Hallo Felli,
wodran erkennt man, daß er reif ist? Ich hatte die gemessenen Sporen aus einem Sporenabschußpräparat alla Ralf gewonnen.
Björn
Beiträge von boccaccio
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Hallo zusammen,
am Samstag war ich auf einer Tour im Hiesfelder Wald und dort besonders im Rotbachtal unterwegs. Erfreulicherweise zeigten sich dort eine ganze Menge an richtig großen Pilzen und sogar für die Pfanne fand sich das ein oder andere Exemplar.
1. Neoboletus erythropus oder wie immer er gerade heißen mag.
2. Amanita rubescens
3. Amanita gemmata
4. Ceratiomyxa fruticulosa
5. Fuligo septica
6. Eine Scutellinia. Sporengröße (19.4 +- 0.7 ) x (13.3 +- 0.5) µm, Asci 195-220 µm lang und 16-23 µm breit. Randhaare 400-470 µm lang, 23 µm breit, Wanddicke 4-5 µm. Sporen warzig und mit vielen Öltröpfchen. Auffällig die geteilten Paraphysen. Fruchtkörper waren sehr groß (geschätzt >1 cm Durchmesser) und wuchsen im Morast auf totem organischen Material wie Eicheln, Stöckchen und Blättern.
Kann es sich hier um Scutellinia patagonica handeln?
6. Russula sp.
Sporengröße (7.5 +- 0.4) µm x (5.8 +- 0.3) µm
Geschmack mild, Geruch vor Ort keiner feststellbar. Jetzt ist ein ganz leichter, angenehmer Geruch feststellbar, den ich aber nicht näher zuordnen kann. Standort unter Fagus sylvaticus.
Björn
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Hallo Ralph,
nein, nach Apothecian haben wir nicht geschaut. Das machen wir dann beim nächsten Mal. Kommen die bei Cetraria aculeata häufig vor?
Björn
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Hallo zusammen,
der Duisburger Innenhafen bietet zwar naturgemäß jede Menge Wasser, aber natürlich auch mindestens genausoviel Beton, so daß man dort eigentlich nicht wirklich mit Pilzen zu rechnen hat... außer man interessiert sich für Flechten. Dann wird man dort mit reichen Funden belohnt. Ich habe gestern Abend dort eine kleine Runde gedreht und in erster Linie nur nach fotogenen Flechten Ausschau gehalten. Wenn man da genauer schauen würde, fände man mit Sicherheit noch dutzende anderer Arten.
1. Rusavskia elegans
2. Caloplaca sp.
3. Xanthoria parietina
4. Xanthoria calcicola
5. Phaeophyscia sp.?
6. Circinaria contorta
7. Physcia caesia
8. Protoparmeliopsis muralis
9. Clash of Lichens
Björn
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Hallo zusammen,
wenn die Pflanze Pippau ist, dann erfordert die Pilzbestimmung tatsächlich die genaue Wirtsart. Naja, mal schauen, vielleicht kriegen wir das auch noch irgendwie raus.
Was die Nr. 24 angeht, habt ihr natürlich vollkommen recht. In meiner Verschlagwortung am Rechner hat der Pilz auch den richtigen Namen bekommen. Hab das jetzt entsprechend oben im Beitrag geändert.
Auch vielen Dank für den Hinweis auf die Huthaut, da werde ich evtl. bei Gelegenheit noch mal reinschauen.
Björn
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Hallo zusammen,
gestern war in NRW ein obskurer katholischer Feiertan, den Christian J. und ich nutzten, um in der Westruper Heide in Haltern am See auf Flechtensuche zu gehen. Die Westruper Heide ist eine Wacholderheide auf Sand, auf der es vor Flechten, insbesondere der Gattung Cladonia nur so wimmelt. Daneben fanden wir aber auch den einen oder anderen Pilz, so daß der Beitrag eben hier bei den Exkursionsberichten landet und nicht im Flechtenunterforum. Insgesamt war das eine super Tour, die uns beiden eine Menge Spaß gemacht hat und so ist angedacht, daß wir in Zukunft öfter mal in die Flechten ziehen werden. Vielleicht findet sich ja hier auch noch der eine oder andere Flechtenfreund aus dem Ruhrgebiet und Umgebung.
