Beiträge von Bohan Jia

Zitat von thorben96

Hallo Bohan,

da hast du ja einige interessante Funde gemacht

Zitat von Bohan Jia

25. Nalanthamala cf. psidii

ex Rubus idaeus, conidiomata 325 μm - 875 μm Ø

Den Pilz kenne ich nicht, aber dein Fund erinnert mich stark an Clonostachys.

Vergleich mal damit.

Zitat von Bohan Jia

40. unbekannter Hyphomycet parasitär auf Allophylaria macrospora

Die Sporen sind am keimen, daher vermute ich, dass es die Anamorphe der A. macrospora sein könnte.

Es oft so, dass aus den Sporen bei Reife die Konidienform gebildet wird.

VG : Thorben

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Hallo Thorben,

danke für dein Feedback! Stimmt, es kann gut sein, dass die Sporen nur gekeimt haben und die nur die Anamorphe der Allophylaria ist.

LG

Bohan

Hallo zusammen,

Vor circa 3 Wochen war ich bei der Exkursion der AG-Myk am Mönkeberger See. Nun habe ich die Funde endlich auch alle durchmikroskopiert und bestimmt und berichte euch die Artenvielfalt des schönen Gebietes.

1. Sistotrema porulosum

ex Quercus rubra

spores:
3.8 [3.8 ; 4.1] 4.2 × 1.4 [1.5 ; 1.7] 1.8 μm
Q = 2.2 [2.3 ; 2.7] 2.8 ; N = 12 ; C = 95%
Me = 4.0 × 1.6 μm ; Qe = 2.5

basidia:
9.5 [10.8 ; 14.0] 13.9 × 3.8 [4.0 ; 5.0] 5.1 μm
Q = 2.1 [2.4 ; 3.2] 3.4 ; N = 7 ; C = 95%
Me = 12.4 × 4.5 μm ; Qe = 2.8

2. Allophylaria macrospora

ex Quercus rubra, apothecia 210 μm - 300 μm * 400 μm - 500 μm

asci:
97.2 [97.5 ; 126.1] 129.5 × 8.1 [8.2 ; 11.4] 11.8 μm
Q = 8.6 [9.6 ; 14.3] 14.4 ; N = 6 ; C = 95%
Me = 103.7 × 9.4 μm ; Qe = 11.2

ascospores:
21.0 [21.0 ; 32.0] 32.0 × 4.9 [4.9 ; 5.3] 5.3 μm
Q = 4.0 [4.0 ; 6.5] 6.5 ; N = 6 ; C = 95%
Me = 22.5 × 5.1 μm ; Qe = 4.3

paraphyses:
112.3 [113.8 ; 143.6] 144.0 × 2.3 [2.5 ; 3.5] 3.6 μm
Q = 31.2 [32.1 ; 57.6] 61.2 ; N = 10 ; C = 95%
Me = 125.4 × 3.1 μm ; Qe = 40.5

3. Xanthonectria pseudopeziza

ex Quercus rubra, perithecia 190-280 μm Ø

ascospores:
21.2 [22.6 ; 41.9] 45.8 × 4.0 [4.3 ; 6.1] 6.9 μm
Q = 3.6 [4.6 ; 7.9] 9.4 ; N = 18 ; C = 95%
Me = 34.1 × 5.3 μm ; Qe = 6.1

perithecial wall thickness:
43.7 [44.6 ; 61.6] 61.8 µm
N = 7 ; C = 95%
Me = 50.2 µm

asci:
48.2 [48.5 ; 67.6] 69.0 × 10.7 [10.8 ; 14.0] 14.1 μm
Q = 3.5 [3.6 ; 6.0] 6.2 ; N = 6 ; C = 95%
Me = 54.3 × 11.8 μm ; Qe = 4.8

4. Cylindrium aeruginosum

ex Quercus rubra leaf

conidia:
17.9 [19.2 ; 21.4] 22.5 × 2.0 [2.3 ; 2.6] 2.7 μm
Q = 7.2 [7.6 ; 9.2] 10.7 ; N = 27 ; C = 95%
Me = 20.3 × 2.4 μm ; Qe = 8.4

conidiogenous cells:
10.9 [11.5 ; 15.0] 15.8 × 3.3 [3.4 ; 5.0] 5.3 μm
Q = 2.1 [2.7 ; 4.3] 4.4 ; N = 11 ; C = 95%
Me = 13.1 × 4.0 μm ; Qe = 3.3

5. Mycena smithiana

ex Quercus rubra leaves

6. Podosphaera aphanis Komplex

ex Geum urbanum

7. Baeospora myosura

ex Larix

8. Diatrypella quercina

ex Quercus rubra

9. Radulomyces confluens

(Als ich den Pilz untersucht habe, gab es keine lebenden Basidien mehr, deshalb habe ich keine Messung für die Basidien gemacht. )

ex Quercus rubra

spores:
6.0 [6.0 ; 7.9] 7.9 × 4.6 [4.6 ; 6.1] 6.1 μm
Q = 1.1 [1.1 ; 1.5] 1.5 ; N = 33 ; C = 95%
Me = 7.0 × 5.4 μm ; Qe = 1.3

dendrophyses:
12.6 [12.3 ; 27.3] 32.7 × 2.8 [3.2 ; 5.2] 5.1 μm
Q = 2.6 [3.0 ; 6.8] 6.9 ; N = 6 ; C = 95%
Me = 19.8 × 4.2 μm ; Qe = 4.9

