Beiträge von boccaccio

    Hallo zusammen,


    da Ralf und ich uns seit seinem letzten Sirobasidium-Fund immer noch nicht wieder bei Exkursionen getroffen haben, hat er mir den Ast jetzt einfach per Post zugeschickt. Der Fund ist dann natürlich auch direkt unters Mikroskop gewandert und ich denke, daß ich diesmal Bilder machen konnte, die etwas zufriedenstellender als die von 2020 sind.



    Björn

    Hallo zusammen,


    aller guten Dinge sind ja bekanntliche drei, deshalb also hier die dritte Tomentella. Ebenfalls unter Fagus und Corylus gefunden. Schnallen sind vorhanden, Zystiden fehlen, Sporen messen 7.1+-0.4 x 6.5+-0.5, Q=1.1+-0.1, 6.4-8.0 µm x 5.6-7.4 µm, Q=1.0-1.3 und sind eher gelappt als ellipsoid. Damit lande ich erstmal bei Schlüsselschritt 14. Sind die Sporen damit durchschnittlich 6-7,5 µm groß? Falls ja, würde ich im nächsten Schritt die Subikularhyphen als dickwandig bezeichnen und lande bei T. neobourdotii. Alternativ ging es dann zu 30, 31, 33 (Hyphen sind bei mir um 5 µm breit). Die Optionen, die sich dort dann auftauchen, erscheinen mir aber alle nicht so richtig überzeugend. Was meint Tomentella dazu?




    Björn

    Hallo zusammen,


    weiter geht es mit der zweiten Tomentella aus dem Duisburger Stadtwald. Begleitbäume auch hier Fagus und Corylus. Die Sporen messen 7.3+-0.4 x 6.0+-0.5, Q=1.2+-0.1, 6.8-8.4 x 4.9-6.9, Q=1.0-1.4 un sind unregelmäßig, Schnallen sind vorhanden, Zystiden fehlen, Rhizomorphen sind vorhanden, beim Präparieren in KOH färbte sich die Flüssigkeit gelb-grün, so daß ich hier relativ sicher zu Tomentella punicea tendiere. Gehst du damit Tomentella ?



    Björn

    Hallo zusammen,


    am 6.11.2022 habe ich im Duisburger Stadtwald drei Tomentellas gefunden, die ich hier einerseits vorstellen möchte und andererseits um Bestimmungshilfe bitten möchte Tomentella

    Los geht es mit dem ersten Fund, der an Laubholz wuchs, Begleitbäume waren Fagus und Corylus. Die Sporen messen 9.7+-0.4 x 8.1+-0.7, Q=1.2+-0.1, 8.6-10.5 µm x 7.1-9.3 µm, Q=1.1-1.4, Stacheln bis 1.7 µm, nicht bifurkat und die Sporen sind irgendwo zwischen rundlich und schwach elliptisch zu verorten. Zystiden gibt es keine, Schnallen sind vorhanden, das Hymenium ist nicht cyanescent, wobei ich aber an einigen Stellen doch einige wenige cyanescente Elemente beobachten konnte.

    Damit ist man schon mal ganz locker bis Schlüsselschritt 20 gekommen. Entscheide ich mich dort für elliptische Sporen, lande ich mit den braunen Subikularhyphen bei T. atramentaria, bei der das Hymenophor aber glatt sein sollte. Gehe ich bei den runden Sporen weiter, komme ich mit braunen, nicht inkrustierten Subikularhyphen und braunen Sporen zu Tomentella stuposa agg., die aber laut Franks Homepage auch glatt sein sollte.


    Sporen in Melzer


    Björn

    Hallo zusammen,


    Helvella fuscolacunosa paßt zumindest von der Sporengröße her ganz gut. Aber irgendwie werde ich mit den Helvellas nicht so richtig warm...


    Ja, ich hab den Hypomyces noch und kann den gerne mal eintüten.