1. Cladonia sp. Muß ich mir zu Hause noch mal in Ruhe anschauen
2. Flavoparmelia soredians, wie man an der roten K-Reaktion der Sorale erkennt. Darunter noch Punctelia subrudecta
3. Hier muß ich später noch mal reinmikroskopieren, könnte aber auch Lecidella elaeochroma sein. EDIT: Auch Lecidella elaeochroma
4. Lecidella elaeochroma
5.Protoparmeliopsis muralis
6. Physcia caesia
7. Eine Mandarinenschale? Nein, Tubifera ferruginosa
8. Cladonia sp. die P+ orange-rot reagiert. Da kümmert sich Christian drum. EDIT: Hat Christian in die subulata/rei/glauca Gruppe gesteckt.
9. Cladonia floerkeana. Oder doch ein küssender Alienmund? EDIT: Hat Christian C. macilenta draus gemacht.
10. Auf Kiefer. Hat Christian auch mitgenommen. Es könnte sich um Hertelidea botryosa handeln. EDIT: Von Christian als Trapeliopsis flexuosa bestimmt.
11. Cladonia uncialis
12. Cladonia foliacea. EDIT: Oder doch eher C. cervicornis?
13. Cladonia mitis
14. Cladonia sp. EDIT: Cladonia coccifera agg.
15. Nachdem wir von der vorherigen Cladonie Fotos gemacht haben, nam Christian auch davon eine kleine Probe zur genaueren Bestimmung mit. Bevor der Fund eingetütet wurde, gab er mir den noch mal in die Hand, weil er einfach so hübsch aussah. Dabei fiel mir direkt daneben eine kleine, braune Flechte auf. Wie sich herausstellte, war dann der ganze Boden voll damit. Das ist einigermaßen interessant, weil sie uns vorher gar nicht aufgefallen ist und ich an der Stelle in der Vergangenheit auch schon mehrfach nach Flechten geschaut habe. Aber diese Cetraria aculeata ist mir dabei immer durch die Lappen gegangen. Da es sich hier für uns beide um einen Erstfund handelt, war das in gewisser Weise der Höhepunkt der Exkursion.
16. Von Christian als Placynthiella uliginosa bestimmt. EDIT: Ich würde momentan eher zu P. oligotropha tendieren
17. Liege ich hier mit Amanita fulva richtig?
18. Auch bei diesem Fund würde ich Amanita fulva dranschreiben wollen.
Sporen rund
Volva
19. Wo Wacholder wächst, ist der Gitterrost nicht weit. Leider war auf dem Wacholder selber keiner mehr zu finden und auf dem Sorbus haben sich erst Spermogonien gebildet. Also Gymnosporangium sp. ex Sorbus sp.
20. Das dürfte Coltricia perennis sein.
21. Hier muß ich erstmal die Pflanze bestimmen...
22. Ein Golfball
23. Dieser Kollege war im Gegensatz zu Nr. 22 auch schon reif und wanderte deshalb unters Mikroskop
24. Edit: Ist natürlich Polyporus tuberaster und nicht P. squamosus
25. Ramularia variabilis ex Digitalis purpurea
26. Lycogala sp. und Tubifera ferruginosa
27. Und wo Wacholder wächst, darf natürlich auch Lophodermium juniperinum nicht fehlen.
Björn
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Hallo Stefan,
wuchsen da etwa keine Pilze auf den Pflanzen?
Björn
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Hallo Karl,
gibt es etwa Leute, die keine Phytos mögen? :-O
Björn
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Hallo Karl,
vielen Dank für den Link zum Scutellinia-Artikel. Ich habe mich da auch durchgeschlüsselt. Bei 16 hatte ich zwar leichte Probleme, aber da der eine Weg nur zu kurzhaarigen Arten führte, konnte ich ihn verwerfen und lande dann auch bei S. crinita bzw. S. scutellata. Mal schauen, ob Ralf sich hier noch meldet, sonst stell ich das bei FB auch noch mal ein.
