Sporen und Strukturen sehe ich in manchen Proiben von bis zu 5 Pilzarten.
Wenn ich das öfter machen will, komme ich nicht drum rum, mir ein Bino zuzulegen und zu lernen, darunter die Präparate anzufertigen.
LG; pablo.
Du sollst die Proben auch nicht mit einem Löffel ziehen. 
Im Ernst, kein Bino 
M.E. ein absolutes Muss, zumal wenn es nur für die Probenanfertigung taugen soll, es auch noch für relativ kleines Geld zu haben.
Hallo Ralf
Toller Fund, schöne Fotos!
Glückwunsch
Hans
Danke Hans. 
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Hallo, Ralf!
Ein hübscher Fund ist das.
Schade, daß nicht alle Sandkörnchen sich als Coprotus niveus entpuppen.
LG, pablo.
Es wird Zeit, dass Du Dir ein Bino anschaffst. Das verwandelt Sandkörnchen in Pilze.
Sind diese tollen vielsporigen Cluster für die Art/Gattung typisch?
Nein, eher nicht. Bei den Dungis hat man es in einigen Gattungen mit Sporenmassen zwischen 4 und einigen hundert zu tun. Bei Coprotus schränken vielsporige Asci aber die Zahl der "Verdächtigen" erheblich ein.
Hallo Safran,
zu Deiner Frage bezüglich des hin- und herschieben des Objektträgers:
Nein, dazu habe ich keine Idee. Es gibt keine Alternative zu einem Kreuztisch, also wirst Du mit dem Problem leben müssen.
Aber:
Du zweifelst noch, ob Du bei der Mikroskopiererei bleiben willst. Kann man verstehen. Ich behaupte jetzt mal, dass Du mit dem vorhandenen Material nicht dabei bleiben wirst. Es wird auf die Dauer nervig. Und Du wirst schon bald an Grenzen stoßen, spätestens bei dem Versuch "mehr" sehen zu wollen.
Ich kann mich dem Rat meiner Vorschreiber nur anschließen und die Anschaffung eines guten gebrauchten Stereomikroskops empfehlen. Das Problem mit den Kopfschmerzen kann man sicher beheben, denn das liegt wohl nicht an der Optik, sondern eher an der Körperhaltung und/oder der Frage Brille oder nicht. Ich spreche aus Erfahrung. 
Klar sind 300 -400 € erst mal viel Geld. Aber betrachte es nicht als ausgegeben, sondern - falls Du das Interesse verlierst - als vorübergehend festgelegt. So ein Mikroskop kann man meist ohne großen Verlust leicht wieder verkaufen. Interessenten dafür gibt es reichlich.
Ideal wäre es, wenn Du bei jemandem mal "reinschauen" kannst. Kontakte dürften über unser Forum sicher herzustellen sein.
Hallo Nobi,
Problem erkannt.
Phascum ist nicht, Barbula convoluta vermutlich. Am Sonntag hol ich neue Proben, die gehen dann zu Marcel. Mal sehen was er meint.
Hallo Nobi,
danke für die Bestätigung.
Da hab ich wohl zu schnell gelesen. Warum jemand schreibt was nicht vorhanden ist, bleibt mir ein Rätsel. Demnächst lesen wir noch "lacking pianos"
Hallo Hans,
ich hab auch zuerst an eine Flechte gedacht. Eventuell noch an einen völlig abgefahrenen Pilobolus. Gesehen hab ich sowas auch noch nicht. Hast Du irgendwelche Sporen gefunden?
Ich hoffe mal, ich hab mich nicht wieder verdaddelt.
Auf sehr altem Fuchsdung fand ich kleine, weiße bis weiß durchscheinende Apothecien die vereinzelt oder in Gruppen wachsen. 64 Sporen im - sehr kurzstieligen - Ascus. De Barey Bubbles sind vorhanden, aber nur sehr schlecht zu sehen. Sporengröße 9,5-10,3 x 4,7-5,6 µm.