    Björn

    Hallo zusammen,


    am letzten Sonntag ging es mit dem APR beim strahlendem Sonnenschein zu einer Exkursion auf die Halde Hoppenbruch. Das Wetter hatte auch etliche Neulinge angelockt, so daß wir mit geschätzt 25 Leuten loszogen. Aber neben vielen Teilnehmer:innen gab es auch etliche Pilze:


    1. Puccinia phyllostachydis ex Phyllostachys sp. Der einzige bekannte Fundort dieses Pilzes, der an den septierten Paraphysen der Uredien gut erkennbar ist.


    2. Tomentella bryophila, leicht kenntlich am amyloiden Apikulus


    3. Lindtneria panphyliensis (oder eben L. bryophila, wenn man beides zu einer Art zusammenwirft)


    4. Phallus impudicus


    5. Hypomyces stephanomatis an Geoglossum cookeanum. Normalerweise ist der Pilz an Humaria zu finden.


    6. Geoglossum cookeanum


    7. Eine Helvella... früher hätte man einfach H. lacunosa dazugesagt.


    8. Erysiphe syringae-japonicae ex Ligustrum vulgaris


    9. Helvella crispa


    10. Hier haben wir im Feld gerätselt, was das für seltsame Stäublinge sein mögen. Mikroskopisch zeigte sich dann ein Capillitium ohne Poren und Septen, mit Paracapillitium untermischt, dazu praktisch glatte Sporen ohne Pedicel von 3,1-3,8 µm Durchmesser. Also Apioperdon pyriforme.


    11. Eine Teilnehmerin fand dann diesen Käfer mit Beauvaria bassiana


    12. Sawadaea bicornis ex Acer pseudoplatanus für Tuppie


    13. Mytilinidion decipiens


    Björn

    Hallo zusammen,


    vielen Dank für die Schleimpilzbestimmung, Ulla. Beim zweiten Schleimi war mein Problem, daß ich mit dem Capillitium ohne Kalkknoten nie zu Physarum gekommen wäre, sondern immer schon vorher zu Didymium abgebogen wäre...


    Ellis und Ellis ist was Phytoparasiten angeht einerseits nicht vollständig, andererseits wird teilweise ein breites Artkonzept verwendet und außerdem fehlen natürlich neu aufgespaltene Arten. Das Buch ist aber trotzdem gut, wenn man Pilze auf toten Pflanzen bestimmen will. Man muß dann zwar auch immer im Hinterkopf haben, daß es mehr Pilze gibt, als im Buch beschrieben sind, aber man bekommt zumindest eine erste Idee und oft hilft es ja schon, wenn man mal in der richtigen Gattung ist.


    Björn

    Hallo zusammen,


    juhu endlich mal eine Sordaria richtig bestimmt. Und ja, das Substrat war ebenfalls Kaninchen.


    Dungpilze sind auf jeden Fall sehr schmackhaft, Oliver! Und mit Nobi haben wir hier im Pilzforum ja auch einen echten Experten zur Hand, der immer geduldig mit Rat zur Seite steht. Und Pflanzenpilze lohnen natürlich auch immer, wobei man dafür ja den Klenke und nicht den Ellis&Ellis braucht.


    Björn

    Hallo zusammen,


    zunächst einmal wieder ein dickes Danke an Nobi fürs Drüberschauen und Korrigieren :) An die 37 Arten wird mein Dung wohl nicht rankommen. Der liegt jetzt schon zwei Wochen in der Kammer und es tut sich fast nichts. Aber wer weiß, vielleicht kommt dann ja am Ende ein seltener Knüller... Ansonsten mache ich im Winter ja immer wieder gerne Dungpilze, und hatte jetzt auch in den Borkenbergen noch im Feld zwei Arten einstecken können (die dann aber nicht extra hier ins coprophile Unterforum gestellt).