Ah und da dachte ich, ich hätte schon ein Minimalfitzelchen Huthaut erwischt
Dann muß ich da wohl in Zukunft gründlicher rasieren Björn
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Hallo zusammen,
eigentlich war ja gestern eine MAB-Exkursion in Kürten bei Ralf angesetzt, aber da meine Mandel und ich immer noch nicht ganz fit waren, haben wir lieber bis 9 Uhr geschlafen, statt uns um 7 Uhr auf den Weg ins Bergische Land zu machen. So ging es für mich dann alternativ auf einen kleinen Spaziergang an die Ruhr. Was mich etwas irritiert hat, waren die zahlreichen uniformierten Soldaten, die dort teilweise in kleinen Gruppen, teilweise in größeren Formationen (Rotten einhalten!) unterwegs waren. Verlegt die Bundeswehr ihre Truppe neuerdings zu Fuß? Und wo geht der Marsch hin?
1. Coleosporium senecionis ex Senecio inaequidens
2. Golovinomyces cynoglossi ex Echium vulgare
3. Puccinia punctiformis ex Cirsium arvense. Der Rost hatte dann auch noch einen Hyperparasiten in Form von Tuberculina persicina
4. Rost auf Gras. Immerhin mit Telien.
5. Panaeolus foenisecii
6. Puccinia allii ex Allium sp.
7. Entyloma eryngii ex Eryngium campestre
8. Phragmidium sanguisorbae ex Sanguisorba minor. Im Mikroskop fand sich dann auch noch komisches Konidiengedöns auf das ich mir keinen Reim machen kann.
9. Xanthoria cf. calcicola
10. Pustula obtusata ex Tragopodon pratensis
11. Golovinomyces cichoracearum ex Tragopogon pratensis
12. Und auch an der Ruhrmündung noch mal Puccinia punctiformis ex Cirsium arvense
Björn
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Hallo zusammen,
erstmal einen herzlichen Dank für das zahlreiche Feedback.
Zur Scutellinia. Sporengröße (19.3 +- 0.6) µm x (11.8 x 0.2) µm. Ascus 250 µm x 22 µm, Ascusfuß 25 µm x 13 µm. Randhaare um die 1.4 mm, Haardicke 33 µm, Haarwanddicke 5-6 µm. Sporen ganz fein warzig. Womit schlüssel ich das jetzt am besten?
Nun die Russula. Sporengröße (8.7 +- 0.6) µm x (6.9 +- 0.2) µm, Sporen mit Warzen, die vereinzelt verbunden sind. Was die Huthaut angeht, meine ich Pileozystiden zu erkennen. Soweit paßt das alles gut zu R. exalbicans. Was mich etwas irritiert, ist der Sporenabwurf. Der sah für mich ziemlich weiß aus, was ja nicht zu R. exalbicans passen würde. Andererseits waren die Lamellen meines Fundes, gerade jetzt wo er trocken ist, deutlich gelbstichig. Die fehlende Schärfe schiebe ich einfach mal darauf, daß ich am Wochenende literweise Ingwertee getrunken habe, danach ist auch Lactarius vellereus mild
Der Lactarius hat auch Sporen: (8.0 +- 0.3) µm x (7.1 +- 0.2) µm. Als Ornament erkenne ich Grate, die aber kein zusammenhängendes Netz bilden. Was den Geschmack angeht, bezog sich das auf die Milch. Die war zu Beginn ganz leicht süßlich und dann geschmackslos. Den Taschentuchtest konnte ich jetzt leider nicht mehr machen, weil das Exemplar zu Hause schon zu sehr eingetrocknet war. Die Milchflecken auf der Zeitung im Pilzkorb waren aber auch tendentiell eher hell und nicht bräunend. Damit komme ich dann zu Karls Lactarius subdulcis.
Und auch noch ein kurzer Blick auf die Humaria hemisphaerica
Und zum Champignon wollte ich keinesfalls sagen, daß ich Zweifel habe, daß es nicht Agaricus bitorquis ist. Ich hatte den halt im Wald nur fotografiert und bis dato noch nicht genauer angeschaut
Björn
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Hallo zusammen,
vielen Dank für den Hinweis auf Melzer. Baumwollblau hatte ich irgendwie ohne großes Nachdenken aus Gewohnheit genommen und so wirklich überzeugt war ich von dem Ergebnis dann auch nicht. Die Tage bin ich dann selber im Zusammenhang mit Russulas auf das Färben mit Melzer gestoßen und hab das auch bei den gestrigen Funden mal angewandt. Ist echt um Klassen besser!