10. Mycena vitilis

smell slightly raphanoid

11. Phloeomana speirea

ex Quercus rubra

12. Allophylaria campanuliformis

on fern, apothecia 260 - 410 μm Ø

ascospores:
13.5 [13.9 ; 16.3] 17.3 × 3.2 [3.4 ; 4.4] 4.9 μm
Q = 2.8 [3.5 ; 4.3] 4.4 ; N = 16 ; C = 95%
Me = 15.1 × 3.9 μm ; Qe = 3.9

asci:
48.0 [53.7 ; 73.9] 74.2 × 6.8 [7.1 ; 8.5] 8.7 μm
Q = 6.1 [6.9 ; 9.5] 9.3 ; N = 7 ; C = 95%
Me = 63.8 × 7.8 μm ; Qe = 8.2

paraphyses:
46.0 [55.9 ; 63.8] 64.9 × 1.0 [1.4 ; 2.0] 2.7 μm
Q = 24.0 [31.9 ; 41.0] 56.9 ; N = 9 ; C = 95%
Me = 58.1 × 1.7 μm ; Qe = 37.1

13. Hymenoscyphus scutula

ex Geum urbanum, apothecia 80-1000 μm Ø × 400-800 μm

ascospores:
17.4 [19.5 ; 22.6] 24.9 × 2.9 [3.5 ; 4.3] 4.8 μm
Q = 4.4 [4.7 ; 6.2] 7.6 ; N = 23 ; C = 95%
Me = 21.1 × 3.9 μm ; Qe = 5.4

asci:
100.5 [101.5 ; 113.2] 112.7 × 7.6 [7.4 ; 8.5] 8.8 μm
Q = 11.4 [12.1 ; 15.0] 14.5 ; N = 4 ; C = 95%
Me = 107.4 × 8.0 μm ; Qe = 13.5

paraphyses:
45.1 [56.5 ; 87.5] 97.5 × 1.6 [1.8 ; 2.4] 2.8 μm
Q = 24.9 [26.9 ; 42.3] 48.3 ; N = 14 ; C = 95%
Me = 72.0 × 2.1 μm ; Qe = 34.6

14. Collybia (Lepista) nuda

smell odorous

15. Coprinus comatus

16. unbekannter auf Eichenblatt

ex Quercus robur, conidiomata up to 450 μm Ø

conidia:
13.6 [14.0 ; 17.0] 17.7 × 1.7 [1.7 ; 1.9] 2.0 μm
Q = 6.8 [7.2 ; 9.7] 10.4 ; N = 13 ; C = 95%
Me = 15.6 × 1.8 μm ; Qe = 8.4

conidiogenous cells:
15.5 [19.5 ; 38.6] 39.9 × 1.3 [1.5 ; 2.3] 2.5 μm
Q = 7.1 [8.0 ; 24.2] 30.7 ; N = 17 ; C = 95%
Me = 26.6 × 1.9 μm ; Qe = 14.5

septate, hair-like elements:
50.0 [50.4 ; 61.1] 61.9 × 2.9 [2.9 ; 3.6] 3.7 μm
Q = 14.2 [14.3 ; 20.8] 21.3 ; N = 4 ; C = 95%
Me = 54.5 × 3.3 μm ; Qe = 16.4

17. Polyscytalum fecundissimum

ex Quercus rubra, conidiomata 110 μm - 550 μm Ø

conidia:
12.1 [12.7 ; 15.3] 16.4 × 1.8 [1.9 ; 2.4] 2.4 μm
Q = 5.1 [5.8 ; 8.1] 8.2 ; N = 35 ; C = 95%
Me = 14.7 × 2.1 μm ; Qe = 7.1

conidiophores:
41.9 [46.1 ; 69.8] 70.7 × 2.7 [3.0 ; 4.8] 4.8 μm
Q = 12.3 [12.7 ; 17.5] 17.5 ; N = 6 ; C = 95%
Me = 63.3 × 4.4 μm ; Qe = 15.5

18. Mollisia cinerea

ex Quercus robur twig, apothecia 350 μm - 900 μm, paraphyses KOH -, ectal excipulum KOH +

ascospores:
6.5 [6.7 ; 9.5] 10.7 × 2.0 [2.2 ; 2.6] 2.7 μm
Q = 2.7 [2.9 ; 4.2] 4.7 ; N = 63 ; C = 95%
Me = 7.5 × 2.2 μm ; Qe = 3.3

asci:
42.1 [44.9 ; 68.6] 69.5 × 4.3 [4.6 ; 7.4] 7.6 μm
Q = 8.5 [8.7 ; 12.2] 12.2 ; N = 6 ; C = 95%
Me = 63.9 × 5.5 μm ; Qe = 9.9

paraphyses:
45.9 [47.3 ; 57.1] 57.4 × 2.4 [2.6 ; 3.7] 3.8 μm
Q = 14.3 [14.4 ; 21.9] 23.5 ; N = 7 ; C = 95%
Me = 55.3 × 3.1 μm ; Qe = 17.4

marginal cells:
21.1 [21.8 ; 42.4] 45.0 × 3.9 [4.0 ; 6.6] 6.9 μm
Q = 3.8 [3.9 ; 9.0] 9.2 ; N = 18 ; C = 95%
Me = 34.7 × 4.8 μm ; Qe = 6.4

19. Ramularia glechomatis

ex Glechoma hederacea

20. Ruzenia spermoides

ex Acer pseudoplatanus

21. Entoloma subradiatum

next to Rubus, Betula, Quercus rubra, Salix, Malus, smell farinaceous, spores acyanophilous

spores:
6.7 [6.9 ; 9.4] 9.6 × 5.9 [6.1 ; 8.3] 8.3 μm
Q = 1.0 [1.0 ; 1.4] 1.4 ; N = 30 ; C = 95%
Me = 8.4 × 7.2 μm ; Qe = 1.1

width of hyphae of pileipellis:
4.0 [4.4 ; 6.2] 6.2 µm
N = 8 ; C = 95%
Me = 5.8 µm

trama length:
103.3 [104.9 ; 196.7] 205.9 µm
N = 8 ; C = 95%
Me = 143.1 µm

basidia:
27.9 [28.4 ; 35.2] 35.5 × 7.8 [8.0 ; 10.1] 10.2 μm
Q = 2.8 [3.0 ; 3.8] 3.9 ; N = 6 ; C = 95%
Me = 33.1 × 9.4 μm ; Qe = 3.7

caulocystidia:
23.4 [24.6 ; 38.3] 40.6 × 4.0 [4.4 ; 6.7] 7.0 μm
Q = 3.8 [4.2 ; 6.5] 6.5 ; N = 12 ; C = 95%
Me = 30.3 × 6.1 μm ; Qe = 5.2