    Gibt es auch Zahlen, wie viele Kilogramm Dung schon aus dem Depot in heimische Wohnzimmer gewandert sind? :D


    Björn

    Hallo zusammen,


    am letzten Wochenende war ich noch mal in den Borkenbergen unterwegs. Leider hatte es dort in der Nacht den ersten Frost gegeben, so daß es sich mit der pilzlichen Herrlichkeit in engen Grenzen hielt. Aber ein paar nette Funde gab es dann trotzdem noch.


    1. Peronospora vernalis ex Spergula morisonii


    2. Eine Hypocopra auf Kaninchen. Sporen messen 24.2-27.1 µm x 12.0-13.1 µm, sind leicht asymmetrisch und in jungem Zustand zweizellig. Die Keimspalte nimmt nur einen Teil der Spore ein und mißt ca. 15 µm. Der Apikalapparat ist komplett amyloid. Da wenigstens teilweise mehrere Perithecien in je Stroma vorhanden sind, lande ich bei Hypocopra brefeldii.


    3. Cladonia sp.


    4. Bovista pusilla


    5. Suillus luteus

    Huthaut

    Röhren

    Stiel

    Sporen


    6. Botryobasidium subcoronatum, Sporen 7.6+-0.4 x 3.1+-0.2, Q=2.5+-0.2, 6.9-8.2 x 2.7-3.4, Q=2.1-2.7


    7. Geopora arenicola


    8. Ein Schleimpilz, bei dem ich nach einigem Überlegen zu Leocarpon fragilis tendieren würde, auch wenn die Sporen mit 11-12 µm etwas klein sind.


    9. Erysiphe alphitoides ex Quercus robur


    10. Noch ein Schleimpilz mit Sporen von 9-11 µm. Hier fehlt mir allerdings jegliche gute Idee... lamproderma


    11. Zum Schluß noch eine Sordaria mit Sporen von 31-32 µm x 19-20.5 µm, Q=1.5-1.7, womit ich hier bei Sordaria macrospora rauskomme. Aber bis jetzt bin ich in dieser Gattung fast noch nie bei der richtigen Art rausgekommen.... :D


    Björn

    Hallo zusammen,


    eigentlich wollte ich am letzten Wochenende ja in den Duisburg Landschaftspark, aber am Bahnhof mußte ich dann feststellen, daß ich zum einen meine Kamera nicht eingepackt hatte und zum anderen die Straßenbahn durch SEV ersetzt wurde, was die Reise deutlich verlängert hätte. Also gefrustet wieder nach Hause, Kamera eingesteckt und dann einfach eine Runde in den Duisburger Stadtwald gegangen:


    1. Bulbillomyces farinosus


    2. Rhopographus filicinus


    3. Phlebia radiata


    4. Ein Täubling mit Sporenpulver Ia und mildem Geschmack, den ich gerne als Russula heterophylla ablegen würde wollen.


    5. Phacidium lauri


    5. Tricholoma ustale in alt und gammelig


    6. Arcyria stipata


    7. Coleosporium tussilaginis ex Tussilago farfara


    Björn

    Hallo zusammen,


    wenn man mit Karl im Depot unterwegs ist, sollte man sich natürlich auch etwas Dung für die gute Stube mitnehmen. Das habe ich auch in Form von altem Pferd und frischem Hirsch gemacht. Bis jetzt halten sich die Pilzfunde darauf zwar noch in Grenzen, aber ein paar nette Bilder gab es dann doch.


