci reagieren mit Lugol blau und sind ohne Haken.
5. Noch ein Ascomycet, an feucht liegender Buchecker. Auch hier fehlt mir der Zugang. Asci mit Lugol blau, Haken evtl. vorhanden
6. Dann an einem Laubholzast direkt 2 Pilzarten dicht an dicht beieinander. Fangen wir mal mit den kleinen gelben an. Pleurozystiden nicht vorhanden, Geschmack mild, Huthaut reagiert rötlich mit 3% KOH. Da lande ich bei Pholiota alnicola
Lamellenschneide
Basidien
7. Bei den großen orangefarbenen Pilzen war ich zunächst ratlos, da ich makroskopisch auch an Pholiota gedacht habe. Aber das paßte mikroskopisch nicht. Zum Glück hat Stefan den Pilz blind bestimmen können: Gymnopilus junonius. Huthaut reagiert dunkelrot mit KOH
Cheilozystiden
Basidien
Cheilozystiden
Sporen in Wasser
Sporen in Melzer
Sporen in KOH
Björn
Hallo Malone,
mit Galle meinte ich die Auswüchse auf der Ulme. Mir war halt nicht klar, ob alle Fotos den selben Baum zeigen oder ob wir hier zwei verschiedene Bäume sehen. Aber das hat sich ja jetzt geklärt. Mehlbeeren sind übrigens auch so ein Teufelszeug wie z.B. Brombeeren. Es gibt zig Arten, die man teilweise nur sehr schwer trennen kann.
Björn
Hallo nochmal,
auf Ulme scheint es einige Tetraneura-Arten zu geben, die passen könnten: T. ulmi, T. caerulescens und T. nigriabdominalis.
Björn
Hallo Malone,
ist der Baum mit den Gallen auch der Baum mit den roten Früchten auf Bild 1? Dann haben wir es hier mit einer Mehlbeere zu tun.
Björn
Hallo zusammen,
ich wäre mit den Farben (so das Foto denn halbwegs farbecht ist) eher beim Schwefelporling. Der verfärbt sich bei Berührung im Gegensatz zum RIesenporling nicht schwarz.
Björn
Hallo zusammen,
ich würde hier auch zu Amanita rubescens tendieren. Schau dir doch auch mal die Fraßgänge im Pilz genauer an (die sind auf dem Foto leider etwas überbelichtet). Beim Perlpilz sind die rötlich.
Björn
Hallo Raphael,
wieder mal ein sehr schöner Beitrag von dir! Den Tintenfischpilz habe ich mangels eigener, aktueller Funde zwar noch nicht unter dem Mikroskop gehabt, aber die Problematik ist ja bei der Stinkmorchel sehr ähnlich. Und da gibt es einen einfachen Trick: Man nimmt ein Hexenei mit und mikroskopiert das bevor es aufschirmt. Das hat auch den Vorteil, daß dann noch Basidien vorhanden sind und man nicht nur die Sporen vorfindet.
Björn
Hallo Wastl,
beim letzten Bild sehe ich eher einen Breitblattrübling. Bei den übrigen Bildern gehe ich mit Xerula radicata mit.
Björn
Hallo Thorben,
wenn ich mit dem Gröger schlüssel, lande ich bei Pluteus pallescens oder aber bei Pluteus phlebophorus bzw. Pluteus nanus. Da fehlt mir aber bei allen Arten die Funderfahrung.
Björn
Hallo Bernd,
das steht in dem Artikel auf Seite 524, im Abschnitt über "Material and Methods". Karl ist Karl Wehr.
Björn