22. Lepiota boudieri

under Rubus idaeus, smell faintly stinky

spores:
7.1 [7.4 ; 10.1] 10.6 × 3.1 [3.2 ; 3.9] 3.9 μm
Q = 2.0 [2.1 ; 3.1] 3.2 ; N = 24 ; C = 95%
Me = 9.3 × 3.5 μm ; Qe = 2.7

pileipellis elements:
66.7 [69.4 ; 103.0] 106.5 × 9.9 [10.0 ; 12.8] 13.5 μm
Q = 6.7 [6.7 ; 8.1] 8.2 ; N = 10 ; C = 95%
Me = 81.3 × 11.2 μm ; Qe = 7.4

cheilocystidia:
14.2 [15.2 ; 43.9] 47.9 × 7.5 [8.2 ; 12.2] 13.9 μm
Q = 1.6 [1.7 ; 4.4] 4.6 ; N = 13 ; C = 95%
Me = 25.8 × 9.0 μm ; Qe = 2.5

basidia:
19.4 [21.9 ; 30.8] 31.2 × 6.7 [6.9 ; 9.2] 9.4 μm
Q = 2.9 [3.0 ; 3.9] 4.1 ; N = 7 ; C = 95%
Me = 28.3 × 8.2 μm ; Qe = 3.4

23. Puccinia glechomatis

ex Glechoma hederacea

...... ein kleiner Ausblick auf den See ......

und weiter geht's ...

24. Cylindrodendrum album

ex Salix leaf

conidia:
14.6 [15.7 ; 23.4] 24.9 × 1.9 [1.9 ; 3.3] 3.4 μm
Q = 5.6 [5.7 ; 9.8] 9.9 ; N = 26 ; C = 95%
Me = 18.4 × 2.6 μm ; Qe = 7.3

conidiogenous cells:
7.6 [7.9 ; 17.7] 19.0 × 2.9 [2.9 ; 4.1] 4.1 μm
Q = 2.0 [2.1 ; 4.6] 5.8 ; N = 22 ; C = 95%
Me = 10.0 × 3.4 μm ; Qe = 3.0

25. Nalanthamala cf. psidii

ex Rubus idaeus, conidiomata 325 μm - 875 μm Ø

conidia:
4.0 [4.0 ; 5.6] 6.2 × 2.7 [2.8 ; 3.3] 3.5 μm
Q = 1.2 [1.3 ; 1.8] 1.9 ; N = 38 ; C = 95%
Me = 4.9 × 3.1 μm ; Qe = 1.6

conidiogenous cells:
11.6 [11.7 ; 19.1] 19.2 × 2.0 [2.1 ; 2.9] 3.5 μm
Q = 3.9 [4.8 ; 8.3] 9.1 ; N = 15 ; C = 95%
Me = 14.2 × 2.3 μm ; Qe = 6.4

26. Diderma effusum

ex Rubus idaeus, peridium fragile

spores:

7.7 [7.8 ; 9.0] 10.4 μm

N = 35 ; C = 95%

Me = 8.4 μm

27. Aegerita candida

ex Salix twig at a pond

28. Flagelloscypha orthospora

ex Salix, fruiting structures 100-300 μm

hairs:
63.9 [120.7 ; 161.1] 174.2 × 3.8 [4.0 ; 4.5] 5.2 μm
Q = 16.4 [29.1 ; 38.5] 39.6 ; N = 9 ; C = 95%
Me = 138.8 × 4.3 μm ; Qe = 32.4

spores:
7.3 [7.4 ; 9.0] 10.1 × 3.8 [4.1 ; 4.9] 5.3 μm
Q = 1.7 [1.7 ; 1.9] 2.0 ; N = 12 ; C = 95%
Me = 8.0 × 4.5 μm ; Qe = 1.8

basidia:
14.6 [14.2 ; 17.1] 18.5 × 5.9 [6.0 ; 7.9] 8.5 μm
Q = 1.7 [1.8 ; 2.8] 3.1 ; N = 6 ; C = 95%
Me = 15.7 × 7.0 μm ; Qe = 2.3

29. Mollisia caricina
Calycina cruentata (korrigiert von Torsten Richter)

Ich habe ich mich bei der Bestimmung ein bisschen rumgeirrt, da Mollisiaarten geigentlich dunkles Excipulum haben sollten. Aber sonst konnte ich mit dem Schlüssel von Ascomycetenprojekt nirgendwohin kommen... Aber ab und zu mal kann Mollisia auch solche Albino-formen bilden.

ex Carex acutiformis, apothecia 300 - 600 μm Ø

ascospores:
6.4 [6.6 ; 8.0] 9.1 × 1.1 [1.3 ; 1.7] 1.9 μm
Q = 3.4 [4.1 ; 5.7] 7.0 ; N = 43 ; C = 95%
Me = 7.3 × 1.5 μm ; Qe = 4.9

asci:
28.9 [35.8 ; 45.4] 45.5 × 3.4 [3.5 ; 4.3] 4.5 μm
Q = 8.2 [8.9 ; 11.7] 12.0 ; N = 12 ; C = 95%
Me = 40.6 × 3.9 μm ; Qe = 10.3

paraphyses:
39.6 [38.3 ; 49.9] 53.6 × 1.7 [1.7 ; 2.5] 2.5 μm
Q = 15.8 [16.0 ; 28.2] 31.5 ; N = 6 ; C = 95%
Me = 44.1 × 2.1 μm ; Qe = 22.1