    1. Auf Hirsch: Pilobolus roridus, Sporenmaße 5.4-7.8 x 3.7-4.8, Q=1.4-1.8


    2. Auf Pferd: Podospora decipiens


    3. Auf Pferd: Eine Sporormiella, bei der die Sporen 39.5-43.5 µm x 7.5-8 µm messen. Hier tendiere ich zu S. lageniformis


    4. Noch eine Sporormiella auf Pferd: Sporen messen 63-69 µm x 11-12 µm, so daß ich hier zu S. teretispora tendiere.


    Björn

    Hallo zusammen,


    weiter geht es mit dem zweiten Teil aus dem Depot


    1. Auf den Gräsern wuchs leckere Zuckerwatte in Form von Laetisaria fuciformis


    2. Poronia punctata darf im Herbst natürlich auf dem Konik-Dung nicht fehlen


    3. Cuphophyllus virgineus


    4. Hygrocybe acutoconica


    5. Lycoperdon utriforme


    6. Agrocybe praecox


    7. Trichoglossum hirsutum


    8. Geoglossum cookeanum


    9. Cuphophyllus virgineus var. ochraceopallida


    10. Hyaloperonospora praecox ex Draba verna agg.


    11. Erysipe alphitoides ex Quercus robur

    12. Hier hatte ich im Feld auf Helicobasidium gehofft, aber es war dann doch nur eine Anamorphe, zu der ich keine Idee habe.


    Björn

    Hallo zusammen,


    am 1.11. hat Karl Jan-Arne und mich mal wieder auf eine tolle Tour mit ins Depot genommen, von der ich im Folgenden einige Bilder zeigen möchte:


    1. Dendrocollybia racemosa. Nicht mehr ganz frisch, aber immer noch beeindruckend


    2. Lactarius controversus


    3. Tricholoma populinum


    4. Entoloma sp.


    5. Entoloma sp.


    6. Omphalina velutipes


    7. Entoloma sp., die Karl eingesteckt hat.


    8. Sarcodon squamosus


    9. Tricholoma equestre


    10. Lactarius rufus


    11. Lactarius mammosus


    12. Nectriopsis lecanodes auf Peltigera


    13. Gliophorus psittacinus


    14. Clavulinopsis laeticolor


    15. Es gibt ihn doch: Nach unzähligen Neottiella rutilans habe ich endlich mal Neottiella vivida erwischt


    Björn

    Hallo Frank,


    die Tomentella kann ich dir gerne zeitnah zuschicken (hier liegen ja auch immer noch einige Tomentellas vom letzten Jahr herum). Da ich in den letzten Tagen noch einige weitere Tomentellas gefunden habe, werde ich die aber auch noch in den kommenden Tagen hier vorstellen, vielleicht gibt es da ja auch noch Bedarf für eine genauere Untersuchung.


    Björn

    Hallo zusammen,


    bei der Exkursion zum Eignerbach-Schlammteich fanden wir u.a. auch die folgende Tomentella. Mit der körnigen Oberfläche schon makroskopisch recht ansprechend, weil sie auch durch ihre inneren Werte zu überzeugen ;) Das Habitat bestand aus jungen Birken und vereinzelten Kiefern und Fichten. Zystiden fehlen, Schnallen sind überall vorhanden, das Hymenophor ist nicht cyanescent, Sporen sind nicht gelappt, der Apikulus erscheint amyloid und Sporenmaße betragen 8.2+-0.5 µm x 6.8+-0.3 µm, Q=1.2+-0.1 bzw. 7.4-9.4 µm x 6.3-7.3 µm, Q=1.1-1.4. Mit Tomentella s Schlüssel kommt man damit schon mal ganz locker bis Punkt 20. Sind die Sporen nun eher elliptisch oder rund? Bei elliptischen Sporen käme ich zu T. ellisii, was aber glaube ich nicht paßt. Also rundsporig weiter: Mit dickwandigen, braunen Subikularhyphen und braunen Sporen komme ich zu 27. Tomentella lapida ist raus wegen Cyanescens, Tomentella alpina ist im Flachland nicht zu erwarten, bleiben also Tomentella fuliginea und Tomentella stuposa agg. Letztere hat einen inamyloiden Apikulus und ist damit auch raus. Paßt also T. fuliginea? Oder bin ich schon vorher irgendwo falsch abgebogen?




    Sporen in KOH


    Sporen in Melzer


    Präparate in KOH


    Björn