Aquatische Hyphomyceten

Hallo zusammen.

Anbei möchte ich euch ein paar Bilder von aquatischen Hypomyceten zeigen. Die Proben stammen alle aus (fixiertem) Schaum den ich von Fließgewässern abgeschöpft habe.

Bei diesen bizarren Formen an Konidien kann ich es dann doch verschmerzen mir ab und an nicht lichenisierte Pilze anzuschauen.

Diese Gruppe an Arten ist hier im Forum ja recht wenig gezeigt und dem möchte ich ein wenig entgegen wirken.

Ich hoffe ihr habt genau so Spaß an den schönen Bildern wie ich beim machen hatte.

Peter

(1) Tetracladium marchalianum (DIC in Wasser)

(2) Tetracladium setigerum (DIC in Wasser)

(3) Tetrachaetum elegans (DIC in Polyvinylalkohol/Glyzerin/Milchsäure+Baumwollblau)

(4) Clavariopsis aquatica (DIC in Polyvinylalkohol/Glyzerin/Milchsäure+Baumwollblau)

(5) eine sehr elegante Alatospora acuminata (DIC in Polyvinylalkohol/Glyzerin/Milchsäure+Baumwollblau)

(6) Flabellospora acuminata (DIC in Polyvinylalkohol/Glyzerin/Milchsäure+Baumwollblau)

Die aquatischen Hyphomyceten degradieren Biomasse - vorwiegend Blätter und Pflanzenbetandteile - im Wasser und schließen somit den Nahrungskreislauf zu den Kleinstlebewesen die oft nicht die Enzymausstattung haben um Pflanzengewebe zu verwerten (z.B. Lignasen). Die bizarren Formen dienen der Verbreitung im Wasser und schließlich dem Verfangen und Anhaften.

Die Probenentnahme ist denkbar einfach - Schaum mit einem Küchensieb abschöpfen und entweder fixieren (ich verwende Formalin-Essigsäure-Methanol (FAA). Ausstreichen auf einem Objektträger und Eindecken mit LCB sollte aber auch gehen. Fixiert man nicht haften die Sporen an und keimen aus, dabei verlieren sie ihre typische Form. (nota bene: man kann auch Blätter in Kultur nehmen und schauen was darauf wächst, das ist aber ein anderes Thema).

Viele der Arten sind kosmopolitisch und die Literatur ist (zum glück recht breit anwendbar) Bestimmungsschlüssel gibt es hier Gulis2005 undDescals1989 (letzteres ist ein wirklich guter Einstieg!). Die Arbeitstechniken sind gut in einem Artikel von Fay Newbery zusammengefasst. Sie hat im vergangenen Winter einen (online) Workshop organisiert in dem ich in das Thema eingestiegen bin.

(7) Schaumansammlung an Pflanzen und Zweigen in einem kleinen Fuss

(8) mit einem Küchensieb an einer Stange habe ich den Schaum abgeschöpft. Die 3m Teleskopstange erweitert den Radius ist aber nicht unbedingt nötig.

(9) Mein Proben-Kit. Ein Plastikbecher (Urinbecher), Teleskopstange, Küchensieb, Klebeband zum Verbinden.

Man braucht noch ein paar Tropfen Fixiermittel (ich habe Eppendorf-Tubes mit 500µl FAA dabei und schmeiße sie einfach in den Schaum - und schüttele dann alles, eine Tropfflasche tut es aber auch.

(10) Zur Zeit versuche ich keine Einmal-Probenkits mit Becher, mini-Netz und Fixiermittel vorzubereiten. Diese sollen zusammengesteckt-und-fertig sein.

So möchte ich zum einen eine spontane Probenentnahme ermöglichen, zum anderen ist die Idee diese Kits weiter zu geben um Proben aus vielen Lokalisation zu bekommen. Hierfür muss ich aber noch die Versandbedingungen abklären. Sowas sollte unter Gefahrgut in Begrenzten Mengen gem. 3.4 ADR/RID laufen. Vielleicht hat jemand von euch Erfahrungen wie sowas läuft.

Das Ziel wären "mehr Punkte auf der Karte"

(11) iNaturalist Karte des "Aquatic Hyphomycetes" Projekts.

Hallo Sabine,

die Anfärbung mit Baumwollblau (die man auch dringend braucht wenn man kein Phasenkontrast oder DIC hat) macht schon recht deutlich was Spore ist und was nicht. Viele von denen haben ganz charakteristische Formen und man kommt schon rein. Diatomeen und andere Algen erkennt man am Chlorophyll. Nematoden sehen manchmal aus wie "sigmoidale" Sporen aber die will man eh nicht am bearbeiten

Ein guter Start ist das auch heute immer noch sehr gut lesbare Paper von Ingold 1942 der das Thema mit Leben gefüllt hat. Ich möchte gar nicht daran denken wie er 1942 Naturforschung betrieben hat. Die Welt heute ist mir ja schon zu viel...