30. Epithele typhae

ex Carex acutiformis

31. Coprinopsis cortinata

on moist soil with moss, smell none

spores:
7.7 [7.9 ; 9.3] 9.5 × 4.5 [4.5 ; 5.4] 5.8 μm
Q = 1.5 [1.6 ; 1.9] 2.0 ; N = 29 ; C = 95%
Me = 8.5 × 5.0 μm ; Qe = 1.7

basidia:
18.1 [18.8 ; 24.7] 24.7 × 4.8 [4.8 ; 7.0] 7.0 μm
Q = 2.7 [2.7 ; 4.4] 4.4 ; N = 6 ; C = 95%
Me = 20.7 × 6.4 μm ; Qe = 3.7

veilar cells:
28.7 [29.2 ; 48.9] 49.6 µm
N = 7 ; C = 95%
Me = 43.3 µm

veilar caulocystidia:
40.8 [44.9 ; 109.8] 118.7 × 6.8 [7.2 ; 13.1] 13.5 μm
Q = 4.5 [4.5 ; 11.2] 11.4 ; N = 7 ; C = 95%
Me = 66.2 × 10.4 μm ; Qe = 6.5

32. Neoerysiphe galeopsidis

ex Lamium purpureum

33. Anungitea fragilis

ex Quercus robur leaf

conidia:
9.8 [10.2 ; 12.8] 13.0 × 1.4 [1.6 ; 1.8] 1.9 μm
Q = 5.4 [5.6 ; 7.7] 8.1 ; N = 22 ; C = 95%
Me = 11.0 × 1.7 μm ; Qe = 6.5

conidiophores:
29.6 [30.3 ; 46.6] 47.2 × 2.6 [2.6 ; 3.2] 3.2 μm
Q = 9.3 [9.6 ; 16.4] 16.9 ; N = 5 ; C = 95%
Me = 36.1 × 3.0 μm ; Qe = 13.9

und da habe ich auch eine kleine Zeichnung...

34. Hyaloscypha (Candelabrum) spinulosa

ex Quercus robur leaf

conidia:
10.8 [12.6 ; 15.3] 15.3 µm
N = 9 ; C = 95%
Me = 12.8 µm

35. Calycina (Chalara) cf. brevipes

ex Quercus robur leaf

conidia:
6.1 [6.4 ; 12.1] 12.1 × 1.7 [1.7 ; 2.5] 2.7 μm
Q = 2.6 [3.2 ; 5.6] 5.8 ; N = 41 ; C = 95%
Me = 8.5 × 1.9 μm ; Qe = 4.2

conidiogenous cells:
28.4 [29.5 ; 48.6] 50.8 × 5.6 [5.7 ; 8.5] 9.6 μm
Q = 3.5 [4.0 ; 8.0] 8.2 ; N = 9 ; C = 95%
Me = 35.3 × 6.2 μm ; Qe = 6.0

36. Calonectria lauri (Cylindrocladium ilicicola)

ex Salix dead leaf

conidia:
44.3 [44.9 ; 50.5] 50.6 × 4.1 [4.3 ; 4.9] 4.9 μm
Q = 9.5 [9.5 ; 11.6] 12.3 ; N = 11 ; C = 95%
Me = 46.6 × 4.6 μm ; Qe = 10.1

conidiogenous cells:
7.7 [7.8 ; 13.0] 13.1 × 2.3 [2.4 ; 7.7] 8.9 μm
Q = 1.5 [1.6 ; 5.3] 5.5 ; N = 12 ; C = 95%
Me = 10.4 × 3.3 μm ; Qe = 3.1

vesicle extension:
145.1 [168.0 ; 180.1] 187.8 × 2.4 [2.7 ; 2.7] 2.8 μm
Q = 60.5 [62.2 ; 64.3] 69.6 ; N = 4 ; C = 95%
Me = 174.1 × 2.7 μm ; Qe = 63.3

37. Menispora caesia

ex Quercus robur twig

conidia:
15.0 [16.0 ; 19.5] 20.0 × 3.2 [3.4 ; 4.3] 4.3 μm
Q = 3.9 [4.2 ; 5.4] 5.4 ; N = 40 ; C = 95%
Me = 17.9 × 3.8 μm ; Qe = 4.8

conidiophores:
81.3 [82.8 ; 104.0] 104.0 × 3.2 [3.2 ; 4.1] 4.1 μm
Q = 21.6 [22.1 ; 31.2] 32.5 ; N = 5 ; C = 95%
Me = 91.1 × 3.7 μm ; Qe = 24.6

conidiogenous cells:
24.8 [25.5 ; 31.2] 31.4 × 3.6 [3.8 ; 4.5] 4.5 μm
Q = 5.8 [5.9 ; 7.6] 7.6 ; N = 10 ; C = 95%
Me = 28.2 × 4.1 μm ; Qe = 6.9

setae:
107.8 [124.0 ; 301.5] 304.7 × 2.7 [2.7 ; 3.9] 4.0 μm
Q = 39.9 [44.5 ; 85.6] 87.1 ; N = 6 ; C = 95%
Me = 229.4 × 3.2 μm ; Qe = 68.9

38. Tubeufia paludosa (Helicosporium phragmitis)

ex Quercus robur twig

conidia (diameter × filament width):
14.6 [16.5 ; 24.2] 25.0 × 1.7 [1.8 ; 2.3] 2.4 μm
Q = 8.1 [8.8 ; 11.8] 11.9 ; N = 13 ; C = 95%
Me = 20.4 × 1.9 μm ; Qe = 10.4

conidiophores:
197.0 [197.0 ; 415.6] 415.6 × 3.4 [3.4 ; 4.6] 4.6 μm
Q = 57.9 [57.9 ; 90.3] 90.3 ; N = 3 ; C = 95%
Me = 248.3 × 3.4 μm ; Qe = 73.0