Björn
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Hi,
erstmal nur Sektion, weil ich von Großpilzen ja wenig Ahnung habe und da erst noch mal genauer schauen wollte.
Björn
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Hallo Claudia,
das war mein erster Feuersalamander, von daher kann ich zur Befleckung wenig sagen.
Björn
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Hallo zusammen,
am 30.05.2019 traf sich der MAB zu einer Exkursion ins Burgholz in Wuppertal. Auch wenn es nicht extrem viele Pilze gab, will ich einige unserer Funde doch hier vorstellen:
1. Urocystis agropyri ex Elymus sp.
2. Puccinia coronata ex Festuca gigantea
3. Phragmidium bulbosum ex Rubus fruticosus agg.
4. Phragmidium violaceum ex Rubus fruticosus agg.
5. Hymenoscyphus repandus ex Senecio ovatus
6. Pseudopeziza trifolii ex Trifolium repens
7. Golovinomyces cynoglossi ex Myosotis sp.
8. Coprinellus disseminatus
9. Salamandra salamandra
10. Cudoniella clavus
11. Den hat Mario mitgenommen
12. Marasmius sp.
13. Coleroa robertiani ex Geranium robertianum
14. Vibrissea flavovirens
15. Calycina claroflava
16. Puccinia coronata ex Holcus lanatus
17. Podosphaera epilobii ex Epilobium hirsutum
18. Pucciniastrum epilobii ex Epilobium hirsutum
19. Inonotus obliquus
20. Polyporus squamosus
21. Lactarius subdulcis
Björn
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Hi,
Fundorte tagge ich nicht explizit, dafür habe ich ja einerseits Geotags, andererseits sind meine Bildernamen im Normalfall auf den Fundort bezogen. Das liegt an meiner Ordnerstruktur, wo es für jedes Datum einen Ordner gibt und darin dann eben die Funde eines Tages, die typischerweise alle von einer Lokalität stammen.
Was die Pilznamen angeht, habe ich das ganze aufgedröselt in Basidiomyceten, Ascomyceten etc. (und noch mal speziell Phytoparasiten, obwohl die ja auch da mit reingehören) und darin dann jeweils den wissenschaftlichen Namen. Aber wie man das macht ist am Ende glaube ich egal, weil man ja auch nach Stichwörtern suchen kann und dann alle zu dem Stichwort gehörenden Bilder angezeigt bekommt.
Björn
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Hallo zusammen,
da ich im Moment von einer Mandelentzündung geplagt bin, wollte ich heute eigentlich nur eine kleine Runde durch den Stadtwald drehen und etwas frische Luft schnappen. Aber dann war der Wald mal wieder voll von Pilzen
1. Laetiporus sulphureus. Da war das Körbchen auch direkt halb voll.
2. Gleiche Farbe, andere Größe: Rickenella fibula.
3. Kein Pilz, aber trotzdem ganz nett: Lucanus cervus
4. Lactarius sp. unter Rotbuche. Geruch gummiartig, Geschmack mild. Er darf jetzt gerade aussporen.
5. Rickenella swartzii
6. Amanita rubescens
7. Russula sp. Unter Eiche, Rotbuche und Birke, Geschmack mild, kein besonderrer Geruch. Sport auch gerade aus.
8. Humaria hemisphaerica
9. Scutellinia sp. Soll auch gerade aussporen, macht das aber irgendwie nicht so, wie das in Ralfs Geheimtrick-Beitrag beschrieben ist...
10. Cantharellus cibarius
11. Agaricus sp. aus der Sektion Bivelares. Auffällig die Hutform. Im ersten Moment dachte ich, da wäre irgendein Nupsel im Waldboden, der nur wie ein Pilz aussieht.
12. Polyporus aber welcher?
13. Pleurotus sp.
Björn
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Hallo Nemrod,
ich benutze Digikam, da kann man Fotos taggen (z.B. mit Artnamen, Fundorten) und auch Geotags setzen. Und das läßt sich dann auch entsprechend alles gut durchsuchen. Außerdem ist Digikam Open Source Software.