Vom letzten Bild der Asci nicht verwirren lassen. Die Sporen darin sind unreif. Reife Sporen füllen den Ascus fast vollständig, davon gelang aber kein guten Foto.
Literatur dazu habe ich folgende gefunden:
An-updated-key-to-coprophilous-Pezizales-and-Thelebolales-in-Italy-Dovery-2007-0001
North American spezies of Coprotus / Kimbrough/Allen/Cain 1971
Es passt alles sehr gut, bis auf die von Doveri erwähnten und abgebildeten Öltropfen. Ob die aber bei frischem Material auch erscheinen, oder nur bei getrockneten Exsikkaten, weiß ich nicht. Bei Doveri sieht man sowas schon mal öfter, was ich dann bei frischen Funden nicht erkennen konnte.
Heute gab es endlich mal wieder was Neues zwischen den Moosen. Obwohl ich mit den Octospora noch ein wenig auf Kriegsfuß stehe denke ich, hier O. axillaris gefunden zu haben. Falls jemand was anderes sieht, bitte melden.
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Hallo an alle
Kann das Zygospermella insignis sein?
http://bender-coprinus.de/pilz…gospermella_insignis.html
Mit einem Frk.- Foto kann ich leider noch nicht aufwarten!
Grüße Hans
Hallo Hans,
es gibt m.W. nur zwei Arten in dieser Gattung, Z. striata und Z. insignis. Bei der Sporengröße kann es demnach nur Z. insignis sein.
Ich hab sie selbst auch schon im Depot gefunden.
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Hallo Sebastian,
so schwierig ist die Orientierung im Wald eigentlich nicht. Sich von einem GPS leiten zu lassen schmälert für mich nur das Erlebnis Wald. Sich ein wenig zu verlaufen führt eigentlich immer dazu neue Wege, neue interessante Stellen und mehr oder weniger kleine Abenteuer zu erleben.
Ich persönlich kenne kein Waldgebiet wo man nicht innerhalb von 1-2 Stunden geradeauslaufen zumindest einen Weg erreicht. Und wo Wege sind gibt's irgendwann auch Wegweiser die einem den Weg in die richtige Richtung zeigen.
Heidis Tipp mit Google-Maps ist übrigens sehr gut. Man kann sich dort prima die Gegend und Beschaffenheit des Waldes ansehen und schauen wo es einprägsame Landmarken oder große Wege gibt an denen man sich dann prima orientieren kann.
Um seinen Orientierungssinn zu schulen kann man am besten in kleineren Wälder anfangen. So besteht keine Gefahr sich längerfristig zu verlaufen. Man sucht sich einfach über Googlemaps ein Ziel oder einen Rundweg heraus und versucht dieses zu erreichen. Mit der Zeit wirst du merken, dass du immer besser die Richtung halten kannst und den Rückweg auch leicht wieder findest.
Ebenfalls empfehlen kann ich die gute alte Methode mit Karte und Kompass. Auf diese Weise erlernt man es hervorragend sich zu orientieren und macht sich nicht weiter Abhängig von der Technik. Diese Technik kann uns natürlich sicher und bequem führen beraubt uns aber gleichzeitig der Möglichkeit uns auf unsere eigenen Sinne und Fähigkeiten zu verlassen.
Du wirst sehen, so schwierig ist das eigentlich gar nicht und man "erlebt" den Wald, die Natur, dieses Gefühl der Freiheit viel intensiver und angenehmer.
Ich für meinen Teil verlaufe mich oft hoffnungslos in Parkhäusern und Einkaufszentren
Dem ist nichts hinzuzufügen. 
Doch:
Wer sich auf Technik verlässt ist, so diese mal ausfällt, verlassen.
Hallo Hans,
typisch für dieses Substrat wäre P. hepatica. Das würde makroskopisch und nach der größeren Sporenmessung gut passen.
Im Bezug auf das ganze mykologische Wissen, wenn ich das alls Bezugsgröße nehme, bin ich TOTALANFÄNGER.
Bonus vir semper tiro
Hallo Hans,
das macht den Fund nicht weniger interessant. Glückwunsch.