39. unbekannter auf Eichenzweig neben Helicosporium phragmitis

ex Quercus robur twig

conidia:
12.2 [13.8 ; 27.1] 32.2 × 8.8 [10.3 ; 19.1] 22.3 μm
Q = 1.0 [1.0 ; 2.1] 2.3 ; N = 47 ; C = 95%
Me = 19.5 × 14.0 μm ; Qe = 1.3

40. unbekannter Hyphomycet parasitär auf Allophylaria macrospora

ex Allophylaria macrospora ex Quercus rubra

conidia:
23.6 [23.6 ; 50.1] 50.1 × 4.2 [4.2 ; 5.3] 5.3 μm
Q = 4.5 [4.5 ; 11.9] 11.9 ; N = 15 ; C = 95%
Me = 28.2 × 4.9 μm ; Qe = 5.8

phialide-like structures:
17.7 [17.7 ; 24.5] 24.5 × 3.4 [3.4 ; 4.4] 4.4 μm
Q = 5.2 [5.2 ; 5.7] 5.7 ; N = 3 ; C = 95%
Me = 21.2 × 4.0 μm ; Qe = 5.3

conidiophores:
37.0 [37.0 ; 67.0] 67.0 × 1.5 [1.5 ; 2.3] 2.3 μm
Q = 22.1 [16.8 ; 31.0] 31.0 ; N = 5 ; C = 95%
Me = 46.3 × 1.8 μm ; Qe = 25.7

41. Lophiostoma compressum

ex Salix, perithecia 400-500 μm Ø

ascospores:
20.0 [21.7 ; 24.9] 25.7 × 8.2 [8.4 ; 9.7] 10.1 μm
Q = 2.3 [2.4 ; 2.7] 2.8 ; N = 20 ; C = 95%
Me = 23.3 × 9.0 μm ; Qe = 2.6

asci:
112.4 [110.6 ; 119.0] 116.4 × 11.2 [10.5 ; 13.9] 12.7 μm
Q = 9.1 [8.4 ; 10.5] 10.0 ; N = 3 ; C = 95%
Me = 114.8 × 12.2 μm ; Qe = 9.4

Nun... das war alles, was ich bei der Exkursion gefunden habe , 41 Arten waren es also am Ende...

Hoffentlich konnte ich euch ein bisschen Freude bringen

LG

Bohan

Hallo Felli,

Nr. 1 ist eine Art der Botryosphaeriaceae. Da gibt es eine Arbeit mit Schlüsseln dazu.

Zur Nr. 2, da habe ich auch einen ähnlichen Fund letztens gemacht: zwei unbekannte Arten

(Nr.2 in dem Beitrag)

Leider weiß ich noch nicht, welche Art das ist.

LG

Bohan

Hallo Thorben,

ich füge mal meinen Fund hinzu, da ich in der Meinung bin, dass ich eventuell den selben Pilz gefunden haben könnte.

ex Quercus robur, conidiomata up to 450 μm Ø

conidia:
13.6 [14.0 ; 17.0] 17.7 × 1.7 [1.7 ; 1.9] 2.0 μm
Q = 6.8 [7.2 ; 9.7] 10.4 ; N = 13 ; C = 95%
Me = 15.6 × 1.8 μm ; Qe = 8.4

conidiogenous cells:
15.5 [19.5 ; 38.6] 39.9 × 1.3 [1.5 ; 2.3] 2.5 μm
Q = 7.1 [8.0 ; 24.2] 30.7 ; N = 17 ; C = 95%
Me = 26.6 × 1.9 μm ; Qe = 14.5

septate, hair-like elements:
50.0 [50.4 ; 61.1] 61.9 × 2.9 [2.9 ; 3.6] 3.7 μm
Q = 14.2 [14.3 ; 20.8] 21.3 ; N = 4 ; C = 95%
Me = 54.5 × 3.3 μm ; Qe = 16.4

LG

Bohan

Hallo zusammen,

hier einmal die gestrigen Funde:

1. Wahrscheinlich die Anamorphe eines Heterobasidiomyceten

Dieser Fund erinnert mich ein bisschen an Tremella versicolor. Die Mikromerkmalen sind etwas ähnlich.

ex Aesculus hippocastanum, (maybe ex Pyrenopeziza petiolaris???)

"conidia":
5.2 [5.3 ; 7.4] 7.4 × 3.7 [3.7 ; 5.2] 5.2 μm
Q = 1.1 [1.1 ; 1.6] 1.6 ; N = 19 ; C = 95%
Me = 5.8 × 4.8 μm ; Qe = 1.3

2. und Sporodochien mit Randhaaren... Mir fällt nichts ein...

Auch die lange Suche im Internet war leider vergeblich...

ex Aesculus hippocastanum, marginal cillia up to 150 μm long and 90 μm wide

conidia:

5.0 [5.0 ; 5.7] 5.9 × 1.0 [1.0 ; 1.3] 1.4 μm

Q = 4.1 [4.1 ; 5.6] 5.9 ; N = 26 ; C = 95%

Me = 5.4 × 1.2 μm ; Qe = 4.7

conidiogenous cells:

12.0 [12.3 ; 18.0] 18.5 × 0.9 [1.0 ; 1.8] 1.8 μm

Q = 8.7 [8.8 ; 14.4] 14.8 ; N = 11 ; C = 95%

Me = 15.6 × 1.6 μm ; Qe = 10.3

3. Cylindrium aeruginosum

Zu meinem alten C. elongatum Fund passt es nicht. Der hatte nämlich viel kürzerer Konidienträger. Die Sporengröße passt zu der Beschreibung. Ich glaube, dass der Rasen auch mal weiß sein kann... vorallem in frühen Phasen.

ex Quercus robur leaves

conidia:
17.4 [17.5 ; 20.9] 21.4 × 2.1 [2.2 ; 3.1] 3.1 μm
Q = 5.9 [6.0 ; 9.0] 9.9 ; N = 38 ; C = 95%
Me = 19.3 × 2.7 μm ; Qe = 7.1

(the upper) conidiogenousgenous cells:
24.1 [24.8 ; 32.1] 33.7 × 2.4 [2.6 ; 4.4] 4.8 μm
Q = 5.4 [6.3 ; 12.7] 14.0 ; N = 9 ; C = 95%
Me = 28.0 × 2.9 μm ; Qe = 8.7

LG

Bohan

Stimmt, das war bisschen zu hastig. Tatsächlich sehen die Konidien anders aus.