Peter

PS: In der Übersicht sehen solche Präparationen so aus

(12) Übersicht aus einer Schaumpräparation. Eindeckmedium PVA/Glycerin mit Baumwollblau. LCB sollte aber ein ähnliches Bild geben. Das blaue sind eigentlich alles Sporen.

Ich hoffe es stört euch nicht wenn ich noch ein paar weitere Funde zeige (sie sind so schön!)

(13) sehr klein: Lateriramulosa uniinflata

(14) Tricladium splendens. Die Arme zeigen eine abrupte Einschnürung am Übergang zur Hauptachse.

(15) Tricladium castaneicola - finde ich nicht so häufig wie Tricladium spendens aber in einer aktuellen Probe doch reichlich vorhanden (Dafür kein T. splendens). Diese Art hat konische Form an der Insertionsstelle der Arme.

(16) Tetracladium breve (das kleine in der Bildmitte). Sieht aus wie T. setigerum - mit 3 Fingerartigen Auswüchsen) (vgl. Bild 2) nur in miniklein. Daneben T. marchalianum mit zwei rund-ovalen Auswüchsen.

(17) Heute sind haufenweise Spiralen von aero-aquatischen Hyphomyceten (Helicosporium?) in mehreren Varianten drin. Die sind wohl alleine anhand der Konidien nicht bestimmbar. Eigentlich (!) hatte ich mir vorgenommen nicht noch groß nach Proben zu suchen sondern wollte mich auf den Schaum beschränken. Ob das klappt weiß ich nicht mehr so recht.

(18) Da es aktuell stärker geregnet hat finde ich auch Arten die wohl eher von Bäumen gewaschen wurde wie diese Tridentia sp.

Hallo Ingo,

ich schichte einen Tropfen auf einen OT (bzw. je nach Gehalt der Probe mehr oder weniger) und lasse ihn Verdunsten. Dann decke ich mit Polyvinylalkohol (nach einem alten Rezept von Felix Schumm) ein. Im ggs. zu LCB wird das mit der Zeit fest und schmiert nicht so rum. Wenn ich Zeit habe bereite ich das vor und lasse es einfach Trocknen, wenn ich es abends schnell haben möchte lege ich die OT auf eine kleine "Kaffeewärmer" Heizplatte dich ich auch für die Flechtenschnitte/Färbungen verwende und beschleunige den Prozess.

Für die Aquatic Hyphomycete Gruppe hatte ich eine kleine Präsentation zum Vorgehen gemacht.

Blaualgen, E. coli etc. das ist ja durch die Fixierung komplett tot. Der Rückversand wäre als biologische Probe noch einfacher. Fällt ja noch nicht mal unter exempt vetenary oder exempt human specimen. Ich höre mich nochmal im Institut um und schau wie das geregelt wird wenn wir vorbereitete Probengefäße mit Formalin an Einsender verschicken.

Schreib mir mal wenn Du magst, dann schicke ich Dir Einschlussmedium und FAA.

Peter

Hallo Sabine,

Aus Wasser kann man auch arbeiten. Dafür filtriert man ein bekanntes Volumen unter Sog durch einen Filter und mikroskopiert den. Dann kann man sogar quantitativ arbeiten. Den Aufwand habe ich mir noch nicht gemacht.

Im Schaum reichern sich die Sporen an und finden keine Oberfläche die das Auswachsen anregt.

Gruß

Peter

Ich möchte euch heute abend ein paar kleine und große Funde vorstellen.

(19) der kleine Fund: Lateriramulosa uni-inflata. Eine wunderhübsche filigran gestaltete Spore (Bildmitte) und Heliscella stellata (links)Lateriramulosa uni-inflata

(20) Hier nochmal eine Lateriramulosa uni-inflata an einer Tetracladium setigerum (mit 3 fingerförmigen Fortsätzen) sowie eine Alatospora acuminata (rechts) ... letztere merken wir uns.

(21) hier noch was ganz großes. Actinospora megalospora oder wie sie jetzt ein bisschen moderner heißt: Miladina lecithina. Rechts oben wieder ein paar der allgegenwärtigen Alatospora acuminata.

Nicht per se aquatische Hyphomyceten - aber man kommt doch immer wieder drüber - Conidien die von Pflanzen ins Wasser gewaschen werden, insbesondere wohl bei Regen.

Gerade Retiarius hat es mir heute angetan. Meine Spore mag nicht so recht zu einer der 4 Gattungen die ich auf GBIF gefunden habe passen (wenn am ehesten R. bovicornutus, dafür ist der Stil aber zu wenig septiert). Ansich eine faszinierende Pilzgattung die sich auf Parasitismus von Pollen spezialisert hat.

Trinacrium kommt wohl auch "von oben". Langsam finde ich die Hinweise wie man die Sporen bestimmt. Hier geht wohl auch was ohne den Rest vom Pilz.

(22) Retiarius sp. - denke ich zumindest

(23) Trinacrium sp.

(24) Trinacrium sp.

(25) Tripospermum myrti (mitte). Daneben Tricladium curvisporum.