Nur mal so zum zeigen.
Die Sporen vom Moosbecherchen Lamprospora miniata faszinieren mich immer wieder. Gäbe es die als Christbaumschmuck, ich würde sie kaufen.
Erst einmal Danke für die zahlreichen Beiträge.
Hallo Ralf!
Ich trau es mich kaum zu fragen: beim Sporenmessen hast du aber nicht nur den Inhalt gemessen?
Ich war zwar stocknüchtern, aber möglich ist das.
Eine Frage: Wie lange lagen die Pilzchen im Döschen?
Nur ein paar Stunden.
Hallo Pablo!
An der Sporenform würde ich mich jetzt nicht festhalten wollen, das geht so ineinander über.
Wohin die Bürstenzellen auf Bild 4 gehören, wird Ralf sicherlich nochmal schreiben.
Diese Bürstenzellen sitzen dicht auf der Hutoberfläche.
Ich werde wohl nochmal dorthin tapern müssen und mehr Material holen. Vielleicht war das Pilzchen auch einfach schon zu alt. Ich komme mit neuen Bildern wieder.
Hallo Hans,
ich muss mal dumm fragen.
Helicogloea ist doch eine Phleogenacea, also irgendwas wie eine Gewebehaut oder so. Wo ist die denn auf Deinen Fotos makroskopisch zu sehen ? Überwächst die die rosafarbenen Apothecien ?
Hallo Inken,
vielen Dank, das werde ich machen.
ich bin zwar nicht Pablo aber ich antworte dir trotzdem. Gut also prinziepiell erstmal ja. Ein kleines Stück Pilz unters Mikro, Wasser oder 3&ige KOH und Deckgläschen drauf und los gehts.
Los gehts...Verdammt, wo ist denn jetzt die Probe? Weggeflitscht. Man versuche ein Stück mit Wasser benetztes Gummibärchen zwischen zwei kleinen Glasplättchen zu zerquetschen.
Scherz. Stefan hat schon recht. Nicht entmutigen lassen, es ist durchaus lernbar.
Und Pablo hat auch Recht.
Hallo Pablo,
Sporen waren Mangelware und die stammen nicht aus einem Abwurf. Kann also sein, dass die noch nicht reif sind.
M.corynephora hatte ich auf dem Schirm. allerdings werden die Auswüchse auf den Cheilos mit <3m angegeben.
Die hier waren deutlich länger.
Ich werde da wohl nochmal hintapern müssen und mehr Material holen.
Diese kleinen Mycena (Höhe max. 1 cm, Hut max. 4mm) fand ich auf dem stehenden Stamm einer abgestorbenen Weide. Die Farbe ist komplett gräulich-weiß, ohne irgendwelche Blautöne. Die Huthaut ist besetzt mit globosen, stoppeligen Zellen und ist nicht gelatinös bzw. ablösbar. Die Lamellenschneiden sind wie die Fläche gefärbt. Ob das an der Stielbasis als Basalscheibchen durchgeht, weiß ich nicht. Besser ausgebildet als auf dem Foto habe ich es nicht gefunden. Die Cheilos haben hornartige Auswüchse und/oder ebenfalls reich mit Stoppeln besetzt. Die Sporen sind rundlich, hyalin. Im Verdacht habe ich Mycena clavularis, kann das aber nicht wirklich beweisen.
Weiß jemand mehr?
Hallo Matthias,
eine sehr gelungene Doku. Das Becherchen fehlt mir noch, aber jetzt hab ich wieder einen neuen Ansporn.
Ein guter Griff, halt Nein, vier gute Griffe.
Hallo Hans,
dann halt Glückwunsch zum ersten Zweitfund dieser Art.
Es ist eines der vielen fehlenden Mosaiksteinchen bezüglich Vorkommen und Verbreitung der Dungi-Fungis.
Hallo Maren,
es ist ja schon alles klar. Dennoch möchte ich Dir zu dem sehr interessanten Fund, der vorbildlichen Doku und den hervorragenden Bildern gratulieren.