Hallo zusammen,

ich habe heute in die Richtung Phialophora weiterrecherchiert und fand diese Arbeit: https://www.tandfonline.com/do…080/00275514.2019.1663106

Venustampulla parva scheint gut dazuzupassen

LG

Bohan

Hallo mal,

ich wollte gerade sagen, dass ich die (vermutlich) gleiche Art gefunden habe. Doch Thorben war schneller als ich 😂

LG

Bohan

Hallo Forum,

gestern habe ich einfach mit ein paar vergrabene, vergangene, nasse Gräser mir genau angeguckt... Und da gibt's natürlich ein paar interessante Pilze darauf

auf toten Blättern eines Grasses...:

1. Chaetomium globosum

(Da ich faulenzen möchte, kopiere ich einfach meine englische Beschreibungen direkt von iNatutalist ab )

on dead, buried, moist grass matter on meadow; perithecium globose, 200 μm Ø (without hairs); terminal hairs flexuous to coiled, lateral hairs rather straight

asci:

48.5 [49.1 ; 49.1] 51.7 × 9.3 [10.0 ; 11.5] 14.2 μm

Q = 3.6 [4.2 ; 4.9] 5.3 ; N = 4 ; C = 95%

Me = 49.1 × 10.8 μm ; Qe = 4.6

ascospores:

9.2 [9.4 ; 10.8] 11.4 × 7.4 [7.7 ; 8.5] 8.7 μm

Q = 1.1 [1.2 ; 1.4] 1.4 ; N = 18 ; C = 95%

Me = 10.1 × 8.1 μm ; Qe = 1.2

2. Dinemasporium strigosum

on moist, dead grass stem buried under grass in meadow, conidiomata 80-500 μm Ø

setae:
111.6 [129.6 ; 352.4] 355.8 × 5.0 [5.3 ; 8.8] 8.9 μm
Q = 22.3 [24.0 ; 49.5] 52.3 ; N = 5 ; C = 95%
Me = 307.6 × 6.8 μm ; Qe = 37.1

conidia:
7.6 [8.4 ; 10.5] 10.7 × 1.8 [1.9 ; 2.5] 2.6 μm
Q = 3.5 [3.7 ; 5.3] 5.5 ; N = 28 ; C = 95%
Me = 9.5 × 2.1 μm ; Qe = 4.4

conidial appendages:
4.2 [4.5 ; 7.6] 8.1 μm
N = 29 ; C = 95%
Me = 5.3 μm

conidiogenous cells:
14.0 [14.8 ; 21.1] 21.7 × 1.1 [1.2 ; 1.6] 1.7 μm
Q = 11.5 [11.7 ; 15.8] 16.7 ; N = 7 ; C = 95%
Me = 19.1 × 1.4 μm ; Qe = 12.7

3. Clonostachys rosea f. rosea

on dead, moist, buried grass matter in meadow

conidia:
4.7 [4.9 ; 6.6] 6.7 × 2.2 [2.4 ; 3.0] 3.1 μm
Q = 1.6 [1.7 ; 2.5] 2.5 ; N = 33 ; C = 95%
Me = 5.4 × 2.7 μm ; Qe = 2.0

phialides:
10.7 [12.9 ; 17.6] 18.9 × 1.6 [2.3 ; 2.7] 2.9 μm
Q = 5.0 [5.4 ; 6.5] 6.7 ; N = 7 ; C = 95%
Me = 14.6 × 2.6 μm ; Qe = 6.4

cleistothecia?microsclerotia?:
31.2 [31.2 ; 37.2] 37.2 µm
N = 3 ; C = 95%
Me = 32.7 µm

auf totem Brennesselstängel...:

4. Gibberella cyanea

Ich bin echt fasziniert von diesen bunten Perithezienwänden der Art! Wunderschön...

ex Urtica dioica dead stem, perithecia 50-170 μm Ø

ascospores:
14.9 [15.1 ; 19.0] 19.2 × 5.6 [5.7 ; 7.1] 7.2 μm
Q = 2.2 [2.2 ; 2.9] 3.0 ; N = 6 ; C = 95%
Me = 16.7 × 6.8 μm ; Qe = 2.6

asci:
38.0 [38.9 ; 40.2] 43.4 × 8.1 [8.6 ; 11.6] 13.2 μm
Q = 3.3 [3.5 ; 4.4] 4.8 ; N = 4 ; C = 95%
Me = 39.6 × 10.1 μm ; Qe = 3.9

perithecial wall thickness:
21.4 [23.2 ; 29.8] 30.3 µm
N = 6 ; C = 95%
Me = 27.3 µm

5. Periconia byssoides

ex Urtica dioica dead stem in soil under grass

conidia:
12.0 [12.9 ; 17.1] 17.6 µm
N = 10 ; C = 95%
Me = 13.8 µm

heads of conidiophores:
46.6 [46.6 ; 77.1] 77.5 µm
N = 9 ; C = 95%
Me = 58.6 µm

conidiophores:
485.3 [561.4 ; 879.6] 927.2 × 11.3 [11.5 ; 18.5] 18.5 μm
Q = 26.2 [36.9 ; 51.5] 77.8 ; N = 6 ; C = 95%
Me = 691.0 × 18.2 μm ; Qe = 43.4

conidiogenous cells:
8.8 [9.1 ; 10.0] 11.6 × 8.8 [9.4 ; 9.8] 9.9 μm
Q = 0.97 [0.99 ; 1.05] 1.17 ; N = 6 ; C = 95%
Me = 9.7 × 9.6 μm ; Qe = 1.0

5 Arten waren es also... ziemlich viel für einen kleinen Haufen Gras

Hoffentlich gefallen euch die Bilder und ihr habt ein bisschen Spaß dabei, ein bisschen mit reinzugucken

Liebe Grüße

Bohan

Moin Björn,

vielen Dank für die Info. Nun werde ich versuchen ihn zu kontaktieren.