Björn
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Hallo zusammen,
außerdem ist das mit Schädling oder Nicht-Schädling auch immer eine Frage der Perspektive. Chondrostereum purpureum wird z.B. auch gezielt dafür eingesetzt um Prunus serotina zu bekämpfen.
Björn
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Hallo Pablo,
den Wissenschaftlern entsteht durch Sci-Hub gar kein Schaden. Wenn ein Paper wie das obige bei einem Verlag wie Elsevier erscheint, kriegt der Wissenschaftler da keinen Cent für. Im Gegenteil, im Laufe des Review-Prozesses arbeiten andere Wissenschaftler noch als kostenlose Gutachten für den Verlag, der dann einen dicken Gewinn damit einstreicht (und Elsevier ist da ein ganz schlimmes Beispiel, die nehmen es echt von den Lebendigen und verkaufen Unis z.B. nur Zeitschriften-Bundles, wo man dann statt des gewünschten Journals auch nch zig andere unbrauchbare Journale mitabonnieren muß). Von daher trägt Sci-Hub eher dazu bei, daß Artikel zugänglicher sind, was den Wissenschaftlern dann hilft, weil die Artikel gelesen und ordentlich zitiert werden können.
Björn
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Hi Pablo,
SciHub findest du mit Google
Da gibst du dann einfach die DOI des Artikels ein Redirecting und schwupps landet der Artikel bei dir. Das ganze ist zwar rechtliche Grauzone, aber was bleibt einem anderes übrig...Björn
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Hallo zusammen,
schön, daß der Pilz dann doch einen Namen bekommen hat (ohne die Stephanozysten wäre ich da aber nie drauf gekommen). Das Paper von Hallenberg et al. habe ich über sci-hub schon selber bekommen (sehr empfehlenswerte Seite, um an Paper zu kommen) und mit Freude festgestellt, daß ich mit meinen Methoden bei P. praetermissa s.l. aufhören kann/muß
Björn
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Hallo Pablo,
ich hab jetzt bei den Sporen noch mal genauer in Wasser nachgemessen und komme auf (9.4+-0.8) µm x (5.1+-0.3) µm. Die meisten Sporen waren nahe bei 9 µm und nur ein Außreißer hatte 11.3 µm Länge.
Was de Zystiden angeht, hab ich jetzt auch noch mal genauer hingeschaut. Vereinzelt gab es Zystiden mit Längen von ca 100 µm. Was die Formen angeht, gab es da auch einige verschiedene Zystiden: Zylindrische die oben eine etwas dickere Wand haben, zugespitzere Zystiden und einige mit Kopf. Außerdem gab es eine Zystide, die so etwas wie einen Kristallschopf hat, das kann aber natürlich auch täuschen und sich bloß um Schmock handeln. Außerdem gab es noch vereinzelt so rundliche zystidenartige Gebilde, die an Eierbecher erinnern. Könnten das Stephanozysten sein? Dann würde ich hier am ehesten zu Peniophorella praetermissa tendieren.
Björn
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Hallo zusammen,
was wären denn Alternativen zu L. decastes? Ansonsten waren wir uns da aber alle so sicher, daß sich einige auch was für die Pfanne eingepackt haben...
Die Uredien von P. violaceum hatten oberseits violette Blattflecken von einigen Milimetern Durchmesser, und unten die üblichen gelben Puscheln von ähnlicher Größe. Also paßt alles schon irgendwie, aber ich glaub, ich hab mich da einfach nur gehörig selber verwirrt...
Zum Rindenpilz scheint H. roseocremeum in der Tat gut zu passen. Sporen sind so um die 8x5 µm und leicht nierenförmig. Schnallen sind vorhanden und einige Zystiden gab es auch.
Björn
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Hallo Oehrling,
Mikrobilder gibt es keine, aber die Pilze hatten das mit dem Sporenabwurf dankenswerterweise schon vor Ort erledigt. Das Sporenpulver war ganz klar weiß, sieht man auf dem Foto auch ansatzweise auf dem kleinen Fruchtkörper ganz rechts.
Björn