Liebe Grüße

Bohan

Hallo zusammen,

gestern habe ich beim Suchen von Pilzen besonders auf Adlerfarnen geachtet. Außer der übliche Adlerfarn-Fleckenpilz und Cistella pteridialis fand ich noch eine Wachsschicht auf totem Stängel der Pflanze.

Der Pilz entpuppt sich als ein Serendipita sp. (cf.?) mit tremelloiden Basidien, nachdem ich mit dem Heterobasiomyceten Schlüssel geschlüsselt habe.

Basidien:
7.7 [7.7 ; 9.8] 10.1 × 7.3 [7.4 ; 9.4] 9.6 μm
Q = 1.0 [1.0 ; 1.2] 1.2 ; N = 8 ; C = 95%
Me = 8.7 × 7.9 μm ; Qe = 1.1
Sporen:
7.2 [8.0 ; 10.6] 11.4 × 4.1 [4.3 ; 5.1] 5.2 μm
Q = 1.5 [1.6 ; 2.3] 2.4 ; N = 16 ; C = 95%
Me = 9.1 × 4.8 μm ; Qe = 1.9

Hyphidien fehlen, Schnallen fehlen, Hyphen kaum sichtbar

Interessanterweise hat dieses Exemplar 2-sporige Basidien und Sporen mit abgerundeten Enden, die aber nicht zylindrisch oder allantoid sind und somit passt es scheinbar zu keiner der bekannten Art der Gattung Serendipita. Es sei denn, es ist wieder die falsche Gattung (Deshalb auch ein cf. dran)

Könnte irgendjemand mir vielleicht bei der Bestimmung helfen?

LG

Bohan

Hallo Forum,

ich habe letztens Kräuterstengeln gesammelt und sie ins Wasser gelegt, um zu gucken, was darauf so wächst.

Neben Leptospora rubella fand ich noch diesen Hyphomyceten, der für mich noch unbekannt war:

Dendryphion comosum

Einen schönen Tag noch!

LG

Bohan

Moin Matthias,

Ich habe den Pilz schon mit der Gattung Clathrosporium verglichen, aber rein bildlich passte mir die nicht. Aber ich weiß auch nicht, was die genaue Unterschied beider Gattungen ist.

Liebe Grüße

Bohan

Hallo zusammen,

Am 17.Mai.2025 war unsere KPF-Exkursion im Düsternbrooker Gehölz.

Trotz der Lage an der Küste war es dort ziemlich trocken, bis auf einige kleine Teiche, wo wir auch spannende Funde gemacht haben.

Mit 70 Arten bei diesem Wetter war es schon sehr erstaunlich.

Ich berichte mal Funde aus meiner Seite.

1. Hypoxylon rubiginosum (anamorph)

sattrote Reaktion mit KOH!

2. Trametes versicolor

3. Stereum rugosum auf Acer plantanoides mit Trichoderma sp.

Und jetzt kommt etwas, was ich mikroskopiert habe

4. Sistotrema porulosum

5. Megacollybia platyphylla

Witzig, dass sie so an Myzelsträngen wachsen...

6. Melanconium stromaticum auf Carpinus betulus

7. Fibulomyces (Leptosporomyces) mutabilis im Stamminneren einer Pseudotsuga

8. Ein unbestimmbarer Hyphomycet

ich dachte mir: Welcher Rindenpilz wächst denn auf Buchenfruchtschalen??? Ja, es ist auch kein Rindenpilz, sondern was anderes

9. Lyomyces sambuci auf Fagus sylvatica

10. Xylodon raduloides (Schizopora radula)

...und ein paar Phytos gibt's natürlich auch

11. Entyloma ficariae ex Ficaria verna

12. Pluteus cervinus

Nun kommen wir zu den aquatischen Pilzen...

13. Aegerita candida

14. Subulicystidium longisporum

15. Peniophora quercina

16. Crocicreas cyathoideum auf Urtica dioica Stängel

In frischer er Zustand... So anders können sie aussehen

17. Puccinia urticata agg.

18. Lachnella alboviolascens

19. Hymenoscyphus sp. auf einer Buchecker

Leider konnte ich den nicht bestimmen, da die Becherchen ihr Hymenium verloren haben. Es hat einfach zu lange gedauert, bis ich zu den gekommen bin...

20. Scutellinia kerguelensis (bestätigt von Malcolm)

Die Sporen sind aber etwas kleiner als beschrieben. Maren hat welche fürs Sequenzieren aufgehoben. Mal sehen, was so rauskommt!

21. Adelphella (Pachyella) babingtonii

22. Sawadaea bicornis auf Acer platanoides

23. Kretzschmaria deusta auf Fagusstamm

24. Phanerochaete livescens

25. Neoerysiphe galeopsidis ex Lamium galeobdolon

26. Erysiphe berberidis ex Berberis aquifolium

27. Podosphaera spiraeae ex Spiraea japonica

28. Erysiphe euonymi ex Euonymus europaeus

29. Tremella versicolor auf Peniophora cinerea

Das wären alle Funde, ich ich vor Ort gesehen habe. Aber bei genauerer, mikroskopischer Untersuchung werde ich immer ein paar Extrafunde machen. Diesmal ist es auch der Fall...

30. Leptosphaeria acuta ex Urtica dioica

(Ja, ich weiß, Handybilder sind nicht die Besten)

31. Sarcopodium circinatum

32. Cryptocoryneum condensatum

Hier habe ich nur die Sporen gesehen...

33. Minimedusa polyspora

Die sehen doch schon ein bisschen nach Medusaköpfe aus

34. Spirosphaera floriformis

35. Lasiosphaeris hirsuta

36. Skeletocutis cf. nemoralis

Dieser Komplex ist auch echt schwer

Zu guter Letzt...

37. Infundichalara microchona auf Leptosporomyces mutabilis

Ich hoffe euch haben die Bilder gefallen!

Liebe Grüße

Bohan

Hallo Forum,

einen sehr winzigen Coelomyceten fand ich am 03.05.2025 auf einem Buchenholz mit Peniophorella praetermissa. (Ja, ich bin immer noch nicht durch mit meinen Funden von vor mehr als einer Woche )

Makroskopisch sehen die Pyknidien genau wie Synnemata eines Hyphomyceten aus. Erst mikroskopisch erkennt man dann ein bisschen, dass die Sporen scheinbar im Inneren der "Synnemata" gebildet werden.

Leider habe ich noch keinen Namen für diese winzigen, lustigen "Röhrchen" gefunden. Aber etwas Ähnliches finde ich hier:

https://www.researchgate.net/publication/6658814_Two_new_pycnidial_members_of_the_Atractiellales_Basidiopycnis_hyalina_and_Proceropycnis_pinicola

LG

Bohan

Hallo Matthias,

ich habe ein bisschen an dem Querschnitt des Holzes versucht.

Leider konnte ich keine bessere Schnitte machen

Das sieht aber ziemlich nach Nadelholz aus...

LG

Bohan

Zitat von hilmgridd

Danke für die klasse Dokumentation!

Kannst Du noch was zum Fundort sagen?

LG Hilmi

Hallo Hilmi,

Diesen Fund habe ich in Schleswig-Holstein südlich von Rendsburg gemacht. Die Fruchtkörper wachsen am Wegesrand zwischen Grasbüscheln unter Weiden (Salix). Es war ziemlich trocken, als ich sie gefunden habe. Der Weg liegt zwischen Ackerfeldern.

LG

Bohan

Hallo Forum,

am 3.5.2025. konnte ich einen weißen Belag auf Buchen(aber vielleicht eher Nadel-?)holz finden. Wie immer, bei solchem resupinaten Wuchs denke ich an einen Rindenpilz. Aber es stellt sich doch noch heraus, dass es von einem Hyphomyceten handelt:

Geniculodendron pyriforme

Dies sollte die Anamorphe von Caloscypha fulgens sein. Jedoch wurde die (Anamorphe) Art nur auf Nadelholz od. Samen von Nadelbäumen nachgewiesen sein.

Deshalb bezweifle ich, ob das Substrat hier wirklich stimmt...

LG

Bohan

Gloeocystidiellum clavuligerum

Hallo Forum,

ich konnte Gestern einen Rindenpilz auf Buchenrinde (oder vielleicht ein anderer Baum?) finden. Der Pilz hat eine Unmenge an Gloeozystiden. Die Sporen sind amyloid.

Hätte jemand eine Idee dazu?

LG

Bohan

Hallo Forum,

am 3.5.2025 fand ich einen weißen Rindenpilz auf Buchenast, der sich später als Peniophorella praetermissa herausstellt.

LG

Bohan

Hallo zusammen,

der Pilz sollte tatsächlich ein sehr junger Ceriporia reticulata sein. Die Poren erkennt man jetzt nur als kleine Näpfe auf dem Bild.

Dank Maren für die Aufklärung!

LG

Bohan

Hallo Tonio,

Die Literatur, mit der ich die Bestimmungen gemacht habe, stammt aus verschieden Quellen. Grundsätzlich muss man viele davon im Netz suchen. Dann sammeln es sich nach der Zeit an.

Mit Erfahrung hat man schon während der Mikroskopie eine Vermutung, wovon es handeln könnte.

Zu diesen Funden habe ich vorallem folgende Literatur mir angeschaut:

https://www.studiesinmycology.org/sim/Sim73/Sim73.pdf

Dr. L. Rabenhorst's Kryptogamen-Flora von Deutschland, Oesterreich und der Schweiz : Rabenhorst, Ludwig, 1806-1881 : Free Download, Borrow, and Streaming : Internet Archive

Bd. 1. Die Pilze. Abt. 1-10. 1884-1920. 9 v. -- Bd. 2. Die Meeresalgen. 1885 -- Bd. 3. Die Farnpflanzen. 1889 -- Bd. 4. Die Laubmoose. Abt. 1-2. 1890-95. 2…

archive.org

Ellis & Ellis Microfungi on Land Plants

Six new species of Arthrinium from Europe and notes about A. caricicola and other species found in Carex spp. hosts

Several new Arthrinium specimens were collected from various locations in Mediterranean and temperate Europe. A collection of the type species, A. caricicola,…

mycokeys.pensoft.net

LG

Bohan

Piloderma sieht auch etwas ähnlich aus, hätte aber keine zylindrische Sporen.

Hallo Forum,

heute habe ich eine Athelia aus der Exkursion am Samstag mikroskopiert. Leider komme ich mit dem Schlüssel von FUNGI EUROPAEI Corticiaceae s.l. nirgendwo hin.

auf morschem Holz von Larix, Zystiden und Schnallen (überall gesucht!!) nicht gefunden.

Vielleicht hat jemand schon mal die Art gefunden und kann mir dazu etwas sagen?

LG

Bohan

Oder vielleicht Athelidium spec